Article de méthode

À libération contrôlée de dioxyde de chlore dans un système d'emballage perforé pour prolonger la vie de stockage et améliorer la sécurité des tomates raisin

DOI :

10.3791/55400

⸱

7 avril 2017

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1USDA, ARS, USHRL, 2Indian River Research and Education Center, University of Florida, 3Worrell Water Technologies, LLC

Dans cet article

Résumé

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Ici, nous décrivons un protocole pour l’application d’un nouveau produit ClO2 à libération lente qui réduit la détérioration et prolonge la durée de conservation des fruits frais. Le produit ClO2 à libération lente a été ajouté à l’emballage commercial standard des tomates raisins et testé contre Escherichia coli et Alternaria alternata.

Résumé

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Une poche de dioxyde de chlore à libération contrôlée (ClO 2) a été développé par scellement d' une forme de suspension de ClO 2 dans le film de polymère semi - perméable; les propriétés de libération de la poche ont été surveillées dans des récipients avec ou sans fruits. Le sachet a été fixé à l'intérieur d'une coquille perforée contenant des tomates de raisin, et l'effet sur la population microbienne, la fermeté et la perte de poids a été évalué au cours d'une période de stockage de 14 jours à 20 ° C. Dans les 3 jours, la concentration de ClO 2 dans les coquilles atteint 3,5 ppm et reste constante jusqu'à ce jour 10. Par la suite, il a diminué de 2 ppm par jour 14. La poche ClO 2 présentait une forte activité anti - microbienne, la réduction des populations d ' Escherichia coli par 3,08 log UFC / g et Alternaria populations alternata par 2,85 log UFC / g après 14 jours de stockage. Le traitement ClO 2 a également réduit la perte de poids et de ramollissement et a prolongé la durée de vie globale des tomates. nos résultatssuggèrent que le traitement ClO 2 est utile pour prolonger la durée de vie et l' amélioration de la sécurité microbienne des tomates pendant le stockage sans nuire à leur qualité.

Introduction

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Une alimentation riche en fruits et légumes frais peut aider à réduire le risque de nombreuses maladies, y compris les maladies coronariennes et certains types de cancers 1. Cependant, il y a un certain nombre de micro - organismes pathogènes d' origine alimentaire, tels que Escherichia coli, Salmonella enterica et Listeria monocytogenes, associés à la consommation de fruits et légumes frais qui peuvent causer la maladie ou même la mort chez les consommateurs qui mangent des produits contaminés 2. Par exemple, E. coli O157: H7 ont été associés avec des raisins, les tomates, les fraises et les 3, 4, et des épidémies d' hépatite A ont été associés à des bleuets frais 5. En outre, la contamination microbienne peut entraîner une perte de produit importante par la décomposition post - récolte 6. Alternaria alternata est une plante importante champignon pathogène t chapeau est connu pour provoquer des taches de feuilles et d' autres maladies dans plus de 380 espèces de plantes hôtes 7. Il a été démontré que la cause d'une tache noire Alternaria 8, une maladie du chancre de la tige et une brûlure des feuilles de tomates 9. Par conséquent, un traitement de décontamination post-récolte sûr et efficace est nécessaire pour les deux agents pathogènes d'origine alimentaire et de contrôle pour prévenir la carie post-récolte des produits frais.

technologies peu polluantes et sans résidus sont les nouvelles tendances pour assainisseurs alternatives. Une variété de fongicides post-récolte ont été utilisés pour réduire les organismes d'altération et de prévenir les maladies d'origine alimentaire. L' ozone, un puissant agent anti - microbien, a été montré pour préserver la qualité et la fraîcheur des fraises et les bleuets 10, 11. Cependant, l'ozone peut provoquer l'oxydation des tissus de surface de fruits et peut entraîner une décoloration et la détérioration de la qualité de saveurs = "xref"> 12. Le chlore a été utilisé pour désinfecter les fruits et légumes frais, tels que les myrtilles et les pommes 13. Bien qu'efficace, le chlore peut réagir avec des composés contenant de l' azote ou de l' ammoniac, ce qui entraîne des sous - produits cancérogènes 14, en particulier lorsqu'il est utilisé pour la désinfection de fruits frais 15.

Le dioxyde de chlore (ClO 2), une solution de rechange désinfectant pour les mains, a été approuvé par la Chine et les Etats - Unis pour le traitement post - récolte des fruits et légumes 16. ClO 2 est un agent oxydant soluble dans l'eau ayant une capacité d'oxydation de 2,5 fois supérieure à celle du chlore libre 17. ClO 2 est très efficace à de faibles concentrations et avec un court temps de contact 18. ClO 2 a une faible toxicité et corrosivité minimale aux concentrations utilisées pour la désinfection, et il est reconnu comme l' un des plus efficaces bactéricideet des agents fongicides utilisés dans une variété de paramètres 19, 20, 21.

De nombreux résultats de recherche ont montré que CIO2 peut contrôler les agents pathogènes d'origine alimentaire et la carie post - récolte 16. Par exemple, le gaz ClO 2 a été utilisé pour inactiver les L. monocytogenes, Salmonella et E. coli O157: H7 et pour empêcher la détérioration du bleuet et la fraise 22, 23. Gaz ClO 2 réduit le risque de contamination microbienne , tout en maintenant les caractéristiques de fruits frais, et il était efficace pour contrôler la désintégration post - récolte de fraises 24. Cependant, il est instable à des concentrations élevées et non transportable, nécessitant traditionnellement générateurs coûteux sur le site ou inefficace mélange de poudres en deux parties.

Cependant, une nouvelle ClO2 produit avec un ready-made, la formulation à libération contrôlée (elle ne nécessite pas un générateur ou pré - mélange d'ingrédients) a été montré très efficace pour lutter contre les organismes responsables de la détérioration des aliments et des agents pathogènes dans des expériences préliminaires 25. Il est un coffre - fort, rentable, non corrosif, facilement transportable et forme à libération contrôlée de ClO 2, sans effets négatifs sur l'environnement. Des expériences antérieures ont démontré que cette libération lente poudre ClO 2 enveloppé dans un matériau de filtration et placé dans un emballage double coque réduit de manière significative la décomposition de myrtilles fraîches et des fraises, une diminution de la perte d'eau de la baie, et maintient la fermeté des fruits au cours du stockage après récolte 25, 26. Récemment, on a élaboré un paquet à libération contrôlée ClO 2 par scellement d' une forme de suspension de ClO 2 dans un film de polymère semi - perméable. Les objectifs de ce travail étaient: 1) de contrôler les propriétés de libération de gaz ClO 2 à la fois dans un récipient fermé et en coquilles perforées, 2) examiner l'effet d'une libération contrôlée poche ClO 2 enfermé dans un récipient sur les agents pathogènes d'origine alimentaire et la décomposition des tomates en grappe, et 3) évaluer les effets de la libération contrôlée ClO 2 sur la qualité de stockage des tomates raisins.

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Protocole

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Mesure de CIO2 Gazeuse dans l'espace vide d'une chambre fermée

  1. Obtenir les matériaux: ClO 2 sachet (0,5 g de suspension ClO 2 (9,5% de matière active) dans un film de polymère choisi pour son taux de libération (surface totale de 6 cm 2), les composants exacts sont exclusifs), une chambre de verre (19,14 L), et un couvercle avec entrée de gaz et la sortie commutable.
  2. Attacher la poche ClO 2 au couvercle en utilisant un adhésif double face.
  3. Fermer la chambre en scellant le couvercle avec de la vaseline.
  4. Connecter l'entrée et la sortie d'un détecteur de gaz ClO 2 à la chambre.
    NOTE: Ce système de circulation de gaz, et aucune perte de gaz a eu lieu lors de la prise des mesures.
  5. Mettre en marche l'écoulement d' entrée et de sortie de gaz et de mesurer la concentration de ClO 2 dans la chambre après une incubation de 0, 1, 2, 3, 4, 24, 26, 28 et 48 h.
  6. Surveiller la température et l'humidité relative (RH) dans la chambre de trempedonnées ature et RH enregistreurs.

2. Préparation de fruits et de stockage

  1. Obtenir 15 kg de tomates raisins frais (Solanum lycopersicum var. De cerasiforme) auprès d' un détaillant local. Assurez-vous que les fruits sont en bonne santé et ont pas de défauts visuels.
  2. Préparation de l' inoculum
    1. Utiliser des souches de E. coli (type sauvage) et A. alternata de surfaces d'agrumes 27 pour l' inoculation.
    2. Culture de E. coli sur gélose de E. coli (ECA) à 35 ° C pendant 1 jour 27, puis re-culture des organismes sur une nouvelle plaque pendant 1 jour. Confirmer les organismes en échantillonnant les plaques ECA avec une boucle de bac, strie les bactéries sur Levine éosine bleu de méthylène (EMB) la gélose, et l'incubation pendant 24 h à 35 ° C; cultures qui se transforment réfléchissant, vert métallique sont positifs pour E. coli.
    3. Culture A. alternata sur gélose au dextrose de pomme de terre (PDA) à 25 ° C; C jusqu'à l'apparition de spores.
    4. Racler les cellules de E. coli à partir de la plaque de gélose dans 50 ml d'eau distillée stérile jusqu'à ce que la concentration estimée atteint 9 log CFU / ml en utilisant une comparaison avec des étalons de turbidité McFarland d'équivalence. Ajouter 1,950 ml d'eau stérile contenant 0,1% de Tween-20 pour faire 2 L totale de l'inoculum final.
    5. Vérifier la concentration cellulaire par dépôt de dilution sur des plaques d'agar CE. Racler les spores de A. alternata de partir du milieu de culture et de les suspendre dans 2 litres d'eau distillée stérile contenant 0,1% de Tween-20.
      NOTE: La population E. coli finale était de 7,5 log UFC / g, et la population Alternaria A. était de 5,5 log UFC / g.
  3. Placer 7 kg de tomates dans une casserole en acier inoxydable de 10 L qui est complètement couvert par un sac autoclavable. Placez le sac et le bac dans une hotte de sécurité. Appliquer la solution d'inoculum (2 L) pour les fruits à l' aide d' un pulvérisateur à gâchette appliqué à partir du haut , tout en agitant doucement lefruits avec une main gantée.
    1. Après 5 min, placer les tomates en une seule couche sur des plaques stériles et de les sécher à l'air pendant 2 h. Mettre environ 200 g de fruits dans chaque Twent-quatre 1 lb (~ 1,14 L) clamshells perforées.
  4. Incorporer délicatement les feuilles contaminées et les placer dans la casserole en acier. Retirez les gants et les mettre dans la casserole. Envelopper le sac autoclavable et l'autoclave toutes les fournitures contaminées à 121 ° C pendant 25 min.
  5. Fixer ClO 2 poches aux paupières de 12 clamshells. Utilisez les autres 12 clamshells comme témoins. Peser chaque double coque entière. Conservez les fruits à 20 ° C pendant 14 jours.
  6. Prélever des échantillons sur les jours 3, 7, 10 et 14. Exemples trois clamshells, ce qui représente 3 répétitions, par traitement par jour.

3. Suivi de ClO 2 Concentration dans les Clamshells

  1. Introduire le tuyau d'entrée et de sortie du détecteur de gaz ClO 2 dans le centre des coquilles, with une distance de 2 cm entre les deux extrémités, et prendre la mesure ClO 2 jours 3, 7, 10 et 14.

4. Détermination de la flore microbienne et des fruits Attributs de qualité

  1. Agiter 5 fruits (environ 60 g) à partir de chaque répétition à 100 tpm pendant 1 h dans un sac de prélèvement stérilisé ainsi que 99 ml de tampon phosphate de potassium stérile (0,01 M, pH 7,2) sur un agitateur orbital.
    1. Plaque des dilutions en série (1, 10, et 100 fois) du lavage de la mémoire tampon, 50 ul chacune, CEA (pour E. coli) et PDA (pour A. alternata) en utilisant un ensemenceur spirale.
    2. Incuber les plaques CEA à 35 ° C pendant 24 h et les plaques de PDA à 25 ° C pendant 3 jours. Lire le nombre de colonies microbiennes en utilisant un lecteur de plaque optique. Désinfectez tout le matériel qui a contacté le fruit contaminé après utilisation.
  2. Mesurer la fermeté des fruits avec un testeur de la fermeté des fruits en utilisant le protocole du fabricant. Calibrer le testeur avantchaque utilisation. Mesurer pour chaque fruit 20 répliquer et exprimer les résultats sous la force de pression, Newton (N), nécessaire pour comprimer le fruit de 1 mm (converti en N · m - 1).
  3. Peser la double coque entière avec le fruit au début et pendant le stockage et le calcul de la perte de poids par rapport au poids initial.

5. Analyse statistique

  1. Répliquer toutes les expériences en triple exemplaire. Analyser les données en utilisant une analyse de variance (Anova). Déterminer la séparation moyenne par le test de gamme multiple de Duncan; la valeur qui est définie à p <0,05.

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Résultats

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

La libération de ClO 2 présentait un motif linéaire au cours des premières heures. La concentration a augmenté d'environ 2,38 ppm / h au cours de la première 4 h. La vitesse de libération est ralentie après 24 h d'incubation, et la concentration de ClO 2 a atteint 25,4 ppm. Cependant, la concentration tend à être stable après 24 heures d'incubation (figure 1).

La concentration de ClO

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Discussion

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Le dioxyde de chlore est un biocide idéal pour prévenir la carie alimentaire. Cependant, il est instable à des concentrations élevées et non transportable, ce qui nécessite des générateurs coûteux ou inefficaces mélange de poudres en deux parties. Cette étude a examiné l'application d'une écurie, forme prête à l'emploi de dioxyde de chlore pour réduire la détérioration des aliments et l'incidence des maladies d'origine alimentaire. Contrairement aux autres technologies d'application de dioxyde de...

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Déclarations de divulgation

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Les auteurs déclarent qu’ils n’ont pas d’intérêts financiers concurrents.

Remerciements

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Nous tenons à remercier le soutien financier apporté par Worrell Water Technologies, LLC. La mention d'une marque ou d'un produit exclusif est que pour l'identification et ne signifie pas une garantie ou garantie du produit par le Département américain de l'Agriculture.

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Curoxin® ; sachet de dioxyde de chloreWorrell Water TechnologiesSlurry, a.i. 9,5 % dans un film polymère semi-perméable scellé
Tomateraisin Santa Sweets, IncSanta Sweets Authentic  ;
Détecteur de gaz ClO2Analytical Technology, Inc., Collegeville, PAPortaSens II  ;
Coquille perforéePackaging Plus LLC, Yakima, WAOSU #1, 1 lb
Escherichia coli  ;Type sauvage (WT) à la surface du fruit
Alternaria alternataà la surface du fruit
E. coli agar  ;Bouillon EC, Oxoid, Royaume-UniBouillon EC avec 1,5 % d’agar Agar
de pomme de terre dextrose  ;BD Difco, Sparks, MD
Eosine de méthylène géloseBD Difco, Sparks, MD
Flacon pulvérisateur Trigger  ;Impact Products, LLC., Toledo, OH
Sac d’échantillonnage stérilisé  ;Fisherbrand, Fisher Scientific, Pittsburgh, Pennsylvanie
Agitateur d’orbite  ;New Brunswick Scientific, Nouveau-Brunswick, NJInnova 2100
IUL Instruments Neutec Eddy jet spiral plater inoculation systèmeNeutec Group Inc., Farmingdale, NY
EZ lecteur de plaques micro-optiques  ;Synoptics, Ltd., Cambridge, Royaume-UniTesteur
de fermeté des fruits ProtoCOL  ;Bioworks Inc, Wamego, KSFirmTech 2  ;
Enregistreur de données de température et d’humidité relative TinytagGemini Data Loggers, West Sussex, Royaume-Uni
Norme de turbidité d’équivalence McFarlandFisherbrand, Fisher Scientific, Pittsburgh, PA

Références

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Van Duyn, M. S., Pivonka, E. Overview of the health benefits of fruit and vegetable consumption for the dietetics professional: Selected literature. J Am Diet Assoc. 100 (12), 1511-1521 (2000).
  2. Beuchat, L. R. Ecological factors influencing survival and growth of human pathogens on raw fruits and vegetables. Microbes Infect. 4 (4), 413-423 (2002).
  3. Mahmoud, B. S. M., Bhagat, A. R., Linton, R. H. Inactivation kinetics of inoculated Escherichia coli O157 : H7, Listeria monocytogenes and Salmonella enterica on strawberries by chlorine dioxide gas. Food Microbiol. 24 (7-8), 736-744 (2007).
  4. Bean, N. H., Griffin, P. M. Foodborne disease outbreaks in the United-States, 1973-1987 - pathogens, vehicles, and trends. J Food Protect. 53 (9), 804-817 (1990).
  5. Calder, L., et al. An outbreak of hepatitis A associated with consumption of raw blueberries. Epidemiol Infect. 131 (1), 745-751 (2003).
  6. Chen, Z., Zhu, C. H. Combined effects of aqueous chlorine dioxide and ultrasonic treatments on postharvest storage quality of plum fruit (Prunus salicina L.). Postharvest Biol Technol. 61 (2-3), 117-123 (2011).
  7. Mmbaga, M. T., Shi, A. N., Kim, M. S. Identification of Alternaria alternata as a causal agent for leaf blight in syringa species. Plant Pathology J. 27 (2), 120-127 (2011).
  8. Fagundes, C., Palou, L., Monteiro, A. R., Perez-Gago, M. B. Hydroxypropyl methylcellulose-beeswax edible coatings formulated with antifungal food additives to reduce alternaria black spot and maintain postharvest quality of cold-stored cherry tomatoes. Sci Hortic-Amsterdam. 193, 249-257 (2015).
  9. Akhtar, K. P., Saleem, M. Y., Asghar, M., Haq, M. A. New report of Alternaria alternata causing leaf blight of tomato in Pakistan. Plant Pathol. 53 (6), 816(2004).
  10. Spalding, D. H. Effect of ozone on appearance and decay of strawberries peaches and lettuce. Phytopathology. 56, 586(1966).
  11. Bialka, K. L., Demirci, A. Decontamination of Escherichia coli O157 : H7 and Salmonella enterica on blueberries using ozone and pulsed UV-Light. J Food Sci. 72 (9), M391-M396 (2007).
  12. Kim, J. G., Yousef, A. E., Dave, S. Application of ozone for enhancing the microbiological safety and quality of foods: A review. J Food Protect. 62 (9), 1071-1087 (1999).
  13. Crowe, K. M., Bushway, A., Davis-Dentici, K. Impact of postharvest treatments, chlorine and ozone, coupled with low-temperature frozen storage on the antimicrobial quality of lowbush blueberries (Vaccinium angustifolium). LWT-Food Sci Technol. 47 (1), 213-215 (2012).
  14. Richardson, S. D., Plewa, M. J., Wagner, E. D., Schoeny, R., DeMarini, D. M. Occurrence, genotoxicity, and carcinogenicity of regulated and emerging disinfection by-products in drinking water: A review and roadmap for research. Mutat Res-Rev Mutat. 636 (1-3), 178-242 (2007).
  15. Soliva-Fortuny, R. C., Martin-Belloso, O. New advances in extending the shelf-life of fresh-cut fruits: a review. Trends Food Sci Tech. 14 (9), 341-353 (2003).
  16. Zhu, C. H., Chen, Z., Yu, G. Y. Fungicidal mechanism of chlorine dioxide on Saccharomyces cerevisiae. Ann Microbiol. 63 (2), 495-502 (2013).
  17. Han, Y., Sherman, D. M., Linton, R. H., Nielsen, S. S., Nelson, P. E. The effects of washing and chlorine dioxide gas on survival and attachment of Escherichia coli O157 : H7 to green pepper surfaces. Food Microbiol. 17 (5), 521-533 (2000).
  18. Chen, Z., Zhu, C. H., Han, Z. Q. Effects of aqueous chlorine dioxide treatment on nutritional components and shelf-life of mulberry fruit (Morus alba L). J Biosci Bioeng. 111 (6), 675-681 (2011).
  19. Gordon, G., Rosenblatt, A. A. Chlorine dioxide: The current state of the art. Ozone-Sci Eng. 27 (3), 203-207 (2005).
  20. Park, S. H., Kang, D. H. Antimicrobial effect of chlorine dioxide gas against foodborne pathogens under differing conditions of relative humidity. LWT-Food Sci Technol. 60 (1), 186-191 (2015).
  21. Wu, V. C. H., Kim, B. Effect of a simple chlorine dioxide method for controlling five foodborne pathogens, yeasts and molds on blueberries. Food Microbiol. 24 (7-8), 794-800 (2007).
  22. Mahmoud, B. S., Bhagat, A. R., Linton, R. H. Inactivation kinetics of inoculated Escherichia coli O157:H7, Listeria monocytogenes and Salmonella enterica on strawberries by chlorine dioxide gas. Food Microbiol. 24 (7-8), 736-744 (2007).
  23. Popa, I., Hanson, E. J., Todd, E. C., Schilder, A. C., Ryser, E. T. Efficacy of chlorine dioxide gas sachets for enhancing the microbiological quality and safety of blueberries. J Food Protect. 70 (9), 2084-2088 (2007).
  24. Jin, Y. Y., Kim, Y. J., Chung, K. S., Won, M., Bin Song,, K, Effect of aqueous chlorine dioxide treatment on the microbial growth and qualities of strawberries during storage. Food Sci Biotechnol. 16 (6), 1018-1022 (2007).
  25. Sun, X. X., et al. Antimicrobial activity of controlled-release chlorine dioxide gas on fresh blueberries. J Food Protect. 77 (7), 1127-1132 (2014).
  26. Wang, Z., et al. Improving storability of fresh strawberries with controlled release chlorine dioxide in perforated clamshell packaging. Food Bioprocess Technol. 7 (12), 3516-3524 (2014).
  27. Narciso, J. A., Ference, C. M., Ritenour, M. A., Widmer, W. W. Effect of copper hydroxide sprays for citrus canker control on wild-type Escherichia coli. Lett Appl Microbiol. 54 (2), 108-111 (2012).
  28. Lee, S. Y., Costello, M., Kang, D. H. Efficacy of chlorine dioxide gas as a sanitizer of lettuce leaves. J Food Protect. 67 (7), 1371-1376 (2004).
  29. Shinb, H. S., Jung, D. G. Determination of chlorine dioxide in water by gas chromatography-mass spectrometry. J Chromatogr A. 1123, 92-97 (2006).
  30. Tzanavaras, P. D., Themelis, D. G., Kika, F. S. Review of analytical methods for the determination of chlorine dioxide. Cent Eur J Chem. 5 (1), 1-12 (2007).
  31. Sy, K. V., Murray, M. B., Harrison, M. D., Beuchat, L. R. Evaluation of gaseous chlorine dioxide as a sanitizer for killing Salmonella, Escherichia coli O157 : H7, Listeria monocytogenes, and Yeasts and molds on fresh and fresh-cut produce. J Food Protect. 68 (6), 1176-1187 (2005).
  32. Du, J., Han, Y., Linton, R. H. Efficacy of chlorine dioxide gas in reducing Escherichia coli O157 : H7 on apple surfaces. Food Microbiol. 20 (5), 583-591 (2003).
  33. Wang, Y. Z., Wu, J., Ma, D. W., Ding, J. D. Preparation of a cross-linked gelatin/bacteriorhodopsin film and its photochromic properties. Sci China Chem. 54 (2), 405-409 (2011).
  34. Guo, Q., et al. Chlorine dioxide treatment decreases respiration and ethylene synthesis in fresh-cut 'Hami' melon fruit. Int J Food Sci Tech. 48 (9), 1775-1782 (2013).
  35. Aday, M. S., Caner, C. The applications of 'active packaging and chlorine dioxide' for extended shelf life of fresh strawberries. Packag Technol Sci. 24 (3), 123-136 (2011).
  36. Paniagua, A. C., East, A. R., Hindmarsh, J. P., Heyes, J. A. Moisture loss is the major cause of firmness change during postharvest storage of blueberry. Postharvest Biol Technol. 79, 13-19 (2013).
  37. Gomez-Lopez, V. M., Ragaert, P., Jeyachchandran, V., Debevere, J., Devlieghere, F. Shelf-life of minimally processed lettuce and cabbage treated with gaseous chlorine dioxide and cysteine. Int J Food Microbiol. 121 (1), 74-83 (2008).
  38. Mahovic, M. J., Tenney, J. D., Bartz, J. A. Applications of chlorine dioxide gas for control of bacterial soft rot in tomatoes. Plant Dis. 91 (10), 1316-1320 (2007).
  39. Tan, H. K., Wheeler, W. B., Wei, C. I. Reaction of chlorine dioxide with amino-acids and peptides - kinetics and mutagenicity studies. Mutat Res. 188 (4), 259-266 (1987).

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Réimpressions et autorisations

Demander l’autorisation de réutiliser le texte ou les figures de cet article JoVE

Demander une autorisation

Mots-clés

Lib ration de dioxyde de chloreEmballage lib ration contr l eConservation de la tomate grappeTests de s curit microbienneAnalyse de la fermet des fruitsMesure de la perte de poidsSyst me de barquettes perfor esSurveillance de la concentration gazeusevaluation de l efficacit antimicrobienneProlongation de la dur e de conservation

Articles connexes