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Article de méthode

Isolement des cellules souches mésenchymateuses du tissu de pulpe et co-culture avec les cellules cancéreuses afin d’étudier leurs Interactions

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DOI :

10.3791/58825

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7 janvier 2019

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Dans cet article

Résumé

Nous fournissons des protocoles d’évaluation des cellules souches mésenchymateuses isolées de la pulpe dentaire et interactions cellulaires de cancer de la prostate basées sur des méthodes directes et indirectes de co-culture. Moyenne de l’état et les membranes de trans-puits conviennent d’analyser l’activité paracrine indirecte. Ensemencement différemment colorées cellules ensemble est un modèle approprié pour l’interaction cellule-cellule direct.

Résumé

Cancer comme un processus multipas et compliquées de la maladie est non seulement régi par la croissance et la prolifération des cellules individuelles mais également contrôlé par des interactions entre environnement et cellules de tumeur. Identification du cancer et des interactions entre cellules souches, y compris les changements dans l’environnement extracellulaire, interactions physiques et facteurs sécrétés, pourrait permettre la découverte de nouvelles options thérapeutiques. Nous combinons des techniques de culture co connus pour créer un système modèle pour les cellules souches mésenchymateuses (CSM) et le cancer interactions cellulaires. Dans la présente étude, des cellules souches pulpe dentaire (DPSCs) et les interactions entre les cellules de cancer de la prostate dans la PC-3 ont été examinées par des techniques directes et indirectes de co-culture. Moyen de condition (CM) provenant de DPSCs et 0,4 µm taille de pore trans-puits membranes ont été utilisés pour étudier l’activité paracrine. Co-culture de différents types de cellules ensemble a été réalisée pour étudier les interactions cellule-cellule direct. Les résultats ont révélé que CM augmente la prolifération cellulaire et une diminution de l’apoptose dans les cultures de cellules de cancer de la prostate. Les CM et les trans-puits augmenté capacité de migration des cellules du PC-3 cellules. Cellules colorées avec des teintures différentes membranes ont été ensemencées dans les récipients de culture même, et DPSCs ont participé à une structure auto-organisée avec PC-3 cellules sous cette condition de co-culture direct. Dans l’ensemble, les résultats indiquent que les techniques de culture mixte pourraient être utiles contre le cancer et les interactions de MSC comme système modèle.

Introduction

Cellules souches mésenchymateuses (CSM), avec la capacité de différenciation et de contribution à la régénération des tissus mésenchymateux tels qu’OS, cartilage, muscle, ligament, tendon et adipeux, ont été isolés chez presque tous les tissus dans le corps adulte1 , 2. autre que fournir l’homéostasie tissulaire en produisant des cellules résidentes dans le cas d’une inflammation chronique ou d’une blessure, ils produisent vital cytokines et facteurs de croissance d’orchestrer l’angiogenèse, système immunitaire et tissu transformant3. L’interaction de MSCs avec tissus cancéreux n’est pa....

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Protocole

Consentement éclairé des patients a été obtenu après l’approbation de la Commission de déontologie institutionnelle.

1. culture et isolement et

  1. Transfert des dents de sagesse provenant de jeunes adultes âgés entre 17 et tubes de 20 à 15 mL contenant moyen d’Eagle modifié (DMEM de complet Dulbecco) [bas milieu DMEM glucose, avec 10 % sérum fœtal (SVF) et 1 % la pénicilline/streptomycine / solution de l’amphotéricine (PSA)], dans les 8 h après la résection. Garder le matériel tissulaire froid (4 ° C) pendant le transfert pour éviter la mort cellulaire potentiels.
  2. Retirer le tissu de pulpe par daviers stérile depuis le cent....

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Résultats

La figure 1 illustre les caractéristiques générales de MSC de DPSCs dans des conditions de culture. DPSCs exercer une morphologie de cellules fibroblastes après ensemencement (Figure 1 b). Antigènes de surface de MSC (CD29 CD73, CD90, CD105 et CD166) sont fortement exprimés lors des marqueurs hématopoïétiques (CD34, CD45 et CD14) sont négatifs (Figure 1). Changements au niveau morphologique et molécu.......

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Discussion

Contribution de MSCs au milieu de la tumeur est régie par plusieurs interactions dont hybride cellulaire génération via cellulaire fusions, entosis ou de cytokines et de chimiokines activités entre les cellules souches et de cellules de cancer du28. Structure de l’organisation, les interactions cellule-cellule et facteurs sécrétés déterminent le comportement de cellule du cancer en termes de promotion tumorale, la progression et la métastase aux tissus avoisinants. Bon ex vivo de.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

Cette étude a été financée par l’Université Yeditepe. Toutes les données et les chiffres utilisés dans cet article ont été publiées antérieurement34.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
DMEMInvitrogen11885084Pour la culture cellulaire
FBSInvitrogen16000044Pour la culture cellulaire
PSALonza17-745EPour la culture cellulaire
TrypsineInvitrogen25200056Pour la dissociation cellulaire
PBSInvitrogen10010023Pour les lavages
DexaméthasoneSigmaD4902Composant du milieu de différenciation
&bêta ;-GlycérophosphateSigmaG9422Composant du milieu de différenciation ostéogénique
Acide ascorbiqueSigmaA4544Composant du milieu de différenciation ostéo- et chondrogénique
Insuline-Transférrine-Sélénium (ITS &minus ; G)Invitrogen41400045Composant du milieu de différenciation chondrogénique
TGF-&beta ;SigmaSRP3171Composant du milieu de différenciation chondrogénique
InsulineSigmaI6634Composant du milieu de différenciation adipogénique
Isobutyl-1-méthylxanthine (IBMX)SigmaI7018Composant du milieu de différenciation adipogénique
IndométacineSigmaI7378Composant du milieu de différenciation adipogénique
Réactif MTSPromegaG3582Analyses de viabilité cellulaire
TUNEL AssaySigma11684795910Analyses apoptotiques
Inserts de plaque à 24 puitsCorning3396Pour le test de migration trans-puits
PKH67SigmaPKH67GLPour la coloration cellulaire en co-culture
PKH26SigmaPKH26GLPour la
coloration cellulaire en co-cultureParaformaldéhydeSigmaP6148Pour la fixation cellulaire
von Kossa KitBioOptica04-170801.APour la coloration cellulaire (différenciation)
Bleu alcienSigmaA2899Pour la coloration cellulaire (différenciation)

Références

  1. Camberlain, G., Fox, J., Ashton, B., Middleton, J. Mesenchymal stem cells: their phenotype, differentiation capacity, immunological features, and potential for homing. Stem Cells. 25 (11), 2739-2749 (2007).
  2. Demirci, S., Doğan, A., Şahin, F. Dental Stem Cells. , Springer. 109-12....

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Réimpressions et autorisations

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