Name: Analyse de la fusion membranaire médiée SNARE en utilisant un dosage enzymatique cellulaire Fusion (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-10-19T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 19 s
Description: Découvrez un dosage enzymatique cellulaire pour quantifier la fusion membranaire médiée par SNARE via l'expression de β-galactosidase. Cette méthode permet d'analyser plusieurs combinaisons de protéines SNARE simultanément.

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Ce travail est soutenu par des fonds de démarrage de l&#39;Université de Louisville et CA135123 du National Institutes of Health (au CH).

1. Culture cellulaire et transfection <ol><li> Cellules COS-7 sont cultivées dans du milieu de Dulbecco Modified Eagle (DMEM) supplémenté avec 4,5 g / l de glucose et 10% de sérum fœtal bovin (FBS). </li><li> Transfection de plasmide est fait avec la Lipofectamine conformément aux instructions du fabricant (Invitrogen). </li></ol> 2. Fluorescence Analyse microscopique d&#39;expression à la surface cellulaire SNARE <ol><li> Le jour avant la transfection, 3 × 10 4 cellules COS-7 sont ensemencées sur des lamelles de verre stériles de 12 mm (Fisher Scientific) contenues dans des plaques 24 puits. </li><li> Pour v-cellules dans chaque puits, 0,25 pg du plasmide qui code tTA (pTet-Off, CLONTECH) est co-transfecté avec 0,25 ug des plasmides qui expriment retournées Vamps. </li><li> Pour T-cellules dans chaque puits, 0,25 ug de plasmide codant TRE-LacZ (PBI-G, CLONTECH) est co-transfecté avec 0,25 pg de chacun des plasmides qui expriment retournées SNAP-25 et syntaxins 1 ou 4. </li><li> 24 h après le transfection, les cellules sont fixées avec du paraformaldéhyde 4% dans du PBS + + (PBS additionné de 0,1 g / l de CaCl 2 et 0,1 g / l de MgCl 2) pendant 10 min, puis bloqué dans FBS à 10% dans du PBS + + pendant 30 min. </li><li> Les cellules sont incubées pendant 1,5 heure avec les 9E10 anti-Myc anticorps monoclonaux (soigné surnageant de culture d&#39;hybridome). </li><li> Après quatre lavages avec du PBS + +, les cellules sont incubées pendant 1 heure avec FITC anticorps secondaires conjugués (Jackson Laboratories Immunoresearch) à une dilution de 1:500. </li><li> Après quatre lavages avec du PBS + +, les cellules marquées sont montés dans Prolongez réactif antifade Gold (Invitrogen). </li><li> Les images confocales sont collectées sur un microscope confocal à balayage laser Olympus. Les images sont traitées avec le logiciel Adobe Photoshop. </li></ol> 3. Analyse par FACS de l&#39;expression à la surface cellulaire SNARE <ol><li> Le jour avant la transfection, 2 × 10 5 cellules COS-7 sont ensemencées dans chaque puits de plaques 6 puits. </li><li> 24 h après le transfection avec la position relevée SNARE, pTet-Off et pBI-G plasmides, les cellules sont fixées avec du paraformaldéhyde à 1% dans du PBS + + pendant 15 min, puis bloqué dans FBS à 10% dans du PBS + + pendant 15 min. </li><li> Les cellules sont incubées avec les anti-Myc 9E10 anticorps monoclonaux pendant 60 min. </li><li> Après trois lavages avec du PBS + +, les cellules sont marquées avec FITC anticorps secondaires conjugués (1:200 dilution) pendant 45 min. </li><li> Après trois lavages avec du PBS + +, les cellules sont raclées des plaques avec un grattoir à cellules. </li><li> 15,000 cellules sont analysées à l&#39;aide d&#39;un cytomètre en flux FACSCalibur (BD Biosciences). L&#39;intensité de fluorescence moyenne de chaque échantillon est obtenue en utilisant le logiciel Pro CellQuest. </li></ol> 4. Dosage enzymatique Fusion cellulaire <ol><li> Le jour avant la transfection, 1,2 × 10 6 cellules COS-7 sont ensemencées dans chaque plat de 100 mm de culture de tissu, et 2 × 10 5 cellules COS-7 sont ensemencées dans chaque puits de plaques 6 puits. </li><li> Pour v-cellules, de 0,5 à 5 ug de chacun de Flipped plasmide VAMP est co-transfecté avec 5 pg de pTet-Off dans les cellules de chaque boîte de culture de 100 mm. Les cellules témoins sont co-transfectées avec le vecteur vide pcDNA3.1 (+) et pTet-Off. Pour éviter que la N-glycosylation des Vamps 1, 4, 5, 7 et 8, la tunicamycine (10 pg / ml) est inclus dans un milieu de culture cellulaire pendant la transfection. </li><li> Pour T-cellules dans chaque puits des plaques de 6 puits, 1 ug d&#39;retournée SNAP-25 plasmide et pBI-G sont co-transfectées avec 0,5 ug de plasmide ou retourné syntaxin1 0,05 pg de plasmide syntaxin4 retourné. </li><li> 24 heures après la transfection, les cellules sont v-détaché de boîtes de culture avec l&#39;enzyme cellulaire sans tampon de dissociation (Invitrogen). Cellules individuelles sont comptées avec un hémocytomètre et remises en suspension dans du tampon HEPES DMEM supplémenté avec 10% de FBS, 6,7 mg / ml et 0,67 tunicamycine mM de DTT. </li><li> 4,8 × 10 5 cellules remises en suspension v-sont ajoutés à chaque puits contenant déjà les t-cellules. </li><li> Après 6, 12 ou 24 heures chez le rat 37 ° C dans 5% de CO2 </sub&gt;, l&#39;expression de la β-galactosidase est mesurée par le système β-galactosidase test avec un tampon de lyse Reporter conformément aux instructions du fabricant (Promega). Brièvement, les cellules sont lavées deux fois avec du PBS, puis lysées dans le tampon de lyse Reporter. Les lysats cellulaires sont mélangés avec un volume égal de tampon de dosage × 2. Comme un contrôle à blanc, le tampon de lyse Reporter est mélangé avec le tampon de dosage × 2. </li><li> Après 90 min, la réaction colorimétrique est arrêtée par addition de carbonate de sodium 1 M. </li><li> L&#39;absorbance à 420 nm est mesurée en utilisant un spectrophotomètre HITACHI 100-40. </li></ol>

<ol><li>Rothman, J. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanisms+of+intracellular+protein+transport%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Mechanisms of intracellular protein transport.</a> Nature. 372, 55-63 (1994).</li>
<li>Jahn, R., Lang, T., Sudhof, T. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Membrane+fusion%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Membrane fusion.</a> Cell. 112, 519-533 (2003).</li>
<li>Bonifacino, J. S., Glick, B. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+mechanisms+of+vesicle+budding+and+fusion%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">The mechanisms of vesicle budding and fusion.</a> Cell. 116, 153-166 (2004).</li>
<li>Jahn, R., Scheller, R. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((SNAREs--engines+for+membrane+fusion%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">SNAREs--engines for membrane fusion.</a> Nature. 7, 631-643 (2006).</li>
<li>Weber, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((SNAREpins%3A+minimal+machinery+for+membrane+fusion%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">SNAREpins: minimal machinery for membrane fusion.</a> Cell. 92, 759-772 (1998).</li>
<li>Hu, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fusion+of+cells+by+flipped+SNAREs%5BTitle%5D)+AND+%22Science+%28New+York%2C+N.Y%29%22%5BJournal%5D)">Fusion of cells by flipped SNAREs.</a> Science (New York, N.Y). 300, 1745-1749 (2003).</li>
<li>Hu, C., Hardee, D., Minnear, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Membrane+fusion+by+VAMP3+and+plasma+membrane+t-SNAREs%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+cell+research%22%5BJournal%5D)">Membrane fusion by VAMP3 and plasma membrane t-SNAREs.</a> Experimental cell research. 313, 3198-3209 (2007).</li>
<li>Hasan, N., Corbin, D., Hu, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fusogenic+Pairings+of+Vesicle-Associated+Membrane+Proteins+%28VAMPs%29+and+Plasma+Membrane+t-SNAREs+-+VAMP5+as+the+Exception%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+one%22%5BJournal%5D)">Fusogenic Pairings of Vesicle-Associated Membrane Proteins (VAMPs) and Plasma Membrane t-SNAREs - VAMP5 as the Exception.</a> PloS one. 5, e14238(2010).</li>
<li>Gossen, M., Bujard, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tight+control+of+gene+expression+in+mammalian+cells+by+tetracycline-responsive+promoters%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Tight control of gene expression in mammalian cells by tetracycline-responsive promoters.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 89, 5547-5551 (1992).</li>
<li>Hanson, P. I., Heuser, J. E., Jahn, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neurotransmitter+release+-+four+years+of+SNARE+complexes%5BTitle%5D)+AND+%22Current+opinion+in+neurobiology%22%5BJournal%5D)">Neurotransmitter release - four years of SNARE complexes.</a> Current opinion in neurobiology. 7, 310-315 (1997).</li>
<li>McMahon, H. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cellubrevin+is+a+ubiquitous+tetanus-toxin+substrate+homologous+to+a+putative+synaptic+vesicle+fusion+protein.+%5Bsee+comments%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Cellubrevin is a ubiquitous tetanus-toxin substrate homologous to a putative synaptic vesicle fusion protein. [see comments.</a> Nature. 364, 346-349 (1993).</li>
<li>Steegmaier, M., Klumperman, J., Foletti, D. L., Yoo, J. S., Scheller, R. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vesicle-associated+membrane+protein+4+is+implicated+in+trans-Golgi+network+vesicle+trafficking%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+biology+of+the+cell%22%5BJournal%5D)">Vesicle-associated membrane protein 4 is implicated in trans-Golgi network vesicle trafficking.</a> Molecular biology of the cell. 10, 1957-1972 (1999).</li>
<li>Zeng, Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+synaptobrevin%2FVAMP+homologous+protein+%28VAMP5%29+is+increased+during+in+vitro+myogenesis+and+present+in+the+plasma+membrane%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+biology+of+the+cell%22%5BJournal%5D)">A novel synaptobrevin/VAMP homologous protein (VAMP5) is increased during in vitro myogenesis and present in the plasma membrane.</a> Molecular biology of the cell. 9, 2423-2437 (1998).</li>
<li>Galli, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+tetanus+neurotoxin-insensitive+vesicle-associated+membrane+protein+in+SNARE+complexes+of+the+apical+plasma+membrane+of+epithelial+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+biology+of+the+cell%22%5BJournal%5D)">A novel tetanus neurotoxin-insensitive vesicle-associated membrane protein in SNARE complexes of the apical plasma membrane of epithelial cells.</a> Molecular biology of the cell. 9, 1437-1448 (1998).</li>
<li>Wong, S. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endobrevin%2C+a+novel+synaptobrevin%2FVAMP-like+protein+preferentially+associated+with+the+early+endosome%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+biology+of+the+cell%22%5BJournal%5D)">Endobrevin, a novel synaptobrevin/VAMP-like protein preferentially associated with the early endosome.</a> Molecular biology of the cell. 9, 1549-1563 (1998).</li>
</ol>

Aucun conflit d&#39;intérêt déclaré.

Le dosage de la fusion cellulaire d&#39;origine 6 détermine SNARE médiation événements de fusion de cellules par microscopie à fluorescence. Nous décrivons ici un test innovant qui permet de quantifier SNARE médiées par les événements de fusion cellulaire activé par l&#39;expression de la β-galactosidase et la mesure spectrométrique. En utilisant ce test, nous avons l&#39;habitude d&#39;analyser 15 à 20 V et t-SNARE combinaisons en une seule expérience. En utilisant la cytométrie en flux pour mesurer l&#39;ex...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nom du réactif et le matériel </td><td> Entreprise </td><td> Numéro de catalogue </td></tr><tr><td> DMEM </td><td> Invitrogen </td><td> 12800-017 </td></tr><tr><td> Cellules COS-7 </td><td> ATCC </td><td> CRL-1651 </td></tr><tr><td> tunicamycine </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> T7765-5MG </td></tr><tr><td> pTet-Off </td><td> Clontech </td><td> K1620-A </td></tr><tr><td> pBI-G </td><td> Clontech </td><td> 6150-1 </td></tr><tr><td> lipofectamine </td><td> Invitrogen </td><td> 18324-012 </td></tr><tr><td> Sans enzyme solution de dissociation cellulaire </td><td> Invitrogen </td><td> 13151-014 </td></tr><tr><td> Lapin anti-répresseur tet anticorps polyclonal </td><td> Millipore </td><td> AB3541 </td></tr><tr><td> Conjuguée au FITC âne anti-IgG (H + L) </td><td> JacImmunoResearch KSON </td><td> 715-095-150 </td></tr><tr><td> Microscope à balayage laser confocal </td><td> Olympe </td><td> FV1000 </td></tr><tr><td> Cytomètre en flux FACSCalibur </td><td> BD Biosciences </td><td></td></tr><tr><td> β-galactosidase système de dosage enzymatique avec un tampon de lyse Reporter </td><td> Promega </td><td> E2000 </td></tr><tr><td> Modèle 100-40 spectrophotomètre UV-VIS </td><td> Hitachi </td><td> C740843 </td></tr></tbody></table>

analyse de la fusion membranaire médiée snare en utilisant un dosage enzymatique cellulaire fusion

Analysis of SNARE-mediated Membrane Fusion Using an Enzymatic Cell Fusion Assay

Les interactions des SNARE (s oluble N-éthylmaléimide facteur sensible à un ceptor re IÈCE JOINTE protéines) sur les protéines des vésicules (v-SNARE) et sur ​​les membranes cibles (t-SNARE) catalyser la fusion des vésicules intracellulaires 1-4. Essais de reconstitution sont essentiels pour disséquer le mécanisme et la régulation de la fusion membranaire médiée SNARE 5. Dans un dosage de 6,7 fusion cellulaire, les protéines sont exprimées SNARE ectopique à la surface cellulaire. Ces &quot;retourné&quot; SNARE entraînement protéines de fusion cellule-cellule, ce qui démontre que SNAREs sont suffisantes pour faire fondre les membranes cellulaires. Parce que le dosage de la fusion cellulaire est basée sur l&#39;analyse microscopique, il est moins efficace lorsqu&#39;il est utilisé pour analyser les multiples v-et t-SNARE interactions quantitativement. Nous décrivons ici un nouveau dosage 8 qui quantifie SNARE médiées par les événements de fusion cellulaire activé par l&#39;expression de la β-galactosidase. Deuxles composants du système Tet-Off expression génique 9 sont utilisées comme un système de lecture: le transactivateur de tétracycline-commandé (tTA) et un plasmide rapporteur qui code pour le gène LacZ sous le contrôle de l&#39;élément de réponse à la tétracycline (TRE-LacZ). Nous transfecter tTA en cellules COS-7 exprimant v-SNARE retournées protéines à la surface cellulaire des cellules (v) et transfecter TRE-LacZ dans les cellules COS-7 exprimant retournées t-SNARE protéines à la surface cellulaire (cellules T) . SNARE dépendant de la fusion des v-et t-cellules entraîne la liaison de tTA au TRE, l&#39;activation de la transcription de LacZ et d&#39;expression de la β-galactosidase. L&#39;activité de la β-galactosidase est quantifié en utilisant une méthode colorimétrique par absorbance à 420 nm. Les protéines de la membrane des vésicules associées (Vamps) sont v-SNARE qui résident dans différents post-Golgi compartiments vésiculaires 10-15. En exprimant Vamps 1, 3, 4, 5, 7 et 8 du même niveau, on compare leur fusion membranaireactivités à l&#39;aide du dosage enzymatique cellule de fusion. Basé sur la mesure spectrométrique, cet essai propose une approche quantitative pour l&#39;analyse de la fusion membranaire médiée SNARE et à haut débit études.

De développer un test cellulaire quantitative de fusion, nous profitons de l&#39;activation transcriptionnelle forte par la liaison de tTA au TRE. En l&#39;absence de tTA, la transcription du gène LacZ dans TRE-LacZ est silencieux. Lorsque tTA est présent, il se lie à la TRE et active la transcription de LacZ. La figure 1 montre un organigramme du test de fusion cellulaire enzymatique. tTA est transfecté dans v-cellules qui expriment v-SNARE protéines à la surface cellulaire, ...

Nous avons développé un test de fusion cellulaire qui quantifie SNARE médiées par les événements de fusion membranaire activé par l&#39;expression de la β-galactosidase.

Analyse de la fusion membranaire médiée SNARE en utilisant un dosage enzymatique cellulaire Fusion

Les interactions des protéines SNARE (soluble N-ethylmaleimide-sensitive factor attachment protein receptor) présentes sur les vésicules (v-SNARE) et sur les membranes cibles ...

L'objectif général de cette procédure est de quantifier les événements de fusion cellulaire médiés par les SNARE grâce à l'expression activée de la bêta-galactosidase. Cela est réalisé en exprimant d'abord de manière ectopique les protéines SNARE V et T à la surface de cellules COS-7. L'étape suivante de la procédure consiste à combiner les cellules exprimant les protéines SNARE V avec celles exprimant les protéines SNARE T.Cela entraîne une fusion cellulaire médiée par les SNARE et l'expression activée de la bêta-galactosidase. En fin de compte, l'activité de la bêta-galactosidase induite par la fusion cellulaire est mesurée à l'aide d'un spectrophotomètre. Le principal avantage de cette technique par rapport aux méthodes existantes, telles que le dosage de la région SAL au microscope, est qu'elle permet d'analyser plusieurs combinaisons de SNARE.Sur le plan quantitatif, bien que cette méthode puisse être appliquée pour comprendre le mécanisme et la régulation de la fusion membranaire médiée par les SNARE, elle peut également être utilisée pour des études à haut débit. La procédure sera démontrée par Doc Na Hassan, postdoctorant, et David Humphrey, technicien de mon laboratoire, la veille du chargement de la transfection.Préparer deux puits par combinaison de cellules exprimant des plasmides uniques dans des plaques de 24 puits contenant des lamelles en verre de 12 millimètres pour l'expérience sur ces lamelles. Séminer 30 000 cellules COS-7 cultivées dans du DMEM supplémenté en 4,5 grammes par litre de glucose et 10 % de FBS à transfecter. Ajouter aux cellules V, dans chaque puits, un quart de microgramme du plasmide TTA et un jeu de plasmides d'expression.Les protéines d'intérêt inversées, dans ce cas des VAMP inversées, permettent de transfecter les cellules T : ajoutez un quart de microgramme du plasmide codant pour TRE qui manque de Z, ainsi que le jeu complémentaire de plasmides codant pour les protéines d'intérêt inversées. Dans ce cas, SNAP 25, syntaxine 1 et syntaxine 4. Transfectez maintenant les cellules COS-7 avec l'agent de transfection Lipofectamine selon les instructions du fabricant, puis cultivez les cellules pendant 24 heures. Vingt-quatre heures après la transfection, fixez les cellules dans du paraformaldéhyde supplémenté pendant 10 minutes. Après la fixation, rincez les cellules trois fois avec du PBS++, puis bloquez les cellules avec du FBS supplémenté pendant 30 minutes.Après le blocage, incuber les cellules avec l'anticorps monoclonal anti-mic. Neuf E 10 pendant 30 minutes, puis après quatre lavages avec du PBS plus plus, incuber les cellules pendant une heure avec des anticorps secondaires conjugués à la fitzy à une dilution de un sur 500. Après quatre autres lavages avec du PBS plus plus, monter les cellules marquées dans un réactif anti-fade du commerce.Les cellules sont désormais prêtes pour la microscopie confocale. La veille de la transfection, ensemencez 1,2 million de cellules COST-7 dans chaque boîte de culture tissulaire de 100 millimètres et 200 000 cellules COST-7 dans chaque puits d'une plaque à six puits, pour chaque combinaison de plasmides à analyser. Préparez une culture par puits et incubez les cellules pendant 24 heures. Le jour suivant, ajoutez les plasmides destinés à la transfection : pour les cellules V, transfectez un plasmide exprimant la protéine d'intérêt inversée et cinq microgrammes de pTet-Off dans chaque boîte de culture de 100 millimètres.Transfectez les cellules contrôles dans une boîte de culture de 100 millimètres avec un vecteur vide et le gène P te off aux mêmes concentrations relatives que les cellules V. Une fois tous les plasmides ajoutés aux cellules V et aux cellules contrôles, ajoutez de la tcomycine à ces puits afin d'empêcher la N-glycosylation des vamps. Dans chaque puits des plaques à six puits, faites une co-transfection des cellules T avec un microgramme de PBIG et les plasmides complémentaires exprimant les protéines d'intérêt.Transfectez maintenant les cellules COS-7 avec du lipide selon les instructions du fabricant. Incubez ensuite les cellules pendant 24 heures ; 24 heures après la transfection, détachez les cellules V de leurs boîtes de culture à l’aide d’un tampon de dissociation cellulaire sans enzyme. Commencez par laver les cellules une fois avec 20 millilitres de PBS.Ensuite, ajoutez cinq millilitres de tampon de dissociation sans enzyme. Après une incubation de 10 minutes à température ambiante, les cellules se détacheront en tapant énergiquement sur la plaque ; vérifiez leur détachement au microscope. Si moins de la moitié des cellules se sont détachées, attendez encore cinq minutes et tapez à nouveau sur la plaque.Poursuivre l'incubation dans le tampon de détachement jusqu'à ce que plus de la moitié des cellules se soient détachées. Ensuite, compter les cellules V à l'aide d'un hémocytomètre. Puis resuspendre les cellules V à une concentration d'environ 480 000 cellules par millilitre dans du DMEM complété au tampon heis.Ajoutez maintenant un millilitre de cellules V resuspendues dans chaque puits contenant les cellules T et replacez les plaques dans l’incubateur. Après six, douze ou vingt-quatre heures de co-culture des cellules, lavez-les avec du PBS et ajoutez du tampon de lyse. Ensuite, grattez les cellules des puits et transférez-les dans des tubes pour centrifugation.Après centrifugation, transférez le surnageant dans un nouveau tube et mesurez l'expression de la bêta-galactosidase à l'aide d'un dosage disponible dans le commerce, conformément aux instructions du fabricant. Au cours de ce protocole, veillez à interrompre la réaction colorimétrique après 90 minutes en ajoutant du carbonate de sodium à une concentration d'un molaire afin de quantifier les résultats. Mesurez l'absorbance à 420 nanomètres sur un spectrophotomètre. Lorsque les cellules CO7 ont été transfectées avec des plasmides SNARE inversés, les protéines SNARE inversées ont été exprimées à la surface cellulaire.La cytométrie en flux a été utilisée pour mesurer les niveaux d'expression des protéines snare à la surface cellulaire. Afin de comparer leurs capacités de fusion membranaire, il était nécessaire que les vamps soient exprimés au même niveau. Par conséquent, la concentration de chaque plasmide snare inversé utilisé lors de la transfection a été titrée et optimisée pour la transfection.Dans de telles conditions, les VAMP 1, 3, 4, 5, 7 et huit ainsi que la syntaxine une et quatre ont été exprimés au même niveau au niveau de la surface cellulaire ; respectivement, les SNARE neuronales qui médiatisent l’exocytose synaptique ont été utilisées pour tester la faisabilité du dosage. En effet, lorsque les cellules V exprimant la VAMP deux et les cellules T exprimant la SYNTAXINE une et la SNAP 25 ont été combinées, une expression robuste de bêta-galactosidase a été détectée. Toutefois, lorsque la VAMP deux ou la SNAP 25 n’étaient pas exprimées, seule une activité basale de bêta-galactosidase a été observée, indiquant que la fusion cellulaire et l’expression de la bêta-galactosidase dépendent globalement des interactions entre les SNARE v et t. Dans l’ensemble, la SYNTAXINE une, la SNAP 25, la VAMP une, la VAMP trois et la VAMP huit ont présenté des activités de fusion comparables et les plus élevées.En revanche, l'activité basale de la bêta-GAL suggère que la combinaison de protéines n'induit pas la fusion membranaire, contrairement au cas de VAMP5 et de la syntaxine 1. Lors de la réalisation du test de fusion enzymatique, il est important de se rappeler d'ajouter l'unicamycine afin d'empêcher la N-glycosylation des protéines ESNA et de rajouter du DTT pour éviter la formation de ponts disulfure entre les protéines ESNA.Après avoir visionné cette vidéo, vous devriez bien comprendre comment réaliser le test de fusion cellulaire.

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La fusion des membranes biologiques est catalysée par des protéines de fusion spécialisées. La mesure des propriétés fusogéniques des protéines peut être obtenue par des essais de mélange de lipides. Nous présentons une méthode pour purifier l'atlastine recombinante de Drosophila, une protéine qui médiatise la fusion homotypique de l'ER, la reconstituant aux liposomes préformés, et testant la capacité de fusion.

Reconstitution assistée par détergent de Recombinant Drosophila Atlastin en Liposomes pour des essais de mélange de lipides

Ce protocole décrit une technique d’imagerie confocale permettant de détecter trois modes de fusion dans les cellules chromaffines surrénales bovines. Ces modes de fusion comprennent 1) la fusion étroite (également appelée kiss-and-run), impliquant l’ouverture et la fermeture des pores de fusion, 2) la stay-fusion, impliquant l’ouverture des pores de fusion et le maintien du pore ouvert, et 3) la shrink-fusion, impliquant un rétrécissement des vésicules fusionnées.

Microscopie confocale pour mesurer trois modes de dynamique des pores de fusion dans les cellules chromaffines surrénales

Découvrez un dosage enzymatique cellulaire pour quantifier la fusion membranaire médiée par SNARE via l'expression de β-galactosidase. Cette méthode permet d'analyser plusieurs combinaisons de protéines SNARE simultanément.

Analyse de la fusion membranaire médiée SNARE en utilisant un dosage enzymatique cellulaire Fusion

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