Name: Un modèle murin de lAssay Pocket cornée pour létude de langiogenèse (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-08-18T12:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 13 s
Description: Découvrez l'assay pocket cornée chez la souris pour étudier l'angiogenèse induite par le basic FGF. Cette méthode reproduisible permet d'observer la croissance vasculaire depuis les vaisseaux limbiques vers la pastille implantée.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Notre recherche est soutenu par le Programme de recherche intra-muros des NIH, l&#39;Institut National Eye.

Tous les équipements et les réactifs utilisés sont stériles. Le protocole a été approuvé par le soin des animaux et utilisation comité (ACUC) à l'IEN / NIH (protocole de l'étude des animaux IEN-553), et a été réalisée selon les directives du NIH et des règlements. 1. Produire de l'angiogenèse facteur contenant des pastilles Dans cette partie, les pastilles contenant le facteur angiogénique d'intérêt sont préparés. <ol><li> Faire 10% (p / v) de sucralfate avec PBS. Stocker sous la température ambiante. </li><li> Faire 12% (p / v) de poly-HEMA avec de l'éthanol absolu. Stocker sous la température ambiante. </li><li> Faire 1 ug / ul solution de bFGF. Conserver dans -80 ° C. </li><li> Pour faire 50 boulettes, mélangez 5 pl de poly-HEMA, 1 microlitre de sucralfate et 4 pl de solution de stock de bFGF, vortex soigneusement. </li><li> Placer un morceau de parafilm nettoyage dans une boîte de Pétri, l'exposer sous la lumière UV pendant 15 min dans une hotte de culture de tissus. Baisse de 0,2 ul du mélange de solution sur le parafilm pour une pastille. Ainsi, 10 ul du mélange solution devrait rendement de 50 boulettes. Laissez les granulés secs à température ambiante pendant 1-2 heures. Les granulés séchés peuvent être stockés dans 4 oC pendant plusieurs jours, ou -80 ° C pendant plusieurs mois. </li><li> À l'usage, un levier et ramasser les boulettes avec le bout d'une paire de pinces. Soyez extrêmement prudent pour ne pas les casser ou de les faire bondir. </li></ol> 2. La réalisation du test de la souris de poche cornée Dans cette partie, nous allons démontrer comment faire une poche dans la cornée de souris, et comment insérer une pastille dans la poche. Le facteur angiogénique contenues dans le culot seront libérés progressivement vers les zones environnantes de la cornée (fig. 1). Dans cette démonstration, nous utilisons de 8 semaines féminine C57/BL6 souris. <ol><li> La souris est profondément anesthésié systématiquement avec le mélange de kétamine (75 mg / kg) et de xylazine (5mg/kg, injection ip). Cela permet de garder la souris sous un état d'anesthésie pendant 30-60 min. Anesthésique topique (0,5% proparacaïne HCl) est appliquée à la cornée. Après 5 min, corriger un œil sous un microscope à dissection. </li><li> Une coupe très doux est faite au milieu de la cornée 1,2 -1,4 mm de la cornée du limbe (comme illustré dans la figure 1) avec un couteau de Graefe cataracte. Soyez extrêmement prudent de ne pas couper à travers la cornée. </li><li> Une poche est faite sous la couche de l'épithélium de la cornée par horizontalement insérant le couteau dans le milieu de la cornée et l'extension du couteau vers l'attentivement limbe (Fig.1). La taille de la poche doit être assez grande pour accueillir l'un des facteurs angiogéniques granulés contenant. Soyez extrêmement prudent à ne pas percer à travers la cornée. </li><li> Insérez une pastille avec une paire de pince dans la poche lentement. Essayez de faire la boulette aussi plate que possible. </li><li> Après l'implantation de la pastille, une pommade ophtalmique antibiotique topique est appliqué à l'œil. Les instruments sont essuyés avec des tampons d'alcool de 70% entre les animaux. </li><li> Déplacez la souris à un endroit chaud et sec et de le surveiller, jusqu'à ce qu'il soit capable de maintenir une posture droite, puis le ramener dans sa cage à la maison. Analgésiques systémiques (par exemple, buprénorphine, 2 mg / kg, par injection ip) et pommade antibiotique (par exemple la gentamicine) sont donnés deux fois par jour pendant 2 jours après la chirurgie et la souris est étroitement surveillée pendant 3 jours. La guérison est attendue pour compléter dans les 48 premières heures post-opératoires. L'œil avec la poche sera examiné sous un champ lampe à fente entre les jours de 40 à 10 biomicro après l'implantation de granules. </li></ol> 3. Les résultats représentatifs <ol><li> Sept jours après l'implantation de granulés, la souris est anesthésiée par voie systémique et topique tel que décrit en 2.1. </li><li> Observez les vaisseaux sanguins dans la cornée induite par le facteur angiogénique sous un microscope à dissection. Dans la cornée traités avec le véhicule, pas de croissance des vaisseaux sanguins peut être observée (Fig. 2A, traité avec le véhicule cornée). Dans la cornée traitée avec le bFGF, l'angiogenèse robuste peut être vu (figure 2B). La croissance des vaisseaux sanguins peuvent être évalués en utilisant la longueur maximale des vaisseaux sanguins (des vaisseaux limbiques normale au sommet des nouveaux navires), et les superficies totales des vaisseaux sanguins (Fig. 2B, délimitée par une ligne rouge en pointillés dans le bFGF traités cornée). Autres méthodes de quantification ont également été décrites 2,5. </li></ol><img src="/files/ftp_upload/3077/3077fig1.jpg" alt="Figure 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figure 1"> Figure 1. Une cornée. Normal avec coloration H &amp; E. Aucun navire de sang existe dans une cornée normale. B. Faire une poche sous la couche épithélium de la cornée. C. Intégrer une pastille dans la poche. D. Le facteur angiogénique est libéré à partir du culot, et de nouveaux vaisseaux sanguins se développer à partir des vaisseaux normaux limbique. <img src="/files/ftp_upload/3077/3077fig2.jpg" alt="Figure 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figure 2"> Figure 2. Résultat représentatif cinq jours après implantation de la pastille. Une. Cornée avec un culot contenant le seul véhicule. Aucune formation de nouveaux vaisseaux sanguins dans la cornée. Seuls les pré-existante normale vaisseaux limbiques sont visibles. B. Cornée avec un culot contenant le bFGF. Robuste nouveaux vaisseaux sanguins (dot-alignés) est née de la pré-existante normale vaisseaux limbiques.

<ol><li>Cao, Y., Linden, P., Shima, D., Browne, F., Folkman, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+angiogenic+activity+and+hypoxia+induction+of+heterodimers+of+placenta+growth+factor%2Fvascular+endothelial+growth+factor%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+clinical+investigation%22%5BJournal%5D)">In vivo angiogenic activity and hypoxia induction of heterodimers of placenta growth factor/vascular endothelial growth factor.</a> The Journal of clinical investigation. 98, 2507-2511 (1996).</li>
<li>Rogers, M. S., Birsner, A. E., D'Amato, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+mouse+cornea+micropocket+angiogenesis+assay%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">The mouse cornea micropocket angiogenesis assay.</a> Nature. 2, 2545-2550 (2007).</li>
<li>Poche, R. A., Saik, J. E., West, J. L., Dickinson, M. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+mouse+cornea+as+a+transplantation+site+for+live+imaging+of+engineered+tissue+constructs%5BTitle%5D)+AND+%22Cold+Spring+Harbor+protocols%22%5BJournal%5D)">The mouse cornea as a transplantation site for live imaging of engineered tissue constructs.</a> Cold Spring Harbor protocols. , 5416-54 (2010).</li>
<li>Zhang, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((VEGF-B+is+dispensable+for+blood+vessel+growth+but+critical+for+their+survival%2C+and+VEGF-B+targeting+inhibits+pathological+angiogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">VEGF-B is dispensable for blood vessel growth but critical for their survival, and VEGF-B targeting inhibits pathological angiogenesis.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. , 106-6152 (2009).</li>
<li>Tong, S., Yuan, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dose+response+of+angiogenesis+to+basic+fibroblast+growth+factor+in+rat+corneal+pocket+assay%3A+I.+Experimental+characterizations%5BTitle%5D)+AND+%22Microvascular+research%22%5BJournal%5D)">Dose response of angiogenesis to basic fibroblast growth factor in rat corneal pocket assay: I. Experimental characterizations.</a> Microvascular research. 75, 10-15 (2008).</li>
<li>Muthukkaruppan, V., Auerbach, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Angiogenesis+in+the+mouse+cornea%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Angiogenesis in the mouse cornea.</a> Science. 205, 1416-1418 (1979).</li>
<li>Ziche, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Corneal+assay+for+angiogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+molecular+medicine%22%5BJournal%5D)">Corneal assay for angiogenesis.</a> Methods in molecular medicine. 46, 131-142 (2001).</li>
<li>Ziche, M., Morbidelli, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+corneal+pocket+assay%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+molecular+biology%22%5BJournal%5D)">The corneal pocket assay.</a> Methods in molecular biology. 467, 319-329 (2009).</li>
</ol>

Aucun conflit d&#39;intérêt déclaré.

La cornée de souris test poche modèle a été décrit pour la première en 1979 par Muthukkaruppan VR et Auerbach R 6. Des protocoles détaillés ont été publiés par différents laboratoires 2,3,7,8. Notre laboratoire a modifié et utilisé cette méthode dans nos études depuis de nombreuses années 4. Le dosage de la souris de poche cornée est un modèle relativement simple avec grande reproductibilité. Un autre avantage de ce modèle est que, depuis la cornée manque normalement les vaisseaux sangui...

<table border="1"><tbody><tr><th> Équipement </th><th> Société </th><th> Le numéro de catalogue </th></tr><tr><td> Microscope à dissection </td><td> Instruments de précision du monde </td><td> PZMIV-BS </td></tr><tr><td> Von Graefe la cataracte couteau (lame de 1.5x25mm, plat) </td><td> Ambler chirurgicale </td><td> 3401E </td></tr><tr><td> Dumont # 5 forceps </td><td> Outils Fine Science </td><td> 11252-50 </td></tr><tr><td> La lampe à fente </td><td> Zeiss </td><td> 30 SL-M </td></tr></tbody></table> Equipements Tableau 1. <table border="1"><tbody><tr><th> Réactifs </th><th> Société </th><th> Catalogue # </th><th> Commentaires </th></tr><tr><td> bFGF (basic fibroblast growth factor) </td><td> Peprotech INC </td><td> 100-18B </td><td></td></tr><tr><td> Le sucralfate (saccharose octasulfate-complexe d&#39;aluminium) </td><td> Sigma </td><td> S0652 </td><td> 10% dans le PBS </td></tr><tr><td> poly-HEMA (Poly (2-hydroxyéthyl méthacrylate)) </td><td> Sigma </td><td> P3932 </td><td> 12% dans l&#39;éthanol </td></tr></tbody></table> Réactifs Tableau 2. Et les matériaux

un modèle murin de l&#39;assay pocket cornée pour l&#39;étude de l&#39;angiogenèse

A Mouse Model of the Cornea Pocket Assay for Angiogenesis Study

Une cornée normale est clair des tissus vasculaires. Toutefois, les vaisseaux sanguins peuvent être amenées à se développer et survivre dans la cornée lors de puissants facteurs angiogéniques sont administrés 1. Cette unicité a fait l&#39;essai de la poche cornée l&#39;un des modèles les plus utilisés pour les études de l&#39;angiogenèse. La cornée compose de multiples couches de cellules. Il est donc possible d&#39;intégrer un culot contenant le facteur angiogénique d&#39;intérêt dans la cornée pour enquêter sur ses effets angiogéniques 2,3. Ici, nous offrons une démonstration étape par étape sur la manière de (I) produisent le facteur angiogénique granulés contenant (II) d&#39;intégrer le culot dans la cornée (III) d&#39;analyser l&#39;angiogénèse induite par le facteur angiogénique d&#39;intérêt. Depuis le facteur de croissance fibroblastique de base (bFGF) est connu comme l&#39;un des facteurs les plus puissants angiogéniques 4, il est utilisé ici pour induire l&#39;angiogenèse dans la cornée.

La cornée est unique en ce qu&#39;il manque les tissus vasculaires. Cependant, une forte croissance des vaisseaux sanguins et la survie peut être induite dans la cornée par de puissants facteurs angiogéniques. Par conséquent, la cornée peut fournir avec nous un outil précieux pour les études de l&#39;angiogenèse. Ce protocole montre comment effectuer le modèle de souris de dosage poche cornée et la façon d&#39;évaluer l&#39;angiogenèse induite par des facteurs angiogéniques en utilisant ce modèle.

Un modèle murin de l&#39;Assay Pocket cornée pour l&#39;étude de l&#39;angiogenèse

Une cornée normale est dépourvue de tissus vasculaires. Cependant, des vaisseaux sanguins peuvent être induits pour croître et survivre dans la cornée lorsque des facteurs angiogéniques puissants sont...

L'objectif général de cette procédure est d'utiliser le modèle d'essai de poche cornéenne le plus courant pour évaluer l'effet angiogénique du FGF basique. Cela est réalisé en créant une poche dans la cornée et en insérant un comprimé de FGF basique dans cette poche. Le FGF basique est ensuite libéré à partir du comprimé et induit la formation de nouveaux vaisseaux sanguins à partir des vaisseaux limbaux.En fin de compte, ce protocole peut induire une croissance robuste de nouveaux vaisseaux sanguins à partir des vaisseaux limbaux en direction de la pastille de FGF basique. Bonjour, je suis Shuan du laboratoire du Dr. Shiley à l'Institut National INIH. Le principal avantage de ce modèle est qu'il s'agit d'un modèle relativement simple offrant une forte reproductibilité.Un autre avantage est que, puisque la cornée normale ne possède pas de vaisseaux sanguins, le fond est très faible. Nous avons maintenant une idée générale du modèle. Je vais vous montrer étape par étape comment induire la maladie de la population cornéenne.Commençons. Pour préparer cette procédure, préparez les solutions suivantes : une solution saturée à 10 % poids par volume, du PBS à 12 % poids par volume, du poly-héma et de l'éthanol, ainsi qu'un microgramme par microlitre de FGF basique. Le FGF basique doit être conservé à moins 80 degrés Celsius, mais les deux autres solutions peuvent être conservées à température ambiante.Pour préparer 50 pastilles de facteurs angiogéniques, mélanger cinq microlitres de solution de poly-héma, un microlitre de solution sate et quatre microlitres de solution de FGF basique dans un tube PCR de 200 microlitres, puis vortexer le mélange de manière homogène. Placer ensuite un morceau de parfum dans une boîte de Pétri et déposer des gouttes de 0,2 microlitre du mélange sur le parfum.Chaque goutte va sécher en un comprimé. Laisser sécher les comprimés à température ambiante pendant une à deux heures. Les comprimés séchés peuvent être conservés à quatre degrés Celsius pendant plusieurs jours ou à moins 80 degrés Celsius pendant plusieurs mois.Pour utiliser les pastilles, les détacher délicatement du param à l’aide d’une pince, en faisant très attention de ne pas les casser ni les faire jaillir. Après avoir anesthésié une souris à l’aide d’un mélange de kétamine et de xylazine, utiliser une pipette pour appliquer 50 microlitres de chlorhydrate de propané à 0,5 % sur la cornée. Attendre cinq minutes, puis placer la souris sous un microscope stéréo de manière à ce qu’un œil se trouve directement sous l’objectif.À l’aide d’un couteau stérile von Graefe pour cataracte, effectuez une incision très douce au milieu de la cornée, à environ 1,2 à 1,4 millimètre de la limite cornéenne. Veillez extrêmement à ne pas traverser complètement la cornée. Créez ensuite une poche sous la couche épithéliale de la cornée en insérant horizontalement le couteau dans l’incision et en l’étendant soigneusement.Réalisez une poche suffisamment grande pour accueillir une pastille de FGF basique. Veillez une fois de plus à ne pas percer la cornée. Placez la pastille sur la cornée et pliez-la deux fois.À l’aide de pinces, insérez lentement le culot dans la poche, puis aplatissez-le autant que possible à l’aide des pinces. Pour terminer la procédure, utilisez un applicateur à embout ophtalmique afin de couvrir entièrement l’œil. Appliquez une pommade ophtalmique antibiotique topique, puis déplacez la souris vers un endroit chaud et sec. Lorsque la souris est capable de maintenir une posture droite, remettez-la dans sa cage d’origine deux fois par jour pendant sa période de récupération.Appliquer des analgésiques systémiques tels que la buprénorphine et une pommade antibiotique topique sur l'œil entre quatre et dix jours après l'implantation du comprimé, anesthésier la souris et examiner l'œil. Au biomicroscope à fente, des vaisseaux sanguins dans la cornée induits par le facteur angiogénique ont été observés au microscope stéréoscopique, ainsi que sur une cornée traitée uniquement avec le véhicule. Aucune croissance de vaisseaux sanguins n'a été observée dans une cornée traitée avec le FGF basique, preuve d'une absence d'angiogenèse.La croissance de nouveaux vaisseaux sanguins a été importante. La croissance des vaisseaux sanguins a été évaluée en mesurant leur longueur maximale entre les vaisseaux limbaux normaux et l'extrémité supérieure des nouveaux vaisseaux. De même, la surface totale des vaisseaux sanguins a également été mesurée.Vous voyez, il s'agit d'une procédure relativement simple. Une fois maîtrisée, elle peut être réalisée en cinq minutes pour un œil. Lors de cette procédure, une attention particulière doit être portée, notamment lors de la création de la poche et de l'insertion de la compresse dans la poche.Le couteau doit être manipulé avec précision afin de ne pas percer la cornée. Merci donc de votre attention. Bonne chance.

a-mouse-model-of-the-cornea-pocket-assay-for-angiogenesis-study

Research

Recherche

JoVE Journal

Medicine

Médecine

Adulte normale vascularisé tissus de mammifères qui manque de l'angiogenèse physiologique et qui n'a pas été exposé à une intervention chirurgicale est utilisée pour étudier: (i) l'initiation et le développement de l'angiogenèse après administration intrapéritonéale d'agents de test, et (ii) la modification de l'angiogenèse après l'administration systémique de certains agents de test.

Assay Rat angiogenèse Mésentère

Cette vidéo démontre le développement d’un modèle ex vivo de germination choroïdienne pour étudier l’angiogenèse microvasculaire oculaire. L’essai consiste à cultiver des explants d’yeux de souris contenant le tissu choroïde attaché à la sclérotique et à l’épithélium pigmentaire rétinien dans des conditions spécifiques qui favorisent la germination microvasculaire choroïdienne.

Essai de germination choroïde pour étudier la prolifération microvasculaire oculaire ex vivo

Néovascularisation (NV) de la cornée peut compliquer multiples pathologies visuelles. Utilisant un modèle de lésion alcalin brûlage dirigé, un niveau quantifiable de la SA de la cornée peut être produite pour l'étude mécaniste de la SA de la cornée et l'évaluation des thérapies potentielles pour les troubles néovasculaire.

Un Alkali-brûlures modèle de néovascularisation cornéenne chez la souris

Le protocole décrit l'essai de micropoche de la cornée tel que développé chez la souris.

La cornée micropoche test: Un modèle de l&#39;angiogenèse dans l&#39;oeil de la souris

Ici, nous présentons le protocole de néovascularisation choroïdienne induite par laser (CNV) de souris, un modèle expérimental qui recrée les caractéristiques vasculaires de la dégénérescence maculaire liée à l’âge (DMLA) néovasculaire. Une fois maîtrisé, il peut induire de manière fiable et efficace la CNV en tant que système modèle pour tester diverses mesures expérimentales.

Un modèle de souris pour induite par laser néovascularisation choroïdienne

La néovascularisation IRIS, une complication fréquente de la maladie ischémique de la rétine, peut conduire à vue en danger de glaucome néovasculaire. Nous décrivons ici un protocole murin pour induire la néovascularisation iris expérimentaux qui peut-être être utilisée pour l’évaluation non invasive de substances modulant l’angiogenèse.

Induite par la ponction de néovascularisation Iris comme un modèle de souris de Rubeosis Iridis

Ici, nous présentons un protocole pour détacher les cellules endothéliales cornéennes (CEC) de la membrane de Descemet (DM) à l’aide d’un neodymium:YAG (Nd:YAG) laser comme modèle de maladie ex vivo pour la kératompathie bullous (BK).

Développement d’un modèle expérimental non invasif assisté au laser de la perte de cellules endothéliales cornéennes

Ce protocole présente l’essai choroïde de germination, un modèle ex vivo de prolifération microvasculaire. Cet essai peut être utilisé pour évaluer les voies impliquées dans la prolifération des micro-vaisseaux choroïdiens et évaluer les traitements médicamenteux à l’aide de tissus de souris sauvages et génétiquement modifiés.

Un ex Vivo Choroid Sprouting Assay de l’angiogenèse microvasculaire oculaire

Ce protocole se concentre sur la néovascularisation cornéenne induite par les brûlures alcalines chez la souris. La méthode génère un modèle de maladie cornéenne reproductible et contrôlable pour étudier l’angiogenèse pathologique et les mécanismes moléculaires associés et pour tester de nouveaux agents pharmacologiques pour prévenir la néovascularisation cornéenne.

Un modèle murin pour la néovascularisation cornéenne par brûlure alcaline

Nous proposons ici trois méthodes différentes pour endommager les fibres sensorielles qui innervent la cornée. Ces méthodes facilitent l’étude de la régénération axonale chez la souris. Ces trois méthodes, adaptables à d’autres modèles animaux, sont idéales pour l’étude de la physiologie et de la régénération de l’innervation cornéenne.

Trois stratégies pour induire la kératite neurotrophique et la régénération nerveuse dans la cornée murine

Cette étude présente le test de migration bidimensionnel (2D) et le test de germination de sphéroïdes tridimensionnel (3D), ainsi que leurs méthodes d’analyse respectives en aval, y compris l’extraction d’ARN et l’immunocytochimie, comme des tests appropriés pour étudier l’angiogenèse in vitro.

Étude de l’angiogenèse aux niveaux fonctionnel et moléculaire en exploitant le test de migration des plaies par égratignures et le test de germination des sphéroïdes

Découvrez l'assay pocket cornée chez la souris pour étudier l'angiogenèse induite par le basic FGF. Cette méthode reproduisible permet d'observer la croissance vasculaire depuis les vaisseaux limbiques vers la pastille implantée.

Un modèle murin de l'Assay Pocket cornée pour l'étude de l'angiogenèse

Explorer plus de vidéos