Un problème central dans la biologie du développement est de déduire l'origine de la myriade de types de cellules présentes dans les vertébrés à mesure qu'ils surviennent à partir de précurseurs indifférenciés. Les chercheurs ont utilisé diverses méthodes d'étiquetage lignée, tels que l'étiquetage DiI 1 et l'injection sous pression d'enzymes traçable 2 à déterminer le destin des cellules à des stades ultérieurs de développement dans des systèmes modèles. Les cartes sort d'abord dans le poisson zèbre (Danio rerio) ont été assemblés par injection iontophorétique de colorants fluorescents, tels que la rhodamine dextrane, dans des cellules individuelles dans des régions discrètes de l'embryon et le traçage le sort de la cellule marquée au cours du temps 3-5. Bien qu'ils soient efficaces, ces méthodes sont techniquement exigeantes et nécessitent un équipement spécialisé ne trouve pas couramment dans les laboratoires de poisson zèbre. Récemment, photoconvertable protéines fluorescentes, comme Eos et Kaede, qui irréversiblement passer du vert au rouge lorsque la fluorescence est exposé aux ultraviolets, voient une utilisation accrue chez le poisson zèbre 6-8. La clarté optique de l'embryon de poisson zèbre et la facilité relative de la transgénèse ont fait de ces outils particulièrement attrayant pour l'étiquetage lignée et d'observer la migration des cellules in vivo 7. Malgré leur utilité, ces protéines ont quelques inconvénients par rapport aux colorants médiée par des méthodes d'étiquetage lignée. La plupart des cruciale est la difficulté que nous avons trouvés dans l'obtention de 3-D haute résolution pendant photoconversion de ces protéines. Dans cette perspective, peut-être la meilleure combinaison de résolution et de facilité d'utilisation pour l'étiquetage de la lignée dans le poisson-zèbre se sert de cage fluorescéine dextrane, un colorant fluorescent qui est lié à un groupe de trempe qui masque ses 9 fluorescence. La teinture peut alors être "Uncaged" (publié par le groupe de la trempe) dans une cellule spécifique en utilisant la lumière UV d'une lampe laser ou le mercure, permettant la visualisation de sa fluorescence ou immunodétection. Contrairement aux méthodes d'iontophorèse, la fluorescéine cage peut être injecté à des appareils d'injection standard et Uncaged avec un microscope à épifluorescence équipé d'un trou d'épingle 10. En outre, les anticorps contre la fluorescéine ne détecter que le formulaire en liberté, et l'épitope de fixation ainsi survit 11. Enfin, la fluorescéine en cage peuvent être activées à très haute résolution en 3-D, en particulier si la microscopie à deux photons est utilisée 12,13. Ce protocole décrit une méthode d'étiquetage par la lignée de fluorescéine en cage et uncaging laser. Subsequenctly, uncaged fluorescéine est détectée simultanément avec les autres épitopes telles que la GFP en marquant avec des anticorps.