מאמר שיטה

4D הדמיה של צבירת חלבון בתאים חיים

18.5K צפיות

⸱

DOI:

10.3791/50083

⸱

5 באפריל 2013

 ,  ,  , 
1Department of Cell and Developmental Biology, Alexander Silberman Institute of Life Sciences, Hebrew University of Jerusalem

* These authors contributed equally

במאמר זה

סיכום

כדאיות ניידת תלויה בניהול הזמן והיעיל של misfolding חלבון. כאן אנו מתארים שיטה להמחשת הגורל הפוטנציאלי השונה של חלבון misfolded: קפל שוב, שפלה, או תפיסה בתכלילים. אנו מדגימים את השימוש בחיישן מתקפל, Ubc9 Ts, לproteostasis ניטור ובקרת איכות צבירה בתאים חיים באמצעות מיקרוסקופ 4D.

תקציר

אחת המשימות המרכזיות של כל תא חי היא שמירה על קיפול תקין של חלבונים מסונתזים חדשים לנוכח תנאי סביבה משתנים ללא הרף וסביבה תוך-תאית ארוזה היטב, דביקה ומסוכנת ליציבות החלבון1. היכולת לאזן באופן דינמי בין ייצור, קיפול ופירוק חלבונים דורשת מכונות בקרת איכות מיוחדות ביותר, שנחיצותן המוחלטת נצפית בצורה הטובה ביותר כאשר היא מתקלקלת. למחלות כמו ALS, אלצהיימר, פרקינסון וצורות מסוימות של סיסטיק פיברוזיס יש קשר ישיר למרכיבי בקרת איכות של קיפול חלבונים2, ולכן פיתוח טיפולי עתידי דורש הבנה בסיסית של התהליכים הבסיסיים. האתגר הניסויי שלנו הוא להבין כיצד תאים משלבים אותות נזק ומרכיבים תגובות המותאמות לנסיבות מגוונות.

הסיבה העיקרית לכך שקיפול שגוי של חלבון מהווה איום קיומי על התא היא הנטייה של חלבונים מקופלים בצורה לא נכונה להצטבר, ובכך לגרום להפרעה גלובלית של סביבת הקיפול התוך-תאית הצפופה והעדינה1. בריאות הקיפול, או "פרוטאוסטזיס", של הפרוטאום התאי נשמרת, אפילו תחת לחץ של הזדקנות, מתח ונזק חמצוני, על ידי פעולה מתואמת של יחידות מכניסטיות שונות במערכת בקרת איכות משוכללת3,4. מנגנון מיוחד של מלווים מולקולריים יכול לקשור פוליפפטידים לא ילידיים ולקדם את קיפולם למצב המקורי1, למקד אותם לפירוק על ידי מערכת היוביקוויטין-פרוטאזום5, או לכוון אותם לתכלילים מצטברים מגנים6-9.

באיקריוטים, עומס בקרת איכות הצבירה הציטוזולית מחולק בין שני תאים8-10: תא בקרת האיכות הצמוד (JUNQ) ומרבץ החלבון הבלתי מסיס (IPOD) (איור 1 - מודל). חלבונים שנמצאים בכל מקום על ידי מנגנון בקרת האיכות של קיפול החלבונים מועברים ל-JUNQ, שם הם מעובדים לפירוק על ידי הפרוטאזום. חלבונים לא מקופלים שאינם נמצאים בכל מקום מופנים ל-IPOD, שם הם מצטברים באופן פעיל בתא מגן.

עד לנקודה זו, הפרדיגמה המתודולוגית של מיקרוסקופיה פלואורסצנטית של תאים חיים הייתה בעיקר לתייג חלבונים ולעקוב אחר מיקומם בתא בנקודות זמן ספציפיות ובדרך כלל בשני ממדים. ככל שטכנולוגיות חדשות החלו להעניק לנסיינים גישה חסרת תקדים לקנה המידה התת-מיקרוני בתאים חיים, הארכיטקטורה הדינמית של הציטוזול נתפסה כחזית חדשה ומאתגרת לאפיון ניסיוני. אנו מציגים שיטה לניטור מהיר של ההתפלגות המרחבית התלת-ממדית של חלבונים מרובים המסומנים באופן פלואורסצנטי בציטוזול השמרים לאורך זמן. 3D Timelapse (הדמיה 4D) אינו רק אתגר טכני; במקום זאת, הוא גם מאפשר שינוי דרמטי במסגרת המושגית המשמשת לניתוח מבנה התא.

אנו משתמשים בחלבון חיישן מתקפל ציטוזולי בשמרים חיים כדי לדמיין גורלות מובהקים לחלבונים לא מקופלים בבקרת איכות צבירה תאית, באמצעות הדמיה פלואורסצנטית מהירה 4D. המוטציה הרגישה לטמפרטורה של חלבון Ubc910-12 (Ubc9ts) יעילה ביותר הן כחיישן של פרוטאוסטזיס תאי, והן כמודל פיזיולוגי למעקב אחר בקרת איכות הצבירה. כמו ברוב חלבוני ה-ts, Ubc9ts מקופל לחלוטין ומתפקד בטמפרטורות מתירניות עקב מלווים תאיים פעילים. מעל 30 מעלות צלזיוס, או כאשר התא מתמודד עם מתח קיפול שגוי, Ubc9ts מתקפל בצורה שגויה ועוקב אחר גורלו של חלבון כדורי מקומי שקופל בצורה לא נכונה עקב מוטציה, דנטורציה בחום או נזק חמצוני. על ידי היתוך שלו ל-GFP או פלואורופורים אחרים, ניתן לעקוב אחריו בתלת-ממד כשהוא יוצר מוקדי מתח, או מופנה ל-JUNQ או IPOD.

פרוטוקול

1. הכנות שמרים

  1. להפוך זני שמרים עם פלסמיד שנשא GAL1-GFP-Y68L (UBC9 ts) קלטת.
  2. לגדול שמרים בתקשורת סינטתית המכילה raffinose 2% עבור 24 שעות וחוזרים לדילול של 2% מדיה המכילה גלקטוז עבור 16 שעות או O / נ דגירת תאים ב 30 מעלות צלזיוס בזמן רועד ב 200 סל"ד.
  3. בבוקר שלמחרת, מדלל את מתח השאילתה לOD 600 = 0.2. Shake עבור 4-6 שעות של 30 ° C (200 סל"ד) עד שהתרבות מגיעה OD 600 = 0.8-1.0.
  4. להדחיק ביטוי (כדי לפקח על הברכה תורגמה-כבר מקופלת ורק של ה-GFP-Ubc9 ts), תקשורת ישתנה לתקשורת הסינטתית עם תוספת סוכר 2% (SD) 30 דקות לפני ההדמיה.
  5. טיפול - הלם חום התאים ל20 דקות ב 37 ° C כדי לגרום misfolding, או באופן רציף במיקרוסקופ חממה לעקוב צבירת חלבון בתנאי חום הלם. הערה - אם אתה משתמש במיקרוסקופ בכל טמפרטורה מעל RT, מראש חום for כ 2 שעות לאזן את הטמפרטורה לאורך הגוף של המיקרוסקופ ואת המטרות (ראה להלן).

2. צלחת \ הכנות שקופיות

  1. בחר צלחת מתאימה. השיקול העיקרי הוא היכולת לשמור על מיקוד ברכישת הדמיה. הנקודות הבאות הן קריטיות עבור 4D הדמיה ולא לפערי הזמן 2D או 3D הדמיה.
    1. מרובה בארות צלחת תחתית הבארות השונות לא יכולה להיות הומוגנית (כלומר הבארות יהיו בגבהים יחסית למטרה שונים). זה יעשה את זה קשה לשמור על פוקוס לאורך נקודתי XY ונקודתי זמן, ללא קשר לשימוש בטכניקת autofocusing.
    2. חומרי שקופיות: זכוכית לעומת פלסטיק. שקופיות זכוכית תחתיות יותר Z-הומוגני בין הבארות, אך הם יקרים יותר.
    3. עובי של תחתית של הצלחת: אנחנו בדרך כלל להשתמש בצלחות coverslip-תחתונת מדד 1.5, אבל 1 מדד הוא גם מקובל בהתאם למטרה.
  2. Covאה תחתון של צלחת \ שקופית עם ConA (0.25 מ"ג / מ"ל) למשך 10 דקות. ConA משמש לדבוק תאים לשקופית, המאפשרת בעקבות תא בודד לאורך זמן.
  3. הסר ConA ודגירת השקופיות בברדס כימי כך שConA העודף יתאדה.
  4. 200 μl צלחת מדגם שמרים (OD 600 = 0.5) לConAed היטב.
  5. דגירה במשך 15 דקות, על מנת לאפשר לתאים להיצמד למשטח של הצלחת.
  6. חלץ את המדיום, ולשטוף שלוש פעמים עם מדיום חדש כדי לקבל שכבה אחת של תאים. הערה: אם פקיעת זמן מתוכנן, את תאי הזרע בדלילות, כך שהניצנים חדשים לא ימלא ולקטוע את האזור של עניין.

3. הכנות מיקרוסקופ

  1. אנו משתמשים בניקון A1Rsi confocal מיקרוסקופ עם כמה שינויים שאינם סטנדרטיים. עבור הדמית שמרים אנו משתמשים עד 4 לייזרים (405 ננומטר, 50 mW ליזר CUBE; 457-514 ננומטר, 65 mW ארגון יון הליזר; 561 ננומטר, 50 mW ליזר ספיר; ו640 ננומטר, 40 mW CUBE ליזר), ועד 4 PMTs מצוידיםמסננים. רוב ההדמיה שלנו נעשה עם קבוצה ירוקה מסנן לEGFP ולהגדיר מסנן אדום לmCherry וtdTomato. עם GFP וmCherry אין כמעט bleedthrough, ולכן לעתים קרובות אנו משתמשים סריקה בו זמנית. עם זאת, קו לסריקה יכולה לשמש גם כדי למנוע bleedthrough כשהוא מתרחש. confocal מצויד גם בשלב PInano Piezo (MCL), אשר יכול להפוך 3 שלבי msec בz, המאפשר 2-3 Z-ערימות (30-50 חלקים) לשנייה. המערכות יש גם רוח רפאי גלאים, פוקוס מושלם (ליזר קיזוז), ושני סורקים - סורק galvano וסורק תהודה.
  2. בחר מטרה המתאימה. שיקולים עיקריים:
    1. מטרת מים / שמן / אוויר: השיקול העיקרי הוא מקדם שבירה של מדיום ההדמיה לעומת הבינוני של המדגם.
      1. יתרונות אובייקטיביים שמן:
        1. מטרות נפט יכולות להיות פתחים מספריים גבוהים יותר (אור שמן הפסקות יותר ממים, ולכן פוטונים יותר לחזור לאובייקטיבי). מטרות נפט יכולות להיות עדלNA 1.49, לעומת 1.27 למים. (עם זאת, זה לא ממש הבדל עצום ברזולוציה).
        2. מקדם השבירה של שמן תואם את מקדם השבירה של זכוכית, ולכן אין פוטונים אבדו הולכים מהמדגם, מבעד לזכוכית, למטרה. (הערה - בחרה שמן טבילה שיש שבירה שמתאימה למטרה שלך וcoverslip שלך).
        3. שמן מאפשר ארוכה ללא טרחה בפעם שמעידות שכן הוא לא מתאדה.
        חסרונות אובייקטיביים שמן:
        1. הרזולוציה הגבוהה מופעלת על ידי NA הגבוה יותר של מטרות נפט מדרדרת במהירות אם יש האור לנסוע דרך מדיום מימי (כגון תא).
        2. תמונות בדרך כלל יש סטיות כדוריות ויותר "מתוח" אפקט 3D.
        3. נפט הוא דביק ומבולגן, וסכנה ליעדים.
      2. יתרונות אובייקטיביים מים
        1. התא עצמו הוא מימי, ולכן יש פחות עיוותים בZ, and הרזולוציה נותרת גבוה עמוקה לתוך מדגם מימי.
        2. נקה וידידותי למשתמש. חסרונות: מים מתאדה במהירות אובייקטיבי, ולכן אינה מתאימים לסרטים ארוכים ללא הסדרים מיוחדים שנעשים כדי לשאוב מים ברציפות למטרה.
      3. יתרונות אוויר אובייקטיבי: 1. אין חומר הולך לאיבוד / מתאדה במהלך רכישת נקודה מרובה או סרט ארוך. 2. נקה וידידותי למשתמש. חסרון: רזולוציה נמוכה ורגישות אות נמוכה.
    2. טמפרטורת חדר ובחממה: טמפרטורה משתנית משפיעה על תכונות חומר, ובמערכות עדינות משנה את הפוקוס. הטמפרטורה צריכה להיות מותאמת לפני בחירת נקודות עבור רכישה. שינוי הטמפרטורה במהלך הרכישה ישבש הדמיה ויגרום לאובדן מיקוד. אנו נותנים למערכת מיקרוסקופ לאזן עבור 2 שעות בטמפרטורה הרצויה לפני ההדמיה.
    3. קולרי תיקון: יעדים רבים מגיעים עם טבעת המאפשרת תיקוןהמטרה להיות מותאמת לעובי נתון כיסוי להחליק. אנו ממליצים להתאים את צווארון התיקון תוך שימוש בחרוזי ניאון לדמיין פונקצית התפשטות הנקודה. זה יבטיח הגדרות נכונות עבור כל מדגם.
    4. מחזיקי מדגם יציבים: אנו מוצאים כי מחזיקי מדגם מסחרי הזמינים ביותר הם חלק החלש ביותר של המיקרוסקופ. הם לעתים קרובות מתנדנדים ולא ישר. זה אסון לרזולוציה גבוהה, הדמית 4D ריבוי נקודות. אנו מעצבים מחזיקי המדגם שלנו, כי הם ישרים ונתאים היטב לבמה. הם יכולים גם להיות מחוזקים בברגים בעת צורך.
    5. רכישת ריבוי נקודות: מערכת ההדמיה שלנו מצוידת במערכת ניקון "המושלמת המיקוד", שהוא בעצם מנגנון מבוסס ליזר פוקוס אוטומטי. עם זאת, autofocusing הוא לא בהכרח צורך ב4D הדמיה, במיוחד אם המערכת לא נסחפת הרבה.

4. הדמיה

  1. הפעל את המערכת: לייזרים, במה, בקר, מצלמה וcompuתוכנת ter.
  2. צלחת מניח על בעל במה, בצורה נאותה והתייצבה.
  3. השתמש ביציאת עין כדי לקבוע את המיקום וכיוון של שמרים.
  4. שימוש brightfield, להעריך את בריאות תא ואת כדאיות על פי צורה ומרקם.
  5. הפעל אור epifluorescent פי fluorophore הרלוונטי (למשל FITC מסנן לGFP), ולהתמקד בתאים המציגים את הפנוטיפ אשר כפופים למחקר שלך. תאים אשר הניאון ביותר באורך גל אחד או יותר יכולים להיות מתים ולכן autofluorescent. אנו לדמיין גרעין עם fluorophore tdTomato התמזג SV40 אות NLS (NLS-TFP). פריון הכולל הוא כפול בגודלו של ה-GFP, ולכן מעל גבול דיפוזיה של הגרעין, ולכן זה עובד טוב מאוד כסמן גרעיני. אנחנו גם יכולים לרגש TFP עם ליזר ירוק (488 ננומטר) בו זמנית כGFP, אבל לאסוף את הפליטות הירוקות ואדומות לשתי PMTs הנפרד לרזולוציה ספקטרלית.
  6. התאם את ההגדרות הבאות כדי למזער את הרעשוoversaturation:
    1. כוח הליזר - photobleaching וphototoxicity לעומת בהירות של תמונה צריך להיחשב.
    2. רווח: משפיע על רגישות מצלמה, ובכך יחס אות לרעש.
    3. קוטר חריר - צריך להיות מותאם על פי הליזר עם אורך גל הקצר יותר. קוטר החריר מקובע את העובי (גובה) של הסעיף האופטי צלם. לפיכך, פתיחת החריר תאסוף יותר אור (נותן יותר פוטונים ב), אבל תקטין רזולוציה בz (confocality פחות).
  7. עצות שימושיות:
    1. אם fluorophores השונה פולט אורכי גל חופפים, השתמש בתכונת רפאי הגלאים המאפשרת הבחירה של מסננים וירטואליים. זכור כי גלאי רפאים פחות רגישים מאשר PMTs הרגיל.
    2. אם fluorophores השונה נרגש על ידי אותו הליזר, השתמש בתכונת סריקת הקו.
    3. סורק מאפשר Galvano יותר רגיש, אבל יש סיכון גבוה יותר לphotobleaching. סורק תהודה מאפשר מהר יותרcquisition, ובכך להקטין את הסיכון לphotobleaching, אך הוא פחות רגיש.
    4. ממוצע בין 2 ל 16 תמונות, זה משפר את יחס אות לרעש, אבל עושה את הרכישה איטית יותר, וכמובן, כרוך בחשיפה רבה יותר של המדגם לליזר.
    5. משך הרכישה תלויה בשאלות הביולוגיות (למשל JUNQ והיווצרות IPOD לוקחת ~ 2 שעות). אנחנו צלמנו שמרים עם סורק התהודה לתקופה של עד 30 שעות בזמן לשגות 3D.
    6. מרווחי זמן לשגות מרווחים קטנים יותר ליצור סרט עקבי יותר אך עלול לגרום לתמונת הלבנה ולכן אובדן האות.

תוצאות

figure-results-1
איור 1. דגם:. מידור תת תאי של חלבוני misfolded מכונה בקרת האיכות מכוון את החלבונים לתאי misfolded שונים עם פונקציות שונות: חלבונים מסיסים, המיועדים לפירוק, לעבור-ubiquitination פולי, ונשלחים לתא Ju XTA-N uclear ש uality השליטה (JUNQ ). חלבונים מסיסים שלא ניתן ubiquitinated נשלחים לתפיסה הגנתית כדי שPr otein D eposit nsoluble (IPOD), בסמוך לvacuole, שם הם עוברים צבירה פעילה.

es.jpg "src =" / files/ftp_upload/50083/50083fig2.jpg "/>
איור 2. misfolding חלבון דוגמנות עם GFP-Ubc9 ts. בתנאים נורמלים, GFP-Ubc9 TS (ירוק) מקופל באופן מקורי, ומותאם diffusely בגרעין וcytosol. הגרעין מתויג על ידי NLS-TFP (אדום). הביטוי של Ubc9 ts היה סגור בתוספת של 2% גלוקוז לפני הדמיה בכל הניסויים. לחץ כאן לצפייה בדמות גדולה.

  1. עם שינוי הטמפרטורה עד 37 המעלות צלזיוס, GFP-Ubc9 TS (ירוק) misfolded ויוצר מוקדי מתח cytosolic. הגרעין מתויג על ידי NLS-TFP (אדום).
  2. לאחר ההתאוששות מהלם חום בשעת 23 ° C, GFP-Ubc9 denaturated תרמית TS הוא מושפל, כפי שצוין על ידי רמת פלואורסצנטי ירד.
  3. עם שינוי הטמפרטורה ל ° C 37 עכבות והפרוטאזום עם 80 מ"מ MG132, GFP-U bc9 TS הוא misfolded ומעובד לJUNQ ותכלילים IPOD. הגרעין מתויג על ידי NLS-TFP (אדום).
  4. עם שינוי הטמפרטורה ל 37 מעלות צלזיוס ועיכוב ubiquitination, GFP-Ubc9 TS הוא misfolded ומעובד להכללת IPOD. הגרעין מתויג על ידי NLS-TFP (אדום). פרוטאז יוביקוויטין 4 (Ubp4) הוא overexpressed לחסום ubiquitination ts Ubc9.

figure-results-2
איור 3. זמן פקיעה של JUNQ והיווצרות IPOD. עם שינוי הטמפרטורה ל 37 מעלות צלזיוס ועיכוב הפרוטאזום עם 80 מ"מ MG132, GFP-Ubc9 מוקדי מתח ts מעובדים לJUNQ ותכלילים IPOD. הגרעין מתויג על ידי NLS-TFP (אדום). תמונות 3D נרכשו במרווחי 4 דקות. (ראה גם בסרט 1).com/files/ftp_upload/50083/50083fig3large.jpg "target =" _blank "> לחץ כאן לצפייה בדמות גדולה.

דיון

האינטואיציות שלנו על תהליכים ביוכימיים נובעות מניסויים גבי ספסל שבו פתרון מעורב ושל מגיבים ומוצרים רשאי להגיע לשיווי משקל בכוס. בהגדרה כזו, הריכוז של תרכובות כימיות הניתנות עלול להתבטא במספר אחד, שהוא היחס בין כמות טוחנת של מולקולות לנפח מקרוסקופית. הרבה ממה שאנו יודעים על מבנה חלבון ותפקוד נובע משימוש בשיטות המשקפות את התמונה הקלסית, עיקר תגובה: כתמים מערביים, centrifugations ומידות spectrophotometric בוצעו על תמציות מhomogenates של אוכלוסיות שלמות של תאים.

ככל שהטכנולוגיה שאנו משתמשים להסתכל על תאים בהגדלה משפר בקפיצות, הוא הופך להיות ברור יותר מתמיד כי תנאים שבתגובות ביוכימיות ביותר מתרחשות בגוף חי נושאים רק דמיון הקלוש לאלה של התרחיש גבי הספסל הקלסי. לא רק הפנים של celלה צפוף סביבה, שבו צפיפות השפעות משמעותיות לשנות את פעילותם של מגיבים שונים, זה גם די ההפך ממעורב ו. דבר זה מסביר את הפער התדיר בין במבחנה ביעילות vivo של מגוון רחב של תגובות macromolecular מורכבות.

בשום מקום הן נובעות מאינטואיציות קלסיות בניסויי מבחנה ביוכימיים נוטים יותר להטעות כמו בשאלות הנוגעות לקיפול vivo, misfolding, וצבירה של חלבונים. בעוד שמחקרים של כימית חלבון בתגובות בתפזורת יכולים לטפל בנושא של קיפול לחלבון ניתן כפשוטים כן או לא שאלה, כל ניסיון לעקוב אחר הדינמיקה של אוכלוסיות שלמות של מקרומולקולות בתא חי חייב להיות רגיש לכל ההפצה אפשרית תוצאות קונפורמציה זמינות לשרשרת פוליפפטיד, ובפרט לסיכון של misfolding וצבירה. לדוגמה, אנו יכולים לבחון ly תא תפזורתלהשביע של חלבון על ידי צבירה מערבית סופג, ולקבוע כי החלבון הוא בעיקר מסיס ולא ubiquitinated. עם זאת, בתא החי תת אוכלוסייה דיסקרטית של החלבון, קשה לזהות כאשר הממוצע מעל תאים רבים, עשוי להיות מסיס וubiquitinated בתא מסוים שבו הריכוז המקומי של המינים הוא גבוה ביותר. התרחיש זה האחרון עשוי להיות השלכות חשובות יותר לחיוניות של התא מתת אוכלוסיית התפזורת הגדולה יותר. יתרה מכך, בעוד מלווים להציג מגוון רחב של התנהגויות ותפקודים במבחנה pleiotropic, זה הופך ברור כי בתא הפונקציות הבדידות מוגבלות מרחב ובזמן.

בפרדיגמה החדשה הלהבנת הביוכימיה, ריכוז הופך לרכושו של כל משתנה ננו סביבה מסוימת בתא, ואת האירועים המולקולריים שבבסיס תהליכים ביולוגיים יש assayed לא רק בזמן, אלא גם בSPACדואר. גישת הדמית 4D הוצגה כאן מאפשרת מודלים רגישים של misfolding חלבון בתאים חיים, אם כי ניתן להשתמש בו כדי ללמוד על כל מספר התהליכים ביולוגיים אחרים וכיצד הם מוסדרים במרחב, זמן, ובעקבות שינויים בתנאי הסביבה. במאמר זה אנו משתמשים בחיישן Ubc9 ts מתקפל, אשר למעשה מדגים את השלבים ואפשרויות להתמודדות עם ההתפרצות של צבירת חלבון בcytosol. בנוסף לממחיש את הביולוגיה של התא של בקרת איכות צבירה, גישה זו יכולה לשמש ככלי רב עצמה לפענוח ההשפעה של הפרעות ספציפיות או מוטציות גנטיות בproteostasis (לדוגמא Ubc9 ts יכול לשמש למדידת לחץ קיפול חלבונים בתגובה לחמצון, הביטוי לצבירה רעילה, או מוטציות במסלול בקרת האיכות).

4D הדמיה חיונית גם לקביעת לוקליזציה חלבון או החלבון colocalization בין שתי שונים במדויקs, ולאיתור תופעות שאולי להיות חולף אך חשוב. לדוגמה, במיוחד באורגניזם כדורי קטן כמו שמרים, זה עשוי להיראות במקרה שמבנה או המצרפי יש לוקליזציה juxtanuclear, בעוד 4D הדמיה יכולה לגלות שזה פשוט תוצר של הזווית של בדיקה.

בניסוי לדוגמא אנו מציגים כאן, אנו מדגימים את השימוש במודל misfolded חלבון, Ubc9 TS, לעקוב בקרת איכות הצטברות לאורך זמן ובמרחב בcytosol. בטמפרטורה המתירנית, Ubc9 ts מקופל ומתפזר בגרעין וcytosol. על misfolding נגרם עקב החום, זה יוצר תחילה במהירות מוקדי diffusing קטנים מצטברים מתח שעוברים עיבוד לפירוק proteasomal. כאשר הפרוטאזום חלקית עכבות, מוקדי מתח אלה מומרים לJUNQ ותכלילים IPOD במשך כ 2 שעות. אם שפלת יוביקוויטין בתיווך אינה זמינה כאפשרות בקרת איכות, UBC9 ts מחדש מנותב מייד להכללת IPOD לצבירת מגן. כלים אלה מציעים הזדמנויות מדהימות לגלות גורמים גנטיים מעורבים ברומן בקרת איכות צבירה, ולחקור הסדרת המרחב ובזמנם בתא.

גילויים

אין ניגודי האינטרסים הכריזו.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
MG132Mercurymbs474790
con ASigmaC2010
לוחות תחתונים מזכוכיתibidiibd81158
4D Fluorescence Imaging of Protein Aggregation
סרטי תלת מימד קונפוקליים נרכשו באמצעות מיקרוסקופ Nikon A1R-si המצויד בבמת PInano Piezo (MCL), תוך שימוש בפרוסות 60x מים NA 1.27, 0.3 מיקרון0.5% הספק לייזר (מלייזר 65 mW 488 ולייזר 50 mW 561)., ערימות z נרכשו כל 5 דקות למשך 90 דקות. כל סדרת z נרכשה עם גודל צעד של 0.5 מיקרון ו-30 צעדים בסך הכל. עיבוד התמונה בוצע באמצעות תוכנת NIS-Elements.

מקורות

  1. Gershenson, A., Gierasch, L. M. Protein folding in the cell: challenges and progress. Current opinion in structural biology. 21, 32-41 (2011).
  2. Aguzzi, A., Calella, A. M. Prions: protein aggregation and infectious diseases. Physiological reviews. 89, 1105-1152 (2009).
  3. Morimoto, R. I. Proteotoxic stress and inducible chaperone networks in neurodegenerative disease and aging. Genes & development. 22, 1427-14 (2008).
  4. Cohen, E., Dillin, A. The insulin paradox: aging, proteotoxicity and neurodegeneration. Nature reviews. Neuroscience. , (2008).
  5. Hershko, A., Ciechanover, A. The ubiquitin system. Annual review of biochemistry. 67, (1998).
  6. Tyedmers, J., Mogk, A., Bukau, B. Cellular strategies for controlling protein aggregation. Nature reviews. Molecular cell biology. 11, 777-788 (2010).
  7. Treusch, S., Cyr, D. M., Lindquist, S. Amyloid deposits: Protection against toxic protein species? Cell cycle (Georgetown, Tex.). 8, 1668-1674 (2009).
  8. Spokoini, R., et al. Confinement to Organelle-Associated Inclusion Structures Mediates Asymmetric Inheritance of Aggregated Protein in Budding Yeast. Cell Rep. , (2012).
  9. Weisberg, S. J., et al. Compartmentalization of superoxide dismutase 1 (SOD1G93A) aggregates determines their toxicity. Proc Natl Acad Sci U S A. 109, 15811-15816 (2012).
  10. Kaganovich, D., Kopito, R., Frydman, J. Misfolded proteins partition between two distinct quality control compartments. Nature. 454, 1088(2008).
  11. Betting, J., Seufert, W. A yeast Ubc9 mutant protein with temperature-sensitive in vivo function is subject to conditional proteolysis by a ubiquitin- and proteasome-dependent pathway. The Journal of biological chemistry. 271, 25790(1996).
  12. Tongaonkar, P., Beck, K., Shinde, U. P., Madura, K. Characterization of a temperature-sensitive mutant of a ubiquitin-conjugating enzyme and its use as a heat-inducible degradation signal. Analytical biochemistry. 272, 263(1999).

הדפסות חוזרות והרשאות

תגיות

Ubc9 TsJUNQ IPOD
4D הדמיה של צבירת חלבון בתאים חיים
צרו קשר
המליצו לספרייה

פרטיות

תנאי שימוש

מדיניות

זכויות יוצרים © 2026 MyJoVE Corporation. כל הזכויות שמורות.