-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

HE

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

he_IL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Lab Manual
Chemistry
מאגרי
מאגרי
Lab Manual
Chemistry
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
Lab Manual Chemistry
Buffers

מאגרי

Skip to

Concept

Instructor Prep

Student Protocol

27,378 Views
14:31 min
March 26, 2020
AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Procedure

מקור: סמאא קורים באוניברסיטת ג'ונס הופקינס, MD, ארה"ב

  1. הכנת 50 mM NaH2PO4 Buffer, pH 7

    בחלק הראשון של ניסוי זה, תכינו תמיסת נתרן פוספט ב-pH 7.0. מונוסודיום פוספט הוא חומצה חלשה עם הבסיס המצומד, דיסודיום פוספט. פתרונות מונוסודיום פוספט לא מותאמים בדרך כלל יש pH של כ 4 - 6.

    המאגרים יעילים ביותר קרוב ל-pKa שלהם, שהוא 6.8 עד 7.2 עבור מונוסודיום פוספט. לכן, תשתמש ב- NaOH כדי לדחוף את שיווי המשקל לכיוון הבסיס המצומד מבלי לשנות את ההרכב הכולל של שיווי משקל החיץ.

    • לפני תחילת הניסוי, חשב את המסה של פוספט מונוסודיום כי תצטרך לעשות 200 מ"ל של פתרון 50 mM.

      טבלה 1: הכנת 50 mM NaH2PO4 Buffer, pH 7.0

      מסה מולרית של NaH2PO4 = 119.98 g/mol
      נפח תמיסה (מ"ל) 200
      מולאריות (mM) 50
      שומות של NaH2PO4 (mol)
      מסה דרושה (מ"ג)
      נפח התחלתי של 1 M NaOH (מ"ל)
      נפח סופי של 1 M NaOH (מ"ל)
      נפח NaOH בשימוש (מ"ל)
      נפח המים הדרוש DI (מ"ל)
      לחץ כאן להורדת טבלה 1
    • כדי להתחיל, לבשו את ציוד המגן האישי הדרוש, כולל מעיל מעבדה, משקפי בטיחות עמידים בפני התזות וכפפות. הערה: חלק זה של המעבדה משתמש ב-NaOH, שהוא חומר מאכל ורעיל. יש לנקוט משנה זהירות בעת מזיגה והובלה של NaOH.
    • מלאו בקבוק שטיפה מפלסטיק בנפח 250 מ"ל במים נטולי יונים.
    • תייגו שתי כוסות של 100 מ"ל, אחת לפסולת מימית ניטרלית ואחת לפסולת מימית בסיסית.
    • כייל את מד ה- pH שלך באמצעות המאגרים שסופקו. אחסן את הבדיקה בפתרון האחסון שלה כשתסיים.
    • Tare נייר שקילה, והשתמש במרית נקייה כדי למדוד את הכמות הנדרשת של מונוסודיום פוספט על פי החישובים שלך. רשום את הכמות המדויקת של מונוסודיום פוספט במחשב המעבדה שלך. הערה: מונוסודיום פוספט סופג לחות מהאוויר, לכן עבוד במהירות כדי לקבל מדידה מדויקת וסגור את המיכל היטב כשתסיים איתו.
    • מניחים את המונוסודיום פוספט במיכל של 400 מ"ל ומנקים את המרית עם מגבון מעבדה. זרקו את נייר השקילה ואת מגבון המעבדה לפני שתחזרו למכסה האדים.
    • השתמש בגליל מדורג כדי למדוד 175 מ"ל של מים שעברו דה-יוניזציה. יוצקים את המים לתוך של פוספט מונוסודיום ומוסיפים חטיף ערבוב מגנטי.
    • מערבבים את התמיסה עד שהמלח נמס לחלוטין והתמיסה נראית הומוגנית. זה בדרך כלל לוקח 2 - 3 דקות.
    • למדוד 15 מ"ל של מים deionized ולשפוך אותו לתוך הכד. ממשיכים לערבב את התמיסה עד שהיא נראית שוב הומוגנית (כדקה – 2 דקות). כבה את מנוע הערבוב.
    • שטפו את בדיקת ה-pH במים שעברו דה-יוניזציה, ולאחר מכן הדקו אותה בתמיסה עם החיישן שמעל מוט הערבוב.
    • הביאו גליל מדורג של 10 מ"ל וצפו בזכוכית למכסה המנוע ומדדו 10 מ"ל של 1 M NaOH. שים לב לנפח המדויק בצילינדר המדורג.
    • כסו את ה-NaOH שלכם בזכוכית השעון, והביאו אותו בזהירות למכסה המנוע שלכם.
    • המשך ערבוב תמיסת מונוסודיום פוספט. תוך כדי מעקב אחר קריאת ה-pH, השתמשו בפיפט חד פעמי כדי להוסיף באיטיות NaOH לתמיסת הערבוב בצורה טיפתית. ברגע שה-pH של החיץ מגיע ל-7.0, החזירו כל NaOH שעדיין נמצא בפיפטה לצילינדר המדורג.
    • חשב את עוצמת הקול של NaOH שהוספת למאגר. הפחת נפח זה מ- 10 מ"ל כדי לקבוע כמה מים נטולי יונים, עליך להוסיף למאגר שלך כדי להגיע לנפח תמיסה כולל של 200 מ"ל.
    • מדדו את המים שעברו דה-יוניזציה עם גליל מדורג נוסף של 10 מ"ל והוסיפו אותו לתמיסת הערבוב כדי לסיים את יצירת החיץ.
    • שטפו את חיישן ה- pH במים שעברו דה-יוניזציה, כסו אותו במכסה המלא בתמיסת האחסון ונתק או כבה את הבדיקה.
    • תייגו בקבוק פוליאתילן בנפח 250 מ"ל כמאגר מונוסודיום פוספט '50 mM, pH 7.0'. שלפו את מוט הערבוב המגנטי מהתמיסה.
    • השתמש במשפך כדי לשפוך את תמיסת החיץ לתוך הבקבוק המסומן ולסגור אותו היטב.
  2. ספקטרוסקופיית קליטה של מחלקה אדומה < נייטרלית חופשית ומאוגדת="הרחב">הרחב

    ניתן להשתמש במאגרים כדי להעריך תרכובות בערכי pH ספציפיים. בסעיף זה, תתעד את ספקטרום הספיגה של המחוון אדום נייטרלי במאגרים שונים. הצורה הפרוטונית של אדום נייטרלי היא אדומה, והצורה המפורקת היא צהובה-כתומה, כלומר הם בולעים אור ירוק וכחול-סגול, בהתאמה. לפיכך, לצורות החומציות והבסיסיות יש אורכי גל בליעה שונים. קשירת חלבון משנה את התכונות של אדום נייטרלי, ומשנה הן את ספיגתו והן את ה- pKa שלו.

    לאחר מדידת ספקטרום הספיגה של אדום נייטרלי חופשי במספר ערכי pH, תוסיפו חלבון קושר ריבופלבין, או RP, לתמיסות ותמדדו שוב את הספיגות שלהן. עוצמת הספיגה קשורה לריכוז, ולכן תשתמש בספקטרום כדי לקבוע את ה- pKa של אדום נייטרלי חופשי וקשור לאחר המעבדה.

    • צייר את הטבלה הבאה במחברת המעבדה שלך. ספרו את הקוביטות 1 עד 10 ורשמו את תשעת ערכי החומציות של המאגר שבהם תשתמשו. הקובט העשירי יהיה ריק מים נטולי יונים. הערה: תמיד להחזיק cuvettes על ידי הצדדים מרקם לנגב את הצדדים השקופים ממש לפני לשים את cuvette לתוך ספקטרופוטומטר. זכרו ליישר את הצדדים השקופים עם קרן האור בספקטרופוטומטר.

      טבלה 2: ספיגה של אדום נייטרלי חופשי וכבול

      Cuvette # Buffer pH Abs. at λmax (Free NRH+) Abs. at λmax (Bound NRH)
      1 5.0
      2 5.5
      3 6.0
      4 6.5
      5 7.0
      6 7.5
      7 8.0
      8 8.5
      9 11
      10 blank
      לחץ כאן להורדת טבלה 2
    • השג עשר קוביות וכובעים של 1.5 מ"ל ותייג את האותיות 1 עד 10 כך שיתאימו לטבלה במחשב המעבדה שלך.
    • תייגו של 25 מ"ל כ-'DIH2O' ומלאו אותה במים שעברו דה-יוניזציה.
    • שטפו את הפסולת המימית הניטרלית שלכם במורד הניקוז ותייגו מחדש את הכד כ'פסולת חיץ מימית'.
    • תייגו של 400 מ"ל עבור קצות מיקרופיפטה משומשים.
    • חבר קצה למיקרופיפטה של 1 מ"ל והשתמש בה כדי לפלוט 1000 μL של מים שעברו דה-יוניזציה לקובט 10. זהו ריק הממס שלך.
    • מקם 925 μL של חיץ ה- pH 7.0 מונוסודיום פוספט שלך בקובט 5.
    • הבא את הקוביות הריקות הנותרות לשולחן החיץ. מונחה על ידי הטבלה במחשב המעבדה שלך, לחלק 925 μL של כל חיץ לתוך הקובטה המתאימה באמצעות micropipettes המסומן. היזהר לא להשתמש באותו קצה פיפטה עבור מאגרים שונים.
    • לאחר שתסיים, החזר את המאגרים לשולחן העבודה שלך. שם, הגדר מיקרופיפטה של 200 μL כדי להוציא 75 μL, וחבר קצה למיקרופיפטה.
    • יש לחלק 75 μL של אדום נייטרלי לכל אחת מתשע קוביות החיץ. הפוך כל קובטה מספר פעמים כדי לערבב היטב את התמיסות. הערה: החלף את קצה פיפטה אם הוא נוגע בחיץ.
    • לאחר שערבבת אדום נייטרלי עם כל חיץ, צלם תמונה או רשום את צבעי הפתרונות.
    • הפעל ספקטרופוטומטר ידני ואפשר למקור האור להתחמם. ברגע שהוא מוכן, צור ניסוי חדש למדידת בליעה לעומת אורך גל עבור האדום הנייטרלי החופשי.
    • הכנס את הקובטה של מים שעברו דה-יוניזציה וקבל ספקטרום של המים שעברו דה-יוניזציה. הגדר אותו כרקע ממס או ריק.
    • לאחר מכן, הסר את הריק והכנס את הקובטה של אדום נייטרלי במאגר ה- pH הנמוך ביותר, שיהיה בעל הריכוז הגבוה ביותר של אדום נייטרלי פרוטוני.
    • רכשו ספקטרום, שאמור להראות שיא אחד חזק. זהה את אורך הגל המתאים לנקודה הגבוהה ביותר של שיא זה, או למקסימום. הקלט אורך גל זה במחשב המעבדה שלך כ- lambda max לקבלת פרוטונים חופשיים בצבע אדום נייטרלי.
    • שמור את הנתונים והסר את cuvette. רשום את הספיגה במחשב הנייד שלך, ולאחר מכן אסוף ספקטרום עבור קוביות 2 - 9 באותו הליך.
    • הקלט את אורך הגל של הנקודה האיזוסבסטית במחשב המעבדה שלך. זה המקום שבו כל הספקטרום חוצה באורך גל אחד. אם ספקטרום אינו חוצה בשלב זה, רוקנו ונקו את הקוביה, הכינו דגימה טרייה ונסו שוב.
    • לאחר שתסיים לאסוף ספקטרום עבור כל תשע הקוביות, שמור וייצא את הנתונים.
    • צור ניסוי חדש למדידת בליעה לעומת אורך גל עבור אדום נייטרלי כבול
      .
    • התאימו קצה חדש למיקרופיפטה של 200 μL והוסיפו 75 μL של תמיסת חלבון קושרת ריבופלבין לכל קובטה, כולל החסר. מוציאים את הקצה, מאבטחים את פקקי הקובט והופכים את הקובט מספר פעמים כדי לערבב את התמיסות.
    • הכנס קובטה 10 לתוך הספקטרופוטומטר והגדר אותו כריק הממס.
    • רכשו ספקטרום של דגימת ה-pH הנמוכה ביותר, וזהו את אורך הגל המתאים למקסימום של הפסגה החזקה ביותר. רשום אותו במחשב המעבדה שלך כ-lambda max של אדום נייטרלי כרוך פרוטונים.
    • רכוש ספקטרום עבור cuvettes 2 - 9 באותו אופן שבו עשית עבור דגימות אדומות ניטרליות חופשיות. רשום את העוצמות ב- lambda max עבור אדום נייטרלי הקשור לפרוטונים בטבלה שלך, יחד עם אורך הגל בנקודה האיזוסבסטית.
    • כשתסיים, שמור את הנתונים שלך, ייצא אותם לניתוח מאוחר יותר וכבה את הספקטרופוטומטר.
    • הניחו בצד את כל הציוד והשליכו את קצות הפיפטה המשומשים שלכם למיכל פסולת מאושר או לפח אשפה.
    • רוקנו את הקוביטות לתוך פסולת החיץ המימית ושטפו את הקוביטות לתוך הכד במים שעברו דה-יוניזציה.
    • רוקנו את עודפי ה-NaOH לפסולת הבסיסית ושטפו את הגליל המדורג במים.
    • שטפו את הפסולת המימית הבסיסית במורד הניקוז במי ברז בשפע, יחד עם פסולת מימית אחרת.
    • שטפו את כלי הזכוכית, כובעי הקוביות ומוט הערבוב בהתאם לנהלים הסטנדרטיים במעבדה. נקו את משטחי העבודה שלכם עם מגבת נייר לחה והשליכו מגבות נייר משומשות ומגבוני מעבדה לפח המעבדה.
  3. Results

    כעת, בואו ננתח את נתוני הספיגה שלנו כדי לקבוע את רמת ה-pKa של אדום נייטרלי.

    טבלה 3: קביעת pKa's אדום נייטרלי

    NRH+ חינם NRH+ כרוך
    λמקסימום (NM)
    ΔA (ננומטר)
    נקודת אמצע (nm)
    pKa

    לחץ כאן להורדת טבלה 3

    • התווה את שתי קבוצות נתוני העוצמה עם עוצמת ספיגה ב- lambda max בציר y ו- pH בציר x, כאשר הנקודות מחוברות בקווים חלקים.
    • חשב את ההפרש בין עוצמות הספיגה של התחלה וסיום עבור כל סדרת נתונים.
    • קבע את הספיגה באמצע הדרך בין בליעת ההתחלה והסיום עבור כל סדרה, או את נקודות האמצע של הבליעה.
    • מצא היכן מתרחשת נקודת האמצע בכל שורה וזהה את ערך ה- pH באותה נקודה. ערכי pH אלה הם pKa's של אדום נייטרלי חופשי וכבול.
    • כאן, אנו רואים עלייה ב-pKa של בערך אחד בין אדום נייטרלי חופשי לאדום, מה שמצביע על כך שאדום נייטרלי קשור הוא חומצה חלשה יותר מאדום נייטרלי פרוטוני חופשי בסדר גודל.

Transcript

בחלק הראשון של ניסוי זה, תכינו תמיסת נתרן פוספט חוצצת ב-pH 7.0. מונוסודיום פוספט היא חומצה חלשה עם הבסיס המצומד דיסודיום פוספט. לתמיסות מונוסודיום פוספט לא מותאמות יש בדרך כלל pH של כ-4 עד 6.

חוצצים יעילים ביותר קרוב ל-pKa שלהם, שהוא 6.8 עד 7.2 עבור מונוסודיום פוספט. לכן, תשתמש בנתרן הידרוקסיד כדי לדחוף את שיווי המשקל לכיוון הבסיס המצומד מבלי לשנות את ההרכב הכולל של שיווי המשקל של המאגר. לפני שתתחיל במעבדה, חשב את מסת המונוסודיום פוספט שתצטרך להכין 200 מיליליטר של תמיסה של 50 מילי-מולאר.

חלק זה של המעבדה משתמש בנתרן הידרוקסיד, שהוא מאכל ורעיל. היזהר בעת מזיגה והובלה של נתרן הידרוקסיד. עכשיו, בואו נתחיל.

ראשית, לבשו חלוק מעבדה, משקפי בטיחות עמידים בפני התזות וכפפות ניטריל. לאחר מכן, מלאו בקבוק כביסה מפלסטיק בנפח 250 מיליליטר במים נטולי יונים. סמן שתי כוסות של 100 מיליליטר לפסולת מימית ניטרלית ובסיסית, בהתאמה.

לאחר מכן, כייל את מד ה-pH שלך באמצעות המאגרים המצורפים. אחסן את הגשושית בתמיסת האחסון שלה כשתסיים. כעת, הביאו כוס של 400 מיליליטר לאזור האיזון האנליטי כדי להשיג את המונוסודיום פוספט שתצטרכו.

קח פיסת נייר שקילה והשתמש במרית נקייה כדי למדוד את הכמות הנדרשת של מונוסודיום פוספט בהתאם לחישובים שלך. מונוסודיום פוספט סופג לחות מהאוויר, לכן עבדו במהירות כדי להשיג מדידה מדויקת, וסגרו את המיכל היטב כשתסיימו איתו. רשום את הכמות המדויקת של מונוסודיום פוספט שאתה מודד במחברת המעבדה שלך.

לאחר מכן, הניחו את המונוסודיום פוספט בכוס ונקו את המרית בעזרת מגבון מעבדה. זרוק את נייר השקילה ואת מגבון המעבדה לפני שתחזור למכסה המנוע. כעת, השתמש בצילינדר מדורג כדי למדוד 175 מיליליטר של מים נטולי יונים.

שופכים את המים לכוס מונוסודיום פוספט ומוסיפים מוט ערבוב מגנטי. מערבבים את התמיסה על צלחת ערבוב עד שהמלח נמס לחלוטין והתמיסה נראית הומוגנית. זה בדרך כלל לוקח שתיים עד שלוש דקות.

לאחר מכן, מדוד 15 מיליליטר מים נטולי יונים בעזרת גליל מדורג. שופכים את המים נטולי היונים לכוס וממשיכים לערבב את התמיסה עד שהיא נראית שוב הומוגנית, מה שבדרך כלל לוקח דקה עד שתיים. לאחר מכן, כבה את מנוע הערבוב.

שטפו את בדיקת ה-pH במים נטולי יונים, ולאחר מכן הדקו אותה בתמיסה עם החיישן מעל מוט הערבוב. כעת, הביאו צילינדר מדורג של 10 מיליליטר וזכוכית שעון למכסה המנוע, ומדדו 10 מיליליטר של נתרן הידרוקסיד מולארי אחד. כסו את הנתרן הידרוקסיד שלכם בזכוכית השעון, והביאו אותו בזהירות למכסה המנוע.

שימו לב לנפח המדויק בצילינדר המדורג. לאחר מכן, המשך לערבב את תמיסת המונוסודיום פוספט. תוך כדי ניטור קריאת ה-pH, השתמש בפיפטה חד פעמית כדי להוסיף לאט נתרן הידרוקסיד לתמיסת הערבוב בצורה טיפתית.

ברגע שה-pH של המאגר מגיע ל-7.0, החזר כל נתרן הידרוקסיד שעדיין בפיפטה לגליל המדורג. לאחר מכן, חשב את נפח הנתרן הידרוקסיד שהוספת מהנפחים הראשוניים והסופיים בגליל המדורג. הפחיתו את הנפח הזה מ-10 מיליליטר כדי לקבוע כמה מים נטולי יונים עליכם להוסיף למאגר שלכם כדי להגיע לנפח תמיסה כולל של 200 מיליליטר.

מדוד את המים נטולי היונים הדרושים לך עם גליל נוסף של 10 מיליליטר והוסף אותם לתמיסת הערבוב כדי לסיים את הכנת המאגר. שטפו את חיישן ה-pH במים נטולי יונים, כסו אותו במכסה המלא בתמיסת האחסון ונתק או כבה את הבדיקה. לאחר מכן, סמן בקבוק פוליאתילן של 250 מיליליטר כמאגר מונוסודיום פוספט של 50 מילי-מולרי, pH 7.0'השתמש במלקחיים כדי להוציא את מוט הערבוב המגנטי מהתמיסה.

לאחר מכן, הניחו משפך בפי הבקבוק ושפכו את תמיסת החיץ לתוך הבקבוק. הסר את המשפך וכסה את הבקבוק בחוזקה. כעת אתה מוכן לעבור לחלק ספקטרוסקופיה של ספיגה.

ניתן להשתמש במאגרים כדי להעריך תרכובות בערכי pH ספציפיים. בחלק זה, תתעד את ספקטרום הספיגה של המחוון אדום ניטרלי במאגרים שונים. הצורה הפרוטונית של אדום ניטרלי היא אדומה, והצורה הדפרוטונציה היא צהובה-כתומה, כלומר הם סופגים אור ירוק וכחול-סגול, בהתאמה.

לפיכך, לצורות החומציות והבסיסיות יש אורכי גל ספיגה מובחנים. קשירת חלבון משנה את תכונותיו של אדום ניטרלי, ומשנה הן את יכולת הספיגה שלו והן את ה-pKa שלו. לאחר מדידת ספקטרום הספיגה של אדום ניטרלי חופשי במספר ערכי pH, תוסיף לתמיסות חלבון קושר ריבופלבין, או RP, ותמדוד שוב את הספיגה.

עוצמת הספיגה קשורה לריכוז, כך שתשתמש בספקטרום כדי לקבוע את ה-pKa של אדום ניטרלי חופשי וקשור לאחר המעבדה. לפני שתתחיל בחלק זה, צייר טבלה במחברת המעבדה שלך, המפרטת את מספר הקובטה, חומץ החומיץ, הספיגה בלמבדה מקסימום עבור אדום ניטרלי פרוטונציה חופשי, וספיגה בלמבדה מקסימום עבור אדום ניטרלי פרוטונציאלי קשור. מספר את הקובטות מ-1 עד 10 ורשום את תשעת ערכי ה-pH של המאגר שבהם תשתמש.

הקובט העשירי יהיה ריק מים נטול יונים. החזיקו תמיד את הקובט בצדדים בעלי המרקם ונגבו את הצדדים השקופים ממש לפני הכנסת הקובט לספקטרופוטומטר. זכור ליישר את הצדדים השקופים עם אלומת האור בספקטרופוטומטר.

עכשיו, בואו נתחיל. השג עשר קובטות וכובעים של 1.5 מיליליטר, וסמן את הכובעים 1 עד 10 כך שיתאימו לטבלה במחברת המעבדה שלך. סמן כוס של 25 מיליליטר כ-DIH2O ומלא אותה במים נטולי יונים.

לאחר מכן, שטפו את הפסולת המימית הנייטרלית שלכם לביוב, ותייגו מחדש את הכוס כפסולת חיץ מימית'כמו כן, סמנו כוס של 400 מיליליטר לקצות מיקרופיפטה משומשות. לאחר מכן, חבר קצה למיקרופיפטה של 1 מיליליטר, והשתמש בו כדי להוציא 1000 מיקרוליטר מים נטולי יונים לקובטה 10. זה יהיה ריק הממס שלך.

כעת, הוציאו את הקצה, כוונו את המיקרופיפטה להוציא 925 מיקרוליטר והצמידו קצה חדש. הנח 925 מיקרוליטר ממאגר מונוסודיום פוספט pH 7.0 בקובט חמש. יש להוציא את הקצה ולכסות את הקובטה.

לאחר מכן, הביאו את הקובטות הריקות הנותרות לטבלת החיץ. בהנחיית הטבלה במחברת המעבדה שלך, החלק 925 מיקרוליטר מכל מאגר לקובטה המתאימה באמצעות המיקרו-פיפטות המסומנות בתווית. היזהר לא להשתמש באותו קצה פיפטה עבור חוצצים שונים.

לאחר שתסיים, החזר את המאגרים לשולחן העבודה שלך. שם, הגדר מיקרופיפטה של 200 מיקרוליטר כדי להוציא 75 מיקרוליטר ולחבר קצה למיקרופיפטה. כעת, השיגו בקבוקון או שפופרת של תמיסה אדומה ניטרלית, אותה ניתן לחלוק עם קבוצת תלמידים אחרת.

הוצא 75 מיקרוליטר של אדום ניטרלי לכל אחת מתשע קובטות החיץ. החלף את קצה הפיפטה אם הוא נוגע במאגר. הוציאו את קצה הפיפטה וכסו את הקובטות בסיום.

כעת, הפוך כל קובטה מספר פעמים כדי לערבב היטב את התמיסות. לאחר שערבבתם אדום ניטרלי עם כל מאגר, צלמו תמונה או רשמו את צבעי הפתרונות. לאחר מכן, הפעל ספקטרופוטומטר ידני והמתן עד שמקור האור יתחמם.

ברגע שהוא מוכן, צור ניסוי חדש למדידת ספיגה לעומת אורך גל עבור האדום הנייטרלי החופשי. לאחר מכן, הכנס את קובטת המים נטולי היונים. רכוש ספקטרום של המים נטולי היונים, והגדר אותו כרקע ממס או ריק.

לאחר מכן, הסר את הריק מהספקטרופוטומטר והכנס את הקובטה של אדום ניטרלי במאגר ה-pH הנמוך ביותר, שיהיה בעל הריכוז הגבוה ביותר של אדום ניטרלי פרוטונציה. רכשו ספקטרום, שאמור להראות שיא חזק אחד. זהה את אורך הגל המתאים לנקודה הגבוהה ביותר של שיא זה, או המקסימום.

רשום את אורך הגל הזה במחברת המעבדה שלך כ-lambda max עבור אדום ניטרלי חופשי עם פרוטונים. שמור את הנתונים והסר את הקובטה. רשום את הספיגה במחשב הנייד שלך ולאחר מכן אסוף ספקטרום עבור קובטות 2 עד 9 באמצעות אותו הליך.

כל הספקטרום צריך לחצות בנקודה אחת, הנקראת הנקודה האיזוסבסטית. רשום את אורך הגל של נקודה זו במחברת המעבדה שלך. אם ספקטרום לא חוצה בנקודה זו, רוקן ונקה את הקובטה, הכין דגימה טרייה ונסה שוב.

לאחר שתסיים לאסוף ספקטרום עבור כל 9 הקובטות, שמור וייצא את הנתונים. לאחר מכן, צור ניסוי חדש למדידת ספיגה לעומת אורך גל עבור האדום הנייטרלי הקשור התאם קצה חדש למיקרופיפטה של 200 מיקרוליטר וקבל מיכל משותף של חלבון קושר ריבופלבין.

הוסף 75 מיקרוליטר של תמיסת חלבון קושרת ריבופלבין לכל קובטה, כולל הריק. הוציאו את הקצה, אבטחו את מכסי הקובט והפכו את הקובט מספר פעמים כדי לערבב את התמיסות. כעת, הכנס קובטה 10 לספקטרופוטומטר והגדר אותה כריק הממס.

לאחר מכן, רכוש ספקטרום של דגימת ה-pH הנמוכה ביותר וזהה את אורך הגל המתאים למקסימום של השיא האינטנסיבי ביותר. רשום את זה במחברת המעבדה שלך כמקסימום למבדה של אדום ניטרלי כרוך פרוטונים. לאחר מכן, רכשו ספקטרום עבור קובטות 2 עד 9 באותו אופן שעשיתם עבור הדגימות האדומות הנייטרליות החינמיות.

רשום את העוצמות בלמבדה מקסימום עבור אדום ניטרלי קשור פרוטונציה בשולחן שלך, יחד עם אורך הגל בנקודה האיזוסבסטית. כשתסיים, שמור את הנתונים שלך, ייצא אותם לניתוח מאוחר יותר וכבה את הספקטרופוטומטר. הניחו בצד את המיקרופיפטות, קופסאות הקצה, מד ה-pH והספקטרופוטומטר.

השלך את קצות הפיפטה המשומשות שלך למיכל אשפה מאושר או לפח אשפה. כעת, רוקנו את הקובטות לכוס הפסולת המימית ושטפו את הקובטות לתוך הכוס במים נטולי יונים. במכסה המנוע שלך, רוקן את עודפי הנתרן הידרוקסיד לפסולת הבסיסית ושטוף את הגליל המדורג במים.

שטפו את הפסולת המימית הבסיסית לביוב עם מי ברז בשפע, יחד עם הפסולת המימית האחרת. שטפו את כלי הזכוכית, כובעי הקובטה ומוט הערבוב בהתאם לנהלים הסטנדרטיים של המעבדה שלכם. לבסוף, נקו את משטחי העבודה שלכם עם מגבת נייר לחה והשליכו מגבות נייר משומשות ומגבוני מעבדה לפח המעבדה.

כעת, בואו ננתח את נתוני הספיגה שלנו כדי לקבוע את ה-pKa של אדום ניטרלי. ראשית, שרטט את שתי קבוצות נתוני העוצמה עם עוצמת ספיגה בלמבדה מקסימלית על ציר ה-y, ו-pH על ציר ה-x, כאשר הנקודות מחוברות בקווים חלקים. לאחר מכן, עבור כל סדרת נתונים, חשב את ההפרש בין עוצמות הספיגה ההתחלתית והסיום.

השתמש בזה כדי לחשב את הספיגה באמצע הדרך בין ספיגת ההתחלה והסיום עבור כל סדרה, או את נקודות האמצע של הספיגה. כעת, מצא היכן מתרחשת נקודת האמצע בכל קו, וזהה את ערך ה-pH באותה נקודה. ערכי pH אלה הם ה-pKa של אדום ניטרלי חופשי וכבול.

כאן, אנו רואים עלייה ב-pKa של כ-1 בין אדום נייטרלי חופשי לאדום קשור, מה שמצביע על כך שאדום ניטרלי פרוטון קשור הוא חומצה חלשה יותר מאדום ניטרלי פרוטונציה חופשי בסדר גודל.

Explore More Videos

JoVE Lab Chem מעבדה: 39 נוהל

Skip to

Concept

Instructor Prep

Student Protocol

Related Videos

מאגרי

מאגרי

Chemistry

9.3K צפיות

מאגרי

מאגרי

Chemistry

27.4K צפיות

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code