הרשמה ל-JoVE נדרשת לצפייה בתוכן זה. התחברו או התחילו בגרסת ניסיון בחינם.

מאמר שיטה

In-Nucleus Hi-C בתאי דרוסופילה

4.4K צפיות

⸱

DOI:

10.3791/62106

⸱

15 בספטמבר 2021

 ,  ,  , 
1Departamento de Genética Molecular, Instituto de Fisiología Celular, Universidad Nacional Autónoma de México

במאמר זה

סיכום

הגנום מאורגן במרחב הגרעיני למבנים שונים שניתן לגלות באמצעות טכנולוגיות לכידת קונפורמציה כרומוזומית. שיטת Hi-C בגרעין מספקת אוסף רחב של אינטראקציות כרומטין בקווי תאים של Drosophila, אשר מייצר מפות מגע שניתן לחקור ברזולוציית מגה-בסיס ברמת שבר ההגבלה.

תקציר

הגנום מאורגן לתחומים המקשרים טופולוגית (TADs) המופרדים על ידי גבולות המבודדים אינטראקציות בין תחומים. בדרוסופילה, המנגנונים שבביד היווצרות TAD וגבולות עדיין נמצאים תחת חקירה. היישום של שיטת Hi-C בגרעין המתוארת כאן עזר לנתח את הפונקציה של חלבון אדריכלי (AP) -מחייב אתרים בגבולות TAD בידוד הגן חריץ. שינוי גנטי של גבולות תחום הגורמים לאובדן APs גורם היתוך TAD, פגמים תמלול, ושינויים טופולוגיים ארוכי טווח. תוצאות אלה סיפקו ראיות הממחישים את תרומתם של אלמנטים גנטיים להיווצרות גבולות תחום ובקרת ביטוי גנים בדרוסופילים. כאן, שיטת Hi-C בגרעין תוארה בפירוט, המספקת מחסומים חשובים להערכת איכות הניסוי יחד עם הפרוטוקול. כמו כן מוצגים המספרים הנדרשים של קריאות רצף וזוגות Hi-C חוקיים לניתוח אינטראקציות גנומיות בקנה מידה גנומי שונה. עריכה גנטית בתיווך CRISPR/Cas9 של אלמנטים רגולטוריים ופרופיל ברזולוציה גבוהה של אינטראקציות גנומיות באמצעות פרוטוקול Hi-C זה בגרעין יכול להיות שילוב רב עוצמה לחקירת התפקוד המבני של אלמנטים גנטיים.

מבוא

באאוקריוטים, הגנום מחולק לכרומוזומים התופסים שטחים ספציפיים במרחב הגרעיני במהלךאינטרפאזה 1. הכרומטין היוצר את הכרומוזומים ניתן לחלק לשני מצבים עיקריים: אחד של כרומטין נגיש כי הוא מתירני תמלול, והשני של כרומטין קומפקטי כי הוא דיכוי תמלול. מצבים כרומטין אלה מפרידים ורק לעתים רחוקות מתערבבים במרחב הגרעיני, ויוצרים שני תאים נפרדים בגרעין2. בסולם תת-בסיס, גבולות גבולות נפרדים תחומים של אינטראקציות כרומטין בתדר גבוה, הנקראות TADs, המסמנות ארגון כרומוזומלי3,4,5. ביונקים, גבולות TAD תפוסים על ידי לכידות וגורם מחייב CCCTC (CTCF)6,7,8. מתחם הלכידות מבלט כרומטין ועוצר באתרי כריכת CTCF הנזרקים בכיוון מתכנס ברצף הגנומי כדי ליצור לולאות כרומטין יציבות9,10,13,14. הפרעה גנטית של אתר כריכת DNA CTCF בגבולות או הפחתה בשפע חלבון CTCF ו cohesin גורמת אינטראקציות חריגות בין אלמנטים רגולטוריים, אובדן היווצרות TAD, הסרת פיקוח ביטויגנים 9,10,11,13,14.

בדרוסופילה, הגבולות בין ה-TADs תפוסים על ידי מספר APs, כולל גורם אלמנטי גבולי 32 kDa (BEAF-32), מוטיב 1 חלבון מחייב (M1BP), חלבון צנטריוזיal 190 (CP190), מדכא של כנף שעירה (SuHW) ו- CTCF, והם מועשרים בשינויי היסטון פעילים ופולימראז II16,17,18. הוצע כי ב Drosophila, TADs מופיעים כתוצאה של תמלול13,17,19, ואת התפקיד המדויק של APs עצמאיים היווצרות גבולות תכונות בידוד עדיין תחת חקירה. לכן, אם תחומים Drosophila הם תוצאה בלעדית של צבירת אזורים של מדינות תמלול דומות או אם APs, כולל CTCF, לתרום היווצרות גבולות נשאר להיות מאופיין במלואו. חקר מגעים גנומיים ברזולוציה גבוהה התאפשר באמצעות פיתוח טכנולוגיות לכידת קונפורמציה כרומוזומית בשילוב עם רצף הדור הבא. פרוטוקול Hi-C תואר לראשונה עם שלב קשירה שבוצע "בפתרון"2 בניסיון להימנע ממוצרי קשירה מזויפים בין שברי כרומטין. עם זאת, מספר מחקרים הצביעו על ההבנה כי האות השימושי בנתונים הגיע ממוצרי קשירה שנוצרו בגרעינים lysed חלקית שלא היו בפתרון20,21.

הפרוטוקול שונה לאחר מכן כדי לבצע את החיבור בתוך הגרעין כחלק מניסוי Hi-C של תא יחיד22. פרוטוקול Hi-C בגרעין שולב לאחר מכן באוכלוסיית התאים Hi-C כדי להניב כיסוי עקבי יותר על פני הטווח המלא של מרחקים גנומיים ולייצר נתונים עם פחות רעש טכני23,24. הפרוטוקול, המתואר בפירוט כאן, מבוסס על האוכלוסייה בגרעין פרוטוקול Hi-C23,24 ושימש כדי לחקור את ההשלכות של הסרה גנטית של מוטיבים מחייבי DNA עבור CTCF ו- M1BP מגבול תחום בלוקוס גן חריץ בדרוסופילה25. התוצאות מראות כי לשינוי מוטיבים מחייבי DNA עבור APs בגבול יש השלכות דרסטיות על היווצרות תחום Notch, פגמים טופולוגיים גדולים יותר באזורים המקיפים את לוקוס חריץ, והסרת הפיקוח על ביטוי הגנים. זה מצביע על כך אלמנטים גנטיים בגבולות התחום חשובים לשמירה על טופולוגיית הגנום וביטוי גנים ב Drosophila25.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

1. קיבעון

  1. התחל עם 10 מיליון תאי קו 2 פלוס (S2R+) של שניידר כדי להכין 17.5 מ"ל של השעיית תא במדיום שניידר המכיל 10% סרום בקר עוברי (FBS) בטמפרטורת החדר (RT).
  2. הוסף פורמלדהיד ללא מתנול כדי להשיג ריכוז סופי של 2%. מערבבים ודגרה במשך 10 דקות ב RT, דואג לערבב כל דקה.
    הערה: פורמלדהיד הוא כימיקל מסוכן. פעל בהתאם לתקנות הבריאות והבטיחות המתאימות, ועבוד במכסה המנוע של האדים.
  3. להרוות את התגובה על ידי הוספת גליצין כדי להשיג ריכוז סופי של 0.125 M ומערבבים. דגירה במשך 5 דקות ב RT, ואחריו 15 דקות על קרח.
  4. צנטריפוגה עבור 400 × גרם ב RT במשך 5 דקות ולאחר מכן במשך 10 דקות ב 4 °C (70 °F); להשליך את סופר-טבעי. resuspend הכדור בזהירות ב 25 מ"ל של תמיסת מלח קר 1x פוספט חוצץ.
  5. צנטריפוגה ב 400 × גרם במשך 10 דקות ב 4 °C (70 °F), ולאחר מכן להשליך את supernatant.
    הערה: אם תמשיך בפרוטוקול, עבור לשלב 2.1 עבור תמיס; אחרת, פלאש להקפיא את הכדור בנוזל N2 ולאחסן את הכדור ב -80 °C (80 °F).

2. ליסיס

  1. resuspend התאים 1 מ"ל של חיץ תמוגה קר כקרח (10 mM Tris-HCl, pH 8; 0.2% של פעילי שטח לא יוניים (ראה את טבלת החומרים); 10 mM NaCl; מעכבי פרוטאז 1x), ולהתאים את הנפח ל 10 מ"ל עם חיץ תמוגה קר כקרח. כוונן את עוצמת הקול כדי לקבל ריכוז של 1 × 106 תאים / מ"ל. דגירה על קרח במשך 30 דקות, ערבוב כל 2 דקות על ידי היפוך הצינורות.
  2. צנטריפוגות הגרעינים ב 300 × גרם במשך 5 דקות ב 4 °C (70 °F), ולאחר מכן בזהירות להשליך את supernatant. לשטוף את הכדור 1x עם 1 מ"ל של חוצץ תמוגה קרה, ולהעביר אותו צינור microcentrifuge. לשטוף את הכדור 1x עם 1 מ"ל של חיץ הגבלה 1.25x קר, ו resuspend כל גלולה תא ב 360 μL של 1.25x חוצץ הגבלה.
  3. הוסיפו 11 מיקרו-אל של 10% נתרן דודסיל סולפט (SDS) לכל צינור (0.3% ריכוז סופי), ערבבו בזהירות על ידי צנרת, ודגרה ב 37 °C במשך 45 דקות, רועד ב 700-950 סל"ד. צנרת למעלה ולמטה כדי לשבש גושים כמה פעמים במהלך הדגירה.
  4. להרוות את SDS על ידי הוספת 75 μL של פעילי שטח לא יוניים (פתרון 10%, לראות את טבלת החומרים) לכל צינור (1.6% ריכוז סופי), ודגורה ב 37 °C (45 דקות, רועד ב 950 סל"ד. צנרת למעלה ולמטה כמה פעמים כדי לשבש גושים במהלך הדגירה.
    הערה: אם גושים גדולים וקשים לשבש, להקטין את המהירות המסתובבת ל 400 סל"ד במהלך SDS וטיפולים פעילי שטח. אם קשה לפרק את הגושים על ידי צנרת, לפצל את המדגם לשניים; לכוונן את אמצעי האחסון של מאגר ההגבלות, ה-SDS ופעיל הפעילות; ולהמשיך עם ההחלמה. לאחר מכן, לסובב את הגרעינים במהירות מינימלית (200 × גרם),בזהירות להשליך את supernatant, לאגד את הדגימות יחד חוצץ הגבלה 1X, ולהמשיך עם העיכול. קח aliquot 10 μL כמו מדגם מעוקל (UD).

3. עיכול אנזימטי

  1. לעכל את הכרומטין על ידי הוספת 200 יחידות (U) של Mbo I לכל צינור, ודגרה ב 37 °C (37 °F) לתקופה הנעה בין 4 שעות ללילה בעת סיבוב (950 סל"ד).
  2. למחרת, להוסיף 50 U נוסף של Mbo I לכל צינור, ודגרה ב 37 °C (2 שעות תוך סיבוב (950 סל"ד).
  3. לנטרל את האנזים על ידי דגירה הצינורות ב 60 °C (60 °F) במשך 20 דקות. מניחים את הצינורות על קרח.
    הערה: קח aliquot 10 μL כמו המדגם המעוכל (D).

4. ביוטינילציה של קצות DNA

  1. כדי למלא את רסיסי ההגבלה ולתייג את ה-DNA מסתיים בביוטין, להוסיף 1.5 μL כל אחד של 10 mM dCTP, dGTP, dTTP, 20 μL של 0.4 mM ביוטין dATP, 17.5 μL של טריס נמוך EDTA (TLE) חוצץ [10 mM Tris-HCl, 0.1 mM EDTA, pH 8.0], ו 10 μL של 5 U / μL של קלנאו (DNA פולימראז אני שבר גדול) לכל הצינורות. מערבבים בזהירות ודגרה במשך 75 דקות ב 37 °C (50 °F). לנער ב 700 סל"ד כל 10 s עבור 30 s. מניחים את כל הצינורות על קרח תוך הכנת תערובת קשירה.

5. קשירה

  1. מעבירים כל תערובת כרומטין מעוכלת לצינור 1 מ"ל נפרד עם תערובת קשירה (100 μL של 10x חוצץ קשירה, 10 μL של 10 אלבומין סרום בקר מ"ג / מ"ל, 15 U של T4 DNA ליגאז, ו 425 μL של מים מזוקקים כפולים [ddH2O]). מערבבים היטב על ידי צנרת עדינה, ודגרה לילה ב 16 °C (50 °F).

6. היפוך הצלבה וטיהור DNA

  1. לדרדר חלבונים על ידי הוספת 50 μL של 10 מ"ג / מ"ל Proteinase K לכל צינור, ודגרה ב 37 °C (50 °F) במשך 2 שעות. הפוך crosslinks על ידי הגדלת הטמפרטורה ל 65 °C (65 °F) ודגרה לילה.
  2. להשפיל RNA על ידי הוספת 20 μL של 10 מ"ג / מ"ל RNase A, ודגרה ב 37 °C (7 °F) עבור 1 שעה.
  3. בצע פנול:מיצוי כלורופורם ואחריו משקעים אתנול.
    1. הוסף נפח אחד של פנול-כלורופורם, ומערבבים ביסודיות על ידי היפוך כדי לקבל שלב לבן הומוגני.
      הערה: פנול הוא כימי מסוכן. פעל בהתאם לתקנות הבריאות והבטיחות המתאימות. תעבדי במכסה המנוע.
    2. צנטריפוגה ב 15,000 × גרם במשך 15 דקות. מעבירים את השלב המידי לצינור מיקרוצנטריפוגה טרי של 2 מ"ל. בצע מיצוי אחורי של השכבה התחתונה עם 100 μL של חוצץ TLE, ולהעביר את השלב מימי לתוך אותו צינור 2 מ"ל.
    3. ד"א מזרז על ידי הוספת 2 כרכים של 100% אלכוהול אתיל (EtOH), 0.1 כרכים של 3 M נתרן אצטט, ו 2 μL של 20 מ"ג / מ"ל גליקוגן. דגירה ב -20 מעלות צלזיוס לתקופה הנעה בין 2 שעות ללילה.
    4. ספין ב 15,000 × גרם במשך 30 דקות ב 4 °C (7 °F), ולשטוף את הכדורים 2x עם קר כקרח 70% EtOH. יבש את הכדורים ב RT, ו resuspend ב 100 μL של חוצץ TLE. לכמת את ה- DNA באמצעות צבע פלואורוגני שנקשר באופן סלקטיבי ל- DNA וטראורומטר על פי הוראות היצרן (טבלת החומרים).
      הערה: ניתן להשהות את הפרוטוקול כאן. לאחסן מוצרי קשירה ב 4 °C (5 °F) לטווח הקצר או ב -20 °C (50 °F) לטווח הארוך. השתמש aliquot (100 ng) של החומר כמו מדגם קשירה (L) עבור בקרת איכות.

7. הערכת איכות תבנית Hi-C

  1. בקרת איכות עיכול וקשירה
    1. לטהר DNA מן UD ו- D aliquots על ידי היפוך crosslinks, ולבצע פנול: מיצוי כלורופורם ומכלכי אתנול כמתואר לעיל.
    2. טען 100 ננוגרם של דגימות UD, D ו- L בג'ל אגרוז 1.5%. חפש מריחה שבמרכזה כ-500 bp במדגם D לעומת רצועת משקל מולקולרית גבוהה עבור מדגם L (ראו תוצאות מייצגות).
  2. בקרת כמות יעילות עיכול
    הערה: כדי להעריך את יעילות העיכול בצורה מדויקת יותר, השתמש בדגימות UD ו- D כתבניות לביצוע תגובות שרשרת פולימראז כמותיות (qPCR) באמצעות פריימרים שתוכננו כדלקמן.
    1. עצב זוג פריימר שמגביר שבר DNA המכיל את אתר הגבלת הדנ"א עבור האנזים המשמש לעיכול (Mbo I בפרוטוקול הנוכחי), הנקרא R בנוסחה בשלב 7.2.3.
    2. עצב זוג פריימרים המגביר שבר DNA של פקד שאינו מכיל את אתר ההגבלה עבור האנזים המשמש לעיכול (Mbo I עבור הפרוטוקול הנוכחי), הנקרא C בנוסחה בשלב 7.2.3.
    3. השתמש בערכי סף המחזור (ערכי Ct) של ההגברה כדי לחשב את יעילות ההגבלה בהתאם לנוסחה המוצגת להלן:
      % הגבלה = 100 - 100/2{(CtR - CtC)D - (CtR - CtC)UD}
      כאשר CtR מתייחס לערך ה- Ct של קטע R, ו- CtC מתייחס לערך ה- Ct של קטע C עבור דגימת D ו- UD לדוגמה.
      הערה: אחוז ההגבלה משקף את היעילות של אנזים ההגבלה המבקע את שבר ה- DNA המוגבל (R) בהשוואה לשבר DNA של פקד (C) שאינו מכיל את אתר ה- DNA של ההגבלה. מומלץ להתייעלות הגבלה של ≥ 80%.
  3. זיהוי אינטראקציות ידועות
    1. בצע PCR כדי להגביר פקד קשירה פנימי כדי לבחון אינטראקציות לטווח קצר ו/או לטווח בינוני או ארוך (ראה תוצאות מייצגות).
    2. לחלופין, עצב פריימרים להגברת מוצר קשירה שבו הפריימרים נמצאים בכיוון קדימה-קדימה או הפוך-הפוך בקטעי הגבלה סמוכים.
  4. בקרת מילוי וביוטין
    1. אמת את יעילות הסימון והקשירה של Hi-C על-ידי הגברה ועיכול של אינטראקציה ידועה או מוצר קשירה בין שברי הגבלה סמוכים בגנום, כמתואר לעיל.
      הערה: מילוי וקשירה מוצלחים של אתר Mbo I (GATC) מייצר אתר חדש עבור אנזים ההגבלה Cla I (ATCGAT) בצומת קשירה ומחדש את אתר Mbo I.
    2. לעכל את מוצר PCR עם Mbo I, Cla I, או שניהם. לאחר הפעלת הדגימות על ג'ל 1.5-2%, להעריך את המספר היחסי של 3C ו- Hi-C קשירה צמתים על ידי כימות את עוצמת הרצועות לחתוך uncuts26.
      הערה: יש צורך ביעילות של > 70% (ראו תוצאות מייצגות).

8. סוניקציה

  1. Sonicate הדגימות כדי להשיג 200-500 bp שברי DNA. עבור המכשיר המשמש בפרוטוקול זה (ראה טבלת החומרים), לדלל את המדגם (מ 5 עד 10 מיקרוגרם) ב 130 μL של ddH2O לכל צינור, ולהגדיר את המכשיר sonicate ל 400 bp: רמת מילוי: 10; גורם חובה: 10%; עוצמת אירוע שיא (w): 140; מחזורים לכל פרץ: 200; זמן (ים): 80.

9. הסרת ביוטין / תיקון קצה

הערה: השלבים המוצגים להלן מותאמים עבור 5 מיקרוגרם של DNA Hi-C.

  1. כדי לבצע הסרת ביוטין, להעביר את המדגם (130 μL) לתוך צינור microcentrifuge טרי. הוסף 16 μL של 10x חיץ קשירה, 2 μL של 10 mM dATP, 5 μL של T4 DNA פולימראז (15U), ו 7 μL של ddH2O (160 μL של נפח כולל). דגירה ב 20 °C (50 °F) במשך 30 דקות.
  2. הוסף 5 μL של 10 mM dNTPs, 4 μL של 10x מאגר קשירה, 5 μL של T4 polynucleotide kinase (10 U / μL), 1 μL של Klenow, ו 25 μL של ddH2O (200 μL של נפח כולל). דגירה ב 20 °C (50 °F) במשך 30 דקות.

10. בחירת גודל

  1. כדי לבחור קטעים בעיקר בטווח הגודל של 250-550 bp, בצעו תחילה את בחירת הגודל הפיך של פאזה מוצקה (SPRI) עם 0.6x, ואחריה 0.90x בהתאם להוראות היצרן, וחליקו את ה- DNA באמצעות 100 μL של TLE.

11. ביוטין משיכה/ A-tailing / מתאם קשירה

הערה: בצע את הכביסות על ידי שימוש חוזר של החרוזים המגנטיים על ידי מערבולת, לסובב את הדגימות במשך 3 דקות על גלגל מסתובב, ולאחר מכן לסובב בקצרה את המדגם ולהניח אותו על המעמד המגנטי. אפשר לחרוזים להיצמד למגנט, להשליך את הסופר-טבעי ולהמשיך עם שלב הכביסה הבא. בצע את הכביסות ב 55 °C (55 °F) על בלוק תרמו עם סיבוב במקום הגלגל המסתובב.

  1. האיפור את הנפח הסופי עד 300 μL לדגימה עם TLE עבור משיכה למטה. הכן את מאגרי שטיפת החרוזים: 1x חוצץ טווין (TB) (TB: 5 mM Tris-HCl pH 8.0, 0.5 מ"מ EDTA, 1 M NaCl, 0.05% Tween), 0.5x TB, 1x חוצץ ללא טווין (NTB) (5 מ"מ טריס-HCl pH 8.0, 0.5 מ"מ EDTA, 1 M NaCl), 2x NTB.
  2. השתמש ב- 150 μL של חרוזים מגנטיים הקשורים לסטרפטווידין (ראה טבלת החומרים) לכל ספריה. לשטוף את החרוזים 2x עם 400 μL של 1x TB. לאחר מכן resuspend חרוזים ב 300 μL 2x NTB.
  3. מערבבים את החרוזים עם חומר 300 μL Hi-C ודגרה ב RT במשך 30 דקות על גלגל מסתובב כדי לאפשר כריכת ביוטין לחרוזים סטרפטווידין.
  4. לשטוף את החרוזים עם 400 μL של 0.5x TB, ודגורה ב 55 °C (55 °F) במשך 3 דקות, מסתובב ב 750 סל"ד. לשטוף את החרוזים ב 200 μL של 1x מאגר הגבלה.
  5. Resuspend החרוזים ב 100 μL של תערובת זנב dATP (5 μL של 10 mM dATP, 10 μL של 10x חוצץ הגבלה, 5 μL של Klenow exo-, ו 80 μL של ddH2O). דגירה ב 37 °C (50 °F) במשך 30 דקות.
  6. הסר את supernatant, לשטוף את החרוזים 2x עם 400 μL של 0.5x TB על ידי דגירה ב 55 °C (55 °F) במשך 3 דקות ומסתובב ב 750 סל"ד.
  7. לשטוף את החרוזים עם 400 μL של 1x NTB ולאחר מכן עם 100 μL של 1x חיץ קשירה.
  8. resuspend החרוזים ב 50 μL של חוצץ קשירה 1x, ולהעביר את המתלה לצינור חדש. הוסף 4 μL של מתאמי PE חישול מראש (15 μM מלאי) ו 2 μL של ligase T4 (400 U / μL, כלומר, 800 U / tube); דגירה ב RT במשך 2 שעות.
    הערה: לפני חישול המתאמים על ידי הוספת נפחים שווים של מתאמי PE 1.0 ו- PE 2.0 (מלאי 30 מיקרומטר) ודגרה במשך 10 דקות ב- RT (ראה טבלת החומרים).
  9. לכבוש מחדש את החרוזים על ידי הסרת supernatant ולשטוף את החרוזים 2x עם 400 μL של שחפת. לשטוף את החרוזים עם 200 μL של 1x NTB, ולאחר מכן עם 100 μL של 1x מאגר הגבלה, ו respend החרוזים ב 40 μL של 1x מאגר הגבלה.

12. הגברת PCR

  1. הגדר PCRs של נפח μL 25 עם 5, 6, 7 ו 8 מחזורים. עבור כל PCR, השתמש ב:
    מתכון תגובה
    חרוזי היי-סי2.5 μL
    10 μM PE PCR פריימר 1 (טבלת חומרים)0.75 μL
    10 μM PE PCR פריימר 2 (טבלת חומרים)0.75 μL
    10 מ"מ dNTP0.6 μL
    מאגר תגובה 5x5 μL
    פולימראז DNA0.3 μL
    ddH2O14.65 μL
    סך25 μL
    מחזוריםטמפרטורהזמן
    198 °C (77 °F)שנות ה-30
    n מחזורים98 °C (77 °F)שנות ה-10
    65 °C (75 °F)שנות ה-30
    72 °C (72 °F)שנות ה-30
    172 °C (72 °F)7 דקות

13. הגברה סופית של PCR

  1. בצע הגברה סופית של PCR באמצעות אותם תנאים כמתואר לעיל ומספר המחזורים שנבחרו. פצל את המדגם באמצעות 5 μL של חרוזי Hi-C כתבנית בתגובות μL 50.
  2. לאסוף את כל תגובות PCR ולהעביר אותם לצינור טרי. השתמש במגנט כדי להסיר את חרוזי סטרפטבידין ולשחזר את supernatant (מוצרי PCR). העבר את החרוזים לצינור טרי, לשטוף את החרוזים כפי שצוין בשלב 11.2.9, ולאחסן במאגר הגבלה 1x ב 4 °C (70 °F) כגיבוי.
  3. לטהר את מוצרי PCR באמצעות 0.85x את נפח חרוזים SPRI על פי הוראות היצרן. Elute עם 30 μL של חוצץ TLE.
  4. לכמת את ספריית Hi-C באמצעות מכשיר פלואורומטרי, ולאשר את איכות הספרייה על ידי אלקטרופורזה נימית מבוססת שבב.
  5. כנקודת ביקורת באיכות האחרונה, השתמש ב- 1 μL של ספריית Hi-C כתבנית לביצוע תגובת PCR באמצעות 10 מחזורים באמצעות אותם תנאים המתוארים בשלב 12.1. חלק את מוצר ה- PCR לשני צינורות microcentrifuge: לעכל אחד עם Cla I ולהשאיר את השני לא מעוכל כמו שליטה. הפעל את המוצרים בג'ל אגרוז 1.5%-2% (ראו תוצאות מייצגות).
  6. המשך לרצף רצף משויך של 50 bp או 75 bp בפלטפורמת ריצוף מתאימה.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

מתואר להלן התוצאות של פרוטוקול Hi-C מוצלח (ראה סיכום של זרימת העבודה של פרוטוקול Hi-C באיור 1A). ישנם מספר מחסומי בקרת איכות במהלך ניסוי Hi-C בגרעין. עליקוטים לדוגמה נאספו לפני (UD) ואחרי (D) שלב הגבלת הכרומטין וכן לאחר קשירה (L). הקישורים התהפכו, והדנ"א טוהר ורץ על ג'ל אגרוז. מריחה של 200-1000 bp נצפתה כאשר הגבלה עם Mbo הייתי מוצלח(איור 1B). הגודל הצפוי של המולקולה תלוי באנזים ההגבלה של בחירה. אם החיבור הצליח, רצועת משקל מולקולרית גבוהה נראתה בחלק העליון של הג'...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

שיטת Hi-C בגרעין המוצגת כאן אפשרה חקירה מפורטת של טופולוגיית הגנום של Drosophila ברזולוציה גבוהה, ומספקת תצוגה של אינטראקציות גנומיות בקנה מידה גנומי שונים, החל מלולאות כרומטין בין אלמנטים רגולטוריים כגון מקדמים ומשפרים ועד TADs וזיהוי תאים גדולים25. אותה טכנולוגיה יושמה גם ביעילות על רקמות יונקים עם כמה שינויים33. לדוגמה, בעת עיבוד רקמה במקום השעיה של תא בודד, הרקמה מסוננת באמצעות מסנן 70 מיקרומטר, ואת שלב התמוגה מבוצע תוך הומוגניזציה של החומר באמצעות homogenizer Dounce. ב...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

המחברים מצהירים שאין אינטרסים מתחרים.

תודות

עבודה זו נתמכה על ידי תוכנית התמיכה הטכנולוגית והמחקרית של UNAM (PAPIIT) במספר מענקים בשנת 207319 ובמועצה הלאומית למדע וטכנולוגיה (CONACyT-FORDECyT) מספר מענק 303068. א.א.ל. הוא סטודנט לתואר שני הנתמך על ידי המועצה הלאומית למדע וטכנולוגיה (CONACyT) מספר CVU 968128.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
16% (נפח/נפח) תמיסת פרפורמלדהידAgar ScientificR1026
ביוטין-14-dATPInvitrogenCA1524-016
אנזים ClaINEBR0197S
COVARIS UltrasonicatorCovarisLE220-M220
Cut SmartNEBB72002S
מדיום הנשר השונה של Dulbecco (DMEM) 1xLife Technologies41965-039
Dynabeads MyOne Streptabidin C1Invitrogen65002
סרום בקר עוברי (FBS) סיגמאF9665
Klenow Dna PolI שבר גדולNEBM0210L
Klenow exo(-)NEBM0210S
מאגר קשירהNEBB020S
אנזים MboINEBR0147M
NP40-IgepalSIGMACA-420חומר פעילי שטח לא יוני לתוספת במאגר ליזה
מתאם PE 1.0Illumina5'-P-GATCGGAAGAGCGGTTCAGCAG
מתאם GAATGCCGAG-3'PE
2.0Illumina5'-ACACTCTTTCCCTACACGCCT
CTTCCGATCT-3'PE
PCR פריימר 1.0Illumina5'-AATGATACGGCGACCACCGAGAT
CTACACTCTTTCCCTACACGG
פריימר CTCTTCCGATCT-3'PE
PCR 2.0Illumina5'-CAAGCAGAAGACGGCATACGAG
ATCGGTCTCGGCATTCCTGCTGA
ACCGCTCTCCGATCT-3'פנול
: כלורופורם: אלכוהול איזואמיל 25:24:1SIGMAP2069
פריימר 1 (אינטראקציה ידועה, איור 2A)Sigma5'-TCGCGGTATTTTGCGTTTGA-3'Primer
2 (אינטראקציות ידועות, איור 2A)Sigma5'-CCTCCCTGCCAAAACGTTTT-3'טבלית
קוקטייל מעכב פרוטאזRoche4693132001
Proteinase KRoche3115879001
QubitThermoFisherQ33327
RNAseRoche10109142001
SPRI חרוזיםבקמןB23318
T4 DNA ligaseInvitrogen15224-025
T4 DNA פולימראזNEBM0203S
T4 פולינוקלאוטיד קינאז (PNK) NEBM0201L
TaqPhusionNEBM0530SDNA פולימראז
טריטון X-100חומר פעילי שטח לא יוני לכיבוי SDS

מקורות

  1. Cremer, T., Cremer, C. Chromosome territories, nuclear architecture and gene regulation in mammalian cells. Nature Review Genetics. 2, 292-301 (2001).
  2. Lieberman-Aiden, E., et al. Comprehensive mapping of long-range interactions reveals folding principles of the human genome. Science. 326, 289-293 (2009).
  3. Dixon, J. R., et al. Topological domains in mammalian genomes identified by analysis of chromatin interactions. Nature. 485, 376-380 (2012).
  4. Sexton, T., et al. Three-dimensional folding and functional organization principles of the Drosophila genome. Cell. 148 (3), 458-472 (2012).
  5. Dixon, J. R., Gorkin, D. U., Ren, B. Chromatin domains: the unit of chromosome organization. Molecular Cell. 62, 668-680 (2016).
  6. Bonev, B., Cavalli, G. Organization and function of the 3D genome. Nature Reviews Genetics. 17, 661-678 (2016).
  7. Lupiáñez, D. G., Spielmann, M., Mundlos, S. Breaking TADs: how alterations of chromatin domains result in disease. Trends in Genetics. 32, 225-237 (2016).
  8. Phillips, J. E., Corces, V. G. CTCF: master weaver of the genome. Cell. 137 (7), 1194-1211 (2009).
  9. Hong, S., Kim, D. Computational characterization of chromatin domain boundary-associated genomic elements. Nucleic Acids Research. 45, 10403-10414 (2017).
  10. Zuin, J., et al. Cohesin and CTCF differentially affect chromatin architecture and gene expression in human cells. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 111 (3), 996-1001 (2014).
  11. Guo, Y., et al. CRISPR inversion of CTCF sites alters genome topology and enhancer/promoter function. Cell. 162, 900-910 (2015).
  12. Lupiáñez, D. G., et al. Disruptions of topological chromatin domains cause pathogenic rewiring of gene-enhancer interactions. Cell. 161, 1012-1025 (2015).
  13. Van-Steensel, B., Furlong, E. E. M. The role of transcription in shaping the spatial organization of the genome. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 20, 327-337 (2019).
  14. Merkenschlager, M., Nora, E. P. CTCF and cohesin in genome folding and transcriptional gene regulation. Annual Review of Genomics and Human Genetics. 17 (1), 17-43 (2016).
  15. Hansen, A. S., Pustova, I., Cattoglio, C., Tjian, R., Darzacq, X. CTCF and cohesin regulate chromatin loop stability with distinct dynamics. Elife. 6, 1-10 (2017).
  16. Van Bortle, K., et al. Insulator function and topological domain border strength scale with architectural protein occupancy. Genome Biology. 15, 82(2014).
  17. Ramírez, F., et al. High-resolution TADs reveal DNA sequences underlying genome organization in flies. Nature Communications. 9, 189(2018).
  18. Ulianov, S. V., et al. Active chromatin and transcription play a key role in chromosome partitioning into topologically associating domains. Genome Research. 26, 70-84 (2016).
  19. Rowley, M. J., et al. Evolutionarily conserved principles predict 3D chromatin organization. Molecular Cell. 67, 837-852 (2017).
  20. Gavrilov, A. A., Golov, A. K., Razin, S. V. Actual ligation frequencies in the chromosome conformation capture procedure. PLoS One. 8, 60403(2013).
  21. Gavrilov, A. A., et al. Disclosure of a structural milieu for the proximity ligation reveals the elusive nature of an active chromatin hub. Nucleic Acids Research. 41, 3563-3575 (2013).
  22. Nagano, T., et al. Single-cell Hi-C reveals cell-to-cell variability in chromosome structure. Nature. 502, 59-64 (2013).
  23. Rao, S. S. P., et al. A 3D map of the human genome at kilobase resolution reveals principles of chromatin looping. Cell. 159 (7), 1665-1680 (2014).
  24. Nagano, T., et al. Comparison of Hi-C results using in-solution versus in-nucleus ligation. Genome Biology. 16, 175(2015).
  25. Arzate-Mejía, R., et al. In situ dissection of domain boundaries affect genome topology and gene transcription in Drosophila. Nature Communications. 11, 894(2020).
  26. Schoenfelder, S., et al. Promoter capture Hi-C: high-resolution, genome-wide profiling of promoter interactions. Journal of Visualized Experiments. (136), e57320(2018).
  27. Servant, N., et al. HiC-Pro: an optimized and flexible pipeline for Hi-C processing. Genome Biology. 16, 259(2015).
  28. Philip, E., Måns, M., Sverker, L., Max, K. MultiQC: Summarize analysis results for multiple tools and samples in a single report. Bioinformatics. 10, 1093(2016).
  29. Wingett, S., et al. HiCUP: pipeline for mapping and processing Hi-C data. F1000 Research. 4, 1310(2015).
  30. Imakaev, M., et al. Iterative correction of Hi-C data reveals hallmarks of chromosome organization. Nature Methods. 9 (10), 999-1003 (2012).
  31. Akdemir, K. C., Chin, L. HiCPlotter integrates genomic data with interaction matrices. Genome Biolog. 16, 198(2015).
  32. Ramirez, F., et al. High-resolution TADs reveal DNA sequences underlying genome organization in flies. Nature Communications. 9, 189(2018).
  33. Ando-Kuri, M., et al. The global and promoter-centric 3D genome organization temporally resolved during a circadian cycle. bioRxiv. , (2020).
  34. Cuellar-Partida, G., et al. Epigenetic priors for identifying active transcription factor binding sites. Bioinformatics. 28 (1), 56-62 (2012).
  35. Zhang, Y., et al. Model-based analysis of ChIP-Seq (MACS). Genome Biology. 9, 137(2008).
  36. Ong, C. -T., et al. Poly(ADP-ribosyl)ation regulates insulator function and intrachromosomal interactions in Drosophila. Cell. 155 (1), 148-159 (2013).
  37. Fresán, U., et al. The insulator protein CTCF regulates Drosophila steroidogenesis. Biology Open. 4 (7), 852-857 (2015).
  38. Quinodoz, S., et al. RNA promotes the formation of spatial compartments in the nucleus. Cell. 174, 744-757 (2018).
  39. Olivares-Chauvet, P., et al. Capturing pairwise and multi-way chromosomal conformations using chromosomal walks. Nature. 540 (7632), 296-300 (2016).
  40. Beagrie, R., et al. Complex multi-enhancer contacts captured by genome architecture mapping. Nature. 543, 519-524 (2017).
  41. Redolfi, J., et al. DamC reveals principles of chromatin folding in vivo without crosslinking and ligation. Nature Structural and Molecular Biology. 26, 471-480 (2019).
  42. Maxwell, R., et al. HiChIP: efficient and sensitive analysis of protein-directed genome architecture. Nature Methods. 13, 919-922 (2016).
  43. Gao, X., et al. C-BERST: Defining subnuclear proteomic landscapes at genomic elements with dCas9-APEX2. Nature Methods. 15 (6), 433-436 (2018).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

תגיות

ארגון כרומטיןדומיינים מקושרים טופולוגיתגבולות TADחלבוני ארכיטקטורהעיכול כרומטיןביוטין פול-דאוןעריכה גנטית באמצעות CRISPRאינטראקציות גנומיות
In-Nucleus Hi-C בתאי דרוסופילה
צרו קשר
המליצו לספרייה

פרטיות

תנאי שימוש

מדיניות

זכויות יוצרים © 2026 MyJoVE Corporation. כל הזכויות שמורות.