April 29th, 2007
Cette vidéo montre la préparation d'un ultra-mince de matrice / analyte couche pour analyser des peptides et des protéines par Matrix-Assisted Laser Désorption Ionisation Mass Spectrometry (MALDI-MS).
Bienvenue dans le tutoriel du CHI Lab sur la méthode de la couche ultra mince, qui est particulièrement utile pour la détermination précise de la masse des protéines. En raison de la nature sensible de la spectrométrie de masse, nous n’utilisons que des réactifs de qualité HPLC ainsi que des gants en latex ou en nitrile sans poudre pour nettoyer la plaque. Rincez alternativement avec de l’eau au méthanol, puis enfin à nouveau du méthanol.
Entre chaque rinçage, essuyez délicatement l’excès de solvant à l’aide d’un chiffon pour lentilles. Vous pouvez répéter ces étapes de lavage autant de fois que nécessaire pour produire une assiette propre. Et une fois nettoyée et sèche, la plaque doit être utilisée immédiatement.
Appliquez et étalez 20 à 30 microlitres de solution de substrat en couche mince sur la plaque MALDI propre. Ici, nous utilisons une pointe de pipette P deux 50 pour répartir uniformément la solution tout en évitant de rayer la plaque. Au fur et à mesure que la fine couche sèche, retirez toutes les gouttelettes d’eau restantes si elles sont présentes en épongeant doucement avec une lingette kim.
Ensuite, essuyez doucement la plaque d’un mouvement fluide avec une lingette Kim pour bien former la fine couche. Enfin, nettoyez les bords de la plaque pour éviter de contaminer le spectromètre de masse. Il est crucial de tester la couche mince avant d’appliquer votre échantillon.
Si le point d’essai met trop de temps à sécher là où les cristaux ne sont pas homogènes, le problème peut résider dans la couche mince elle-même ou dans la solution matricielle, nettoyez la plaque, réappliquez la couche mince et testez à nouveau. Lorsque vous faites des taches sur la fine couche, vous ne voulez pas que vos taches s’évaporent jusqu’à la sécheresse. Au lieu de cela, une fois que la cristallisation a ralenti et s’est arrêtée, retirez l’excès de solvant.
La présence de contaminants tels que les sels et les détergents, ainsi qu’une concentration élevée d’analyte peuvent interférer avec la cristallisation. Une dilution supplémentaire de l’échantillon peut améliorer la cristallisation Repérez les fourmis à proximité de l’échantillon. Cela permettra un pseudo-étalonnage interne dans lequel la plaque est déplacée du point d’échantillonnage au point d’étalonnage.
Lors de l’acquisition d’échantillons, en ajoutant quelques tirs laser du CAS au spectre, cette approche garantit un étalonnage avec une précision de masse plus élevée que l’étalonnage externe seul. Il est très important de laver tous les contaminants tels que le sel ou le détergent qui pourraient interférer avec l’analyte. Ionisation. Pour ce faire, déposez de l’acide acétique tri-fluor à 0,1 % dans la HPLC, de l’eau directement sur les taches.
Retirez la solution de lavage à l’aide d’un aspirateur comme indiqué ici. Cette méthode produit d’excellents spectres pour les protéines membranaires et solubles.
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Cette vidéo démontre la préparation d'une couche ultra-mince de matrice/analyte pour l'analyse des peptides et des protéines par spectrométrie de masse à désorption/ionisation assistée par laser (MALDI-SM). La méthode est essentielle pour une détermination précise de la masse des protéines.
Accurate mass determination of proteins is critical for target validation and lead identification in early discovery. The ultra-thin layer MALDI sample preparation method enhances data quality by improving tolerance to impurities and spatial uniformity, supporting reliable compound evaluation. This method enables predictive confidence in protein characterization, reducing mechanistic ambiguity in preclinical model selection.
The ultra-thin layer method fits within the discovery continuum from early target validation through lead identification to preclinical profiling, enabling reliable protein analysis at each stage.