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Prenez une culture de la bactérie Pseudomonas aeruginosa dans un bouillon.
Placez la culture sur une gélose d’isolement et incubez pour favoriser la croissance bactérienne et la production d’alginate, un exopolysaccharide composé d’acides uroniques.
Ajoutez une solution saline isotonique à la pelouse bactérienne et grattez pour recueillir les cellules bactériennes avec l’alginate.
Transférez la suspension dans un tube, vortex pour disperser le contenu et placez-la sur de la glace pour éviter la dégradation enzymatique.
Mesurez la densité optique, ou DO, pour déterminer la densité bactérienne.
Ajouter la suspension bactérienne à la solution d’acide-borate et mélanger pour hydrolyser l’alginate en monomères d’acide uronique.
Ajoutez du carbazole, un réactif chromogène, et incubez. Dans des conditions acides, le réactif réagit avec les acides uroniques pour former des complexes colorés.
Mesurez l’absorbance pour quantifier les niveaux d’acide uronique, qui reflètent la concentration d’alginate.
À l’aide d’une courbe standard, déterminez la concentration d’alginate, puis divisez-la par la densité cellulaire bactérienne mesurée pour calculer la production d’alginate par unité de biomasse.
Pour commencer l’essai de carbazole d’acide uronique, identifiez une seule colonie à partir d’une culture pure de la souche souhaitée à tester et choisissez la colonie à l’aide d’un cure-dent stérile.
Placez le cure-dent dans un tube à essai de culture contenant cinq millilitres de PIB. Cultivez dans un incubateur à 37 degrés Celsius pendant 24 heures. Après l’incubation, ajouter une aliquote du bouillon PIB de culture sur une plaque PIA préchauffée.
À l’aide d’un épandeur de cellules stériles, étalez le bouillon sur l’assiette et faites-le pousser à 37 degrés Celsius pendant 24 heures. À l’aide d’un contrôleur de pipette et d’une pipette stérile de 50 millilitres, ajoutez du chlorure de sodium à 0,85 % sur la pelouse des adultes et prélevez l’échantillon en raclant la plaque à l’aide d’un épandeur de cellules. Aspirez l’échantillon à l’aide d’une pipette fraîche de 50 millilitres et transférez-le dans un tube de prélèvement de 50 millilitres.
Vortex l’échantillon à puissance élevée pour mélanger et placer les échantillons sur de la glace. Pour mesurer la DO 600 des échantillons, il faut d’abord blanchir le spectrophotomètre à l’aide d’un millilitre de chlorure de sodium à 0,85 %. Ajoutez ensuite un millilitre de l’échantillon dans une nouvelle cuvette jetable et lisez la DO. Répétez cette étape deux fois pour obtenir un triplé de lectures pour chaque échantillon.
Ajoutez maintenant trois millilitres de la solution de borate d’acide sulfurique dans des tubes de culture et laissez reposer sur de la glace. Ajoutez lentement 350 microlitres de l’échantillon collecté au mélange acide dans les tubes à essai. Après un bref tourbillon à basse température, ajoutez 100 microlitres de solution de carbazole et d’éthanol à 0,1 % au mélange d’échantillon d’acide.
Fermez le tube et faites vortex à vitesse moyenne pendant cinq secondes. Placez ensuite dans un bain sec à 55 degrés Celsius pendant 30 minutes. Après l’incubation, agitez brièvement les tubes à puissance élevée et laissez-les refroidir pendant cinq minutes.
Utilisez le tube contenant 0,85 % de chlorure de sodium comme blanc pour le spectrophotomètre. Ajoutez ensuite un millilitre du mélange dans une cuvette propre et lisez le DO des échantillons à 530 nanomètres sur un spectrophotomètre. Préparer une courbe standard en mesurant la DO 530 des dilutions en série de concentrations connues d’acide d-mannuronique.
Répétez deux fois et extrayez une équation linéaire de ces lectures. Calculez la concentration d’alginate dans chaque échantillon à l’aide de la courbe standard et divisez la concentration d’alginate de l’équation linéaire par DO 600 pour obtenir la quantité totale d’alginate par DO 600.