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Article de méthode

Optimisation de la configuration et des conditions de l’électrorétinogramme ex vivo pour étudier la fonction de la rétine dans les petits et grands yeux

2.2K vues

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DOI :

10.3791/62763

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27 juin 2022

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Dans cet article

Résumé

La modification de l’équipement existant de réseau multiélectrodes ou de pince patch rend l’électrorétinogramme ex vivo plus largement accessible. Des méthodes améliorées pour enregistrer et maintenir les réponses lumineuses ex vivo facilitent l’étude du photorécepteur et de la fonction des cellules ON-bipolaires dans la rétine saine, des modèles animaux de maladies oculaires et des rétines de donneurs humains.

Résumé

Les mesures des réponses lumineuses neuronales rétiniennes sont essentielles pour étudier la physiologie de la rétine saine, déterminer les changements pathologiques dans les maladies de la rétine et tester les interventions thérapeutiques. L’électrorétinogramme ex vivo (ERG) permet de quantifier les contributions de types cellulaires individuels dans la rétine isolée par l’ajout d’agents pharmacologiques spécifiques et l’évaluation des changements tissulaires intrinsèques indépendamment des influences systémiques. Les réponses lumineuses rétiniennes peuvent être mesurées à l’aide d’un porte-échantillon ERG ex vivo spécialisé et d’une installation d’enregistrement, modifiés à partir d’un équipement de pince patch ou de réseau de microélectrodes existant. En particulier, l’étude des cellules ON-bipolaires, mais aussi des photorécepteurs, a été entravée par le déclin lent mais progressif des réponses lumineuses dans l’ERG ex vivo au fil du temps. L’augmentation de la vitesse de perfusion et l’ajustement de la température du perfusat améliorent la fonction rétinienne ex vivo et maximisent l’amplitude et la stabilité de la réponse. L’ERG ex vivo permet uniquement l’étude de types individuels de cellules neuronales rétiniennes. En outre, les améliorations visant à maximiser les amplitudes de réponse et la stabilité permettent d’étudier les réponses lumineuses dans des échantillons de rétine de grands animaux, ainsi que dans des yeux de donneurs humains, faisant de l’ERG ex vivo un ajout précieux au répertoire des techniques utilisées pour étudier la fonction rétinienne.

Introduction

L’électrorétinographie mesure la fonction rétinienne en réponse à la lumière1. Il fait partie intégrante de l’étude de la physiologie et de la physiopathologie rétiniennes et de la mesure du succès des thérapies pour les maladies de la rétine. L’ERG in vivo est largement utilisé pour évaluer la fonction rétinienne dans les organismes intacts, mais il présente des limites importantes 2,3. Parmi ceux-ci, l’analyse quantitative des différents types de cellules rétiniennes dans l’ERG in vivo est entravée, car elle enregistre la somme des changements potentiels, et donc des....

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Protocole

Toutes les expériences utilisant des souris ont été menées conformément au Guide des NIH pour le soin et l’utilisation des animaux de laboratoire et ont été approuvées par le Comité institutionnel d’études animales de l’Université de l’Utah. Des yeux de porc pour la démonstration de cette vidéo ont été obtenus post-mortem de l’abattoir (Sustainable Swine Resources, Johnsonville). Les yeux ont été obtenus de donneurs humains après une mort cérébrale ou cardiaque avec le consentement à des fins de recherche par l’intermédiaire de l’Utah Lions Eye Bank, de la San Diego Eye Bank ou de Lifesharing, qui sont entièrement accrédités par la FDA, l’Association of Organ Procurem....

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Résultats

Ex vivo L’ERG permet d’enregistrer les réponses reproductibles et stables du photorécepteur et de la lumière des cellules ON-bipolaires, par exemple à partir de la rétine de la souris (Figure 2A-C). L’enregistrement des réponses des photorécepteurs des rétines des donneurs humains est possible avec un délai d’énucléation post-mortem allant jusqu’à 5 heures (Figure 2D) et des réponses des cellules ON-bipolaires avec un d.......

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Discussion

Développé à l’origine en 1865 par Holmgren pour mesurer les réponses lumineuses rétiniennes de la rétineamphibienne 10, des contraintes techniques ont initialement empêché l’ERG d’être largement utilisé. Néanmoins, des études fondamentales menées par Ragnar Granit et d’autres ont identifié les origines cellulaires de l’ERG et mesuré les réponses des photorécepteurs et des cellules ON-bipolaires ex vivo11,12,13

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Déclarations de divulgation

Aucun des auteurs n’a de conflits d’intérêts à divulguer.

Remerciements

Ce travail a été soutenu par les subventions EY02665 et EY031706 du National Eye Institute et de l’International Retinal Research Foundation au Dr Vinberg, National Institutes of Health Core Grant (EY014800), et une subvention sans restriction de Research to Prevent Blindness, New York, NY, au Département d’ophtalmologie et des sciences visuelles, Université de l’Utah. Le Dr Frans Vinberg est également récipiendaire d’une bourse de développement de carrière de recherche pour prévenir la cécité/Dr H. James et Carole Free, et la Dre Silke Becker d’une subvention ARVO EyeFind. Nous remercions la Dre Anne Hanneken du Scripps Research Institute d’avoir fourni l’œil du donn....

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Douille de 2 mmWPI2026-10matériaux pour préparer l’électrode
Électrode Ag/AgClMatériauxEP1pour préparer l’électrode
milieu d’AmesSigma AldrichA1420milieu de perfusion
chlorure de baryumSigma AldrichB0750bloqueur des canaux potassiques
DL-AP4Tocris0101antagoniste glutamatergique à large spectre
OcuScience Ex Vivo Adaptateur ERGOcuSciencen/aex vivo Porte-échantillon ERG
Connecteur Luer filetéMcMaster-Carr51525K222 ou 51525K223matériaux pour préparer l’électrode

Références

  1. Kolb, H., Fernandez, E., Nelson, R. Webvision: The Organization of the Retina and Visual System. , (1995).
  2. Bonezzi, P. J., Tarchick, M. J., Renna, J. M. Ex vivo electroretinograms made easy: performing ERGs using 3D printed components. Journal of Physiology. 598 ....

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Réimpressions et autorisations

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