Name: מדידת הקרוב ממברנה פלזמה ו Global Dynamics סידן תאיים בתוך האסטרוציטים (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2009-04-26T23:27:00.000+00:00
Duration: 12 min 48 s
Description: למד מדידת דינמיקת סידן תאי באסטרוציטים באמצעות מיקרוסקופיית שיקוף פנימי כולל ואפי-פלואורסצנציה. שיטה זו מאפשרת תצפית בו-זמנית בסידן גלובלי ובסמוך לממברנה הפלזמה.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

עבודה זו נתמכה על ידי קרן הזיכרון Uehara של יפן (כדי ES) וכן קרן וייטהול, המכון הלאומי להפרעות נוירולוגיות ושבץ ואת פרס שטיין אופנהיימר הקרן (עד BSK).

ניסיונית נהלים הליך הניסוי מורכב משני חלקים מרכזיים המתוארים בצורה צעד חכם למטה. חלק 1: הכנת לתרבויות ASTROCYTE בהיפוקמפוס בקצרה, מעורבים ההיפוקמפוס astrocyte-נוירון תרבויות הוכנו באמצעות פרוטוקול מבוסס היטב 1,2,3. אנו אופטימיזציה הליך להניב האסטרוציטים תרבותי בריא. כל הנהלים המפורטים להלן אמור להתבצע בסביבה סטרילית כמו מכסה המנוע זרימה למינרית. הכנת coverslips <ul style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> 22 מ&quot;מ coverslips (VWR, 48380-068) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Poly-D-ליזין (PDL, סיגמה P0899), aliquots (1 מ&quot;ג / מ&quot;ל) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Laminin aliquots (20 מיקרוגרם / מ&quot;ל): להוסיף 49 מ&quot;ל של מים סטריליים עד 1 מ&quot;ג / מ&quot;ל ​​פתרון laminin (Sigma L2020), לעשות aliquots 1.2 מ&quot;ל ולאחסן ב -20 ° C </li></ul><ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ממיסים PDL במים סטריליים (50 מיקרוגרם / מ&quot;ל) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> החיטוי coverslips, לשטוף עם מים סטריליים במקום ב PDL (20 מ&quot;ל עבור 100 coverslips). השאירו בטמפרטורת החדר למשך הלילה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> החלף PDL עם מים סטריליים (3 שוטף נרחב). לאחר מכן לייבש את coverslips ולאחסן ב 4 ° C. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> יום לפני ציפוי האסטרוציטים, coverslips המקום היחיד בבאר סטרילי בצלחת 6-באר (Multiwell Flat-Bottom צלחות עם מכסים, סטרילי מ BD Bioscience). שימי 400 μl של laminin על coverslip כל דגירה לילה, בחממה, כדי למנוע אידוי. </li></ol> בתור Dissection התקשורת: <ul style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> 500 מ&quot;ל מלח מאוזן ארל של פתרון (EBSS) (1X), נוזל (Invitrogen, 14155-063) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> 5 מ&quot;ל HEPES פתרון (Sigma, H0887) </li></ul> בהיפוקמפוס התקשורת: <ul style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> 412.5 מ&quot;ל בינוני Essential Minimum (מ) (1X), הנוזל מכיל מלחים של ארל, אך לא אדום L-גלוטמין או פנול (Invitrogen, 51200-038) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> 10 מ&quot;ל גלוקוז (Sigma, D-(+), גלוקוז anhydrous SIGMA ULTRA G7528) 1 M ב ממ </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> 5 מ&quot;ל פניצילין, סטרפטומיצין (Invitrogen, 15140-122) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Pyruvate 5 מ&quot;ל נתרן פתרון (Sigma, S8636) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> 12.5 מ&quot;ל HEPES פתרון 1 M (Sigma, H0887) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> 5 מ&quot;ל N-2 מוסף (100x), נוזל (Invitrogen, 17502-048) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> 50 מ&quot;ל סרום סוס, חום מומת (Invitrogen, 26050-088) </li></ul> Papain פתרון: <ul style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוסף 5 מ&quot;ל של התקשורת לנתיחה לתוך בקבוקון PAPAIN-022 וורטינגטון (LK003178; הריכוז הסופי, 20 U / ml) ו לדגור על 37 מעלות צלזיוס למשך 60 דקות. </li></ul><ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לערוף גורים בני חולדה P1 (בדרך כלל 2 גורים) בעקבות הנחיות בדקה ואושרה על ידי תקנות לאומיות טיפול בבעלי חיים מוסדיים המקומי ועדת שימוש. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הסרה של עור הגולגולת והמוח מקום בצלחת פטרי מלאות התקשורת לנתיחה קר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוסר קרומי המוח, לנתח את שתי ההמיספרות ו לנתח hippocampi. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> קוצצים את hippocampi אל ~ חתיכות 1x1 מ&quot;מ לעכל בפתרון papain על 37 מעלות צלזיוס במשך 11-13 דקות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר פיסות הרקמה התיישבו, להסיר בזהירות papain להוסיף 5 מ&quot;ל של מדיום בהיפוקמפוס כדי להסיר כל עקבות של האנזים. חזור על שלב זה resuspend במדיום בהיפוקמפוס (2 מ&quot;ל). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Triturate התאים ~ 5 פעמים עד שאין גושים שמאל, עם שלושה להבה מלוטש pipettes של טרחנים קטנים יותר ויותר (1000 מיקרומטר, 500 מיקרומטר ו ~ ~ 300 מיקרומטר). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Triturated פעם אחת, להעביר את התאים דרך מסננת תא (גודל הנקבוביות, 70 מיקרומטר, BD Bioscience). ספירת התאים μl 10 ההשעיה. כוון את עוצמת הקול של המדיום בהיפוקמפוס כדי שיהיה 400,000 תאים / מ&quot;ל. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לשאוב את laminin coverslips, ולפני מכסה את יכולה יבש, 200 צלחת μl של ההשעיה תא לכל coverslip. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> עזוב אותם לצרף דקות 60 בחממה, ולאחר מכן להוסיף 2 מ&quot;ל של מדיום בהיפוקמפוס בכל טוב. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> למחרת, לשאוב בינוני בהיפוקמפוס הישן כדי להסיר תאים מתים ופסולת ומוסיפים 2 מ&quot;ל של מדיום מראש חימם בהיפוקמפוס טריים. </li></ol> תחזוקה Neurobasal התקשורת: <ul style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> 500 מ&quot;ל neurobasal (Invitrogen, 12348-017) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> 10 מ&quot;ל B27 בסרום תוספת חינם (Invitrogen, 17504-044) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> 5 מ&quot;ל פניצילין, סטרפטומיצין (Invitrogen, 15140-122) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> 1.25 מ&quot;ל L-גלוטמין (Invitrogen, 25030-149) </li></ul> הזנת ה-astrocyte נוירון תרבויות פעמיים בשבוע עם המדיום neurobasal, החל ארבעה ימים לאחר ציפוי. Preincubate התקשורת על 30 דקות בחממה בבקבוק מאוורר לאזן את הטמפרטורה ו-CO 2. חלק 2: הדמיה סידן הקלטה חיץ בהיפוקמפוס: 110 mM NaCl, 5.4 mMKCl, 1.8 mM CaCl 2, 0.8 mM MgCl 2, 10 mM D-גלוקוז, HEPES 10 מ&quot;מ (כל כימיקלים Sigma) 7.4 pH (מנוכה עם NaOH). טוען אינדיקטור צבע סידן לתוך האסטרוציטים <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים את התרבות בבאר בצלחת 6-טוב מלא 2 חיץ מ&quot;ל בהיפוקמפוס הקלטה המכיל 2.5 מיקרומטר Fluo-4, בבוקר (Invitrogen, F-14217) ו Pluronic 0.05% ® פתרון ה-F-127 20% DMSO (Invitrogen, P-3000MP) ו דגירה בטמפרטורת החדר למשך 10-30 דקות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הסר Fluo-4 פתרון ולשטוף coverslips 3 פעמים עם חיץ הקלטה דגירה בהיפוקמפוס בטמפרטורת החדר למשך 30 דקות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים את coverslip על החדר, לנקות את הצד השני של coverslip עם נוזל לניקוי עדשות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לשים טיפה אחת קטנה של שמן טבילה (שמן טבילה TYPE DF מ Cargille) על המטרה ולשים תא (תא פתוח coverslip 25 מ&quot;מ עגול מבית וורנר מכשירים) על הבמה של המיקרוסקופ (אולימפוס IX71). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> תראו את התאים באמצעות שידור אור כדי לראות כיצד התאים נראים, ולקבל אותם אל המוקד. ואז להאיר את התאים עם 488 ננומטר מתוך monochromator (צבעוני V מ עד Vision) ולקבוע אם האות פלואורסצנציה של Fluo-4 הוא אחיד לזיהוי האסטרוציטים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השתמש EPI ו TIRF תאורה למדוד סידן האסטרוציטים. </li></ol> TIRF מיקרוסקופיה בקצרה, אנו משתמשים במיקרוסקופ IX71 אולימפוס מצויד במצלמה iXon אנדור EMCCD DV887DCS. השליטה של ​​עירור ורכישת התמונה מושגת באמצעות תוכנת TILLVision. הקורות של 454/488/515 ננומטר ארגון (100 mW) ו - 442 ננומטר של מצב מוצק (45 mW) לייזרים משולבים ומבוקר עם עד Polyline לייזר combiner, מעבה TIRF נמל כפול ולסנן tuneable acoustoptical הבקר (AOTF; כל מ עד Photonics) ו fed לתוך סיב הלהקה Kineflex רחבה לכניסה הקבל TIRF. אנו משתמשים 60x עדשת אולימפוס 1.45 NA להשיג TIRF. לזכות המצלמה מותאמת עבור כל astrocyte לספק את האות הטוב ביותר לתמונות רעש. הרקע והעקרונות של מיקרוסקופיה TIRF נבדקו לאחרונה 4, 5. מרבית הרכיבים האופטיים אנו משתמשים נרכשו מ עד Photonics, המהווה כיום חלק Agilent Technologies (http://www.till-photonics.com/). עומק החדירה TIR ניתן לחשב משוואות להלן. <img style="float:left;" src="/files/ftp_upload/1142/equation.png" alt="משוואה" /> d = חדירה לעומק n1 = מקדם השבירה של זכוכית = n2 מקדם השבירה של התא זווית = של שכיחות נאי = הצמצם המספרי של שכיחות על מנת להבטיח את הלייזר מיושר בצורה אופטימלית עבור TIRF אנו מוצאים את זה שימושי כדי לצפות 100 ננומטר פלורסנט חרוז (Invitrogen, F8803). אנו מציגים עדיין מסגרות וקטעי וידאו של חרוזים עם EPI ו מיקרוסקופיה TIRF. כאשר ב TIRF, אחד מציין עלייה דרמטית האות לרעש-to-וחרוזים התצוגה דיפוזיה בראונית. אנחנו מוצאים את זה שימושי כדי לבחון את התנהגותם של 100 ננומטר חרוזים עם מיקרוסקופיה TIRF על בסיס קבוע (~ פעם בשבוע) כדי להיות בטוח כי TIRF אופטימלי מתרחש, ולא בתאורה אלכסונית נפגעת כי היה להתרחש אם זווית ביקורתית לא היו שווים α (ראה איור 1). יישום ה-G-חלבון אגוניסטים לקולטן מצמידים האסטרוציטים להביע מגוון של GQ מצמידים קולטנים 6, 7 כולל קולטני גלוטמט metabotropic ואת הקולטנים P2Y (אגוניסט, ATP, ADP). ההפעלה של רצפטורים אלו מוביל עליות משמעותיות רמות הסידן בתוך האסטרוציטים תאיים. למשל, אפשר בקלות להבחין הגבהים סידן תאיים במהלך היישום של ה-ATP (30 מיקרומטר) ל 8-10 האסטרוציטים. אנו משתמשים פתרון מהיר switcher מ וורנר מכשירים שנקרא VC-77SP Fast-Step System זלוף (http://www.warneronline.com/index.cfm). עם פתרונות בשיטה זו ניתן ליישם בתוך פחות מ ~ 10 מילישניות. <img src="/files/ftp_upload/1142/Fig 1a.jpg" alt="איור 1" /> <img src="/files/ftp_upload/1142/fig1c.jpg" alt="" /> באיור 1. קריקטורה ותצלומים של הדמיה להגדיר. א מציג תצלום של המיקרוסקופ רכוב על airtable, ואילו (ב) מראה תמונה של האסיפה לייזר, בקרי ותיבות הקורה. ג מציג תמונה של הבמה מיקרוסקופ עם תא רכוב הדמיה. משמאל המכשיר זלוף מהיר ניתן לראות (יחד עם מנוע צעד צינורות תטא). מימין headstage של מגבר Axopatch 200A נתפסת. הקריקטורה schematizes נתיב האור להגדיר את מעלה כמה TIRF מושגת. הלייזר מתמקדת במישור המוקד האחורי של העדשה 60x NA 1.45 אובייקטיבי מעמדה מותאם מחוץ למרכז כך עולה לתוך השמן טבילה ב α זווית ביקורתית. בשלב זה קרן סובל השתקפות פנימית מוחלטת דועך עם λ מרחק (ראו משוואה בטקסט הראשי) לתוך המדיום של מקדם השבירה נמוך. במקרה זה מדובר החיץ שמסביב הקלטה האסטרוציטים ואת האסטרוציטים עצמם. התוצאה היא עירור אופטי (ובכך הדמיה) של מולקולות בתוך ~ 100 ננומטר של הממברנה הפלסמטית. בקריקטורה של התא הזה מוצג ירוק קולטנים &quot;נרגש&quot; קרום, ואילו אלה בתוך התא או על המשטח העליון של התא הם לא מתרגשים. החשבון המלא של מיקרוסקופיה TIRF סופק על ידי Steyer ו Almers 4. <img src="/files/ftp_upload/1142/fig2.png" alt="איור 2" /> איור 2. תמונות של 100 ננומטר חרוזי ניאון רכשה עם EPI ו מיקרוסקופיה TIRF. א מציג תמונות EPI של שדה הראייה עם כמה עשרות חרוזי 100 ננומטר ניאון. נקודת החצים האדומים כדי חרוזים כי יש התיישבו על coverslip הזכוכית, בעוד ראשי חץ כחול הצבע חרוזים כי הם לשדר במים. ב &#39;מציג תמונה TIRF של אותו שדה הראייה כפי שמוצג א בתצוגה זו רק את החרוזים חסיד שמוצג על ידי החיצים האדומים הם גלויים. הסיבה לכך היא כי אלה התיישבו על coverlsip הזכוכית היו אפוא בתחום 100 ננומטר ~ חלוף. חרוזים שמוצג על ידי החצים הכחולים אינם בתוך האזור הזה הם בלתי נראים אפוא את התמונות TIRF. מגרשים התחתון להראות טיוח 3D של התמונות. ברור כי עלייה גדולה האות לרעש-to-מתרחש עבור חרוזים בתחום חלוף כאשר נצפתה על ידי מיקרוסקופ TIRF. למעשה, עבור תמונות אלו את האות לרעש עבור EPI היה 7.1 ± 0.6, ואילו TIRF זה היה 20 ± 0.7. <img src="/files/ftp_upload/1142/fig3.png" alt="איור 3" /> איור 3. תמונות של האסטרוציטים עמוסה Fluo-4 צבע סידן אינדיקטור רכשה עם EPI ו מיקרוסקופיה TIRF. א EPI תמונות של שדה הראייה עם חמישה האסטרוציטים. ב התמונה TIRF של אותו שדה הראייה שמוצג ב הערה כי תמונות A ו-B הם שונים באופן משמעותי. הסיבה לכך היא כי עם TIRF תאורה רק הממברנה הפלסמטית האזורים הפרד קרוב coverslip הזכוכית הם צילמו. לוחות נמוך להראות ATP-עורר הארעיים סידן תוך תאי צילמו עם EPI ו מיקרוסקופיה TIRF.

<ol><li>Richler, E., Chaumont, S., Shigetomi, E., Sagasti, A., Khakh, B. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+approach+to+image+activation+of+transmitter-gated+P2X+receptors+in+vitro+and+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Methods%22%5BJournal%5D)">An approach to image activation of transmitter-gated P2X receptors in vitro and in vivo.</a> Nature Methods. 5, 87-93 (2008).</li>
<li>Granseth, B., Odermatt, B., Royle, S. J., Lagnado, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Clathrin-mediated+endocytosis+is+the+dominant+mechanism+of+vesicle+retrieval+at+hippocampal+synapses%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Clathrin-mediated endocytosis is the dominant mechanism of vesicle retrieval at hippocampal synapses.</a> Neuron. 51, 773-786 (2006).</li>
<li>Nunez, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Primary+culture+of+hippocampal+neurons+from+P0+newborn+rats%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Primary culture of hippocampal neurons from P0 newborn rats.</a> J Vis Exp. 19, (2008).</li>
<li>Steyer, J. A., Almers, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+real-time+view+of+life+within+100+nm+of+the+plasma+membrane%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Mol+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">A real-time view of life within 100 nm of the plasma membrane.</a> Nat Rev Mol Cell Biol. 2, 268-275 (2001).</li>
<li>Jaiswal, J. K., Fix, M., Takano, T., Nedergaard, M., Simon, S. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Resolving+vesicle+fusion+from+lysis+to+monitor+calcium-triggered+lysosomal+exocytosis+in+astrocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Resolving vesicle fusion from lysis to monitor calcium-triggered lysosomal exocytosis in astrocytes.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 104, 14151-14156 (2007).</li>
<li>Araque, A., Carmignoto, G., Haydon, P. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dynamic+signalling+between+astrocytes+and+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22Annu+Rev+Physiol%22%5BJournal%5D)">Dynamic signalling between astrocytes and neurons.</a> Annu Rev Physiol. 63, 795-813 (2001).</li>
<li>Haydon, P. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((GLIA%3A+listening+and+talking+to+the+synapse%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Neurosci%22%5BJournal%5D)">GLIA: listening and talking to the synapse.</a> Nat Rev Neurosci. 2, 185-193 (2001).</li>
<li>Bowser, D. N., Khakh, B. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((ATP+excites+interneurons+and+astrocytes+to+increase+synaptic+inhibition+in+neuronal+networks%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">ATP excites interneurons and astrocytes to increase synaptic inhibition in neuronal networks.</a> J Neurosci. 24, 8606-8620 (2004).</li>
<li>Bowser, D. N., Khakh, B. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Two+forms+of+astrocyte+single+vesicle+exocytosis+imaged+with+total+internal+reflection+fluorescence+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Two forms of astrocyte single vesicle exocytosis imaged with total internal reflection fluorescence microscopy.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 104, 4212-4217 (2007).</li>
<li>Bowser, D. N., Khakh, B. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vesicular+ATP+is+the+predominant+cause+of+intercellular+calcium+waves+in+astrocytes%5BTitle%5D)+AND+%22J+Gen+Physiol%22%5BJournal%5D)">Vesicular ATP is the predominant cause of intercellular calcium waves in astrocytes.</a> J Gen Physiol. 129, 485-491 (2007).</li>
<li>Agulhon, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((What+is+the+role+of+astrocyte+calcium+in+neurophysiology%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">What is the role of astrocyte calcium in neurophysiology.</a> Neuron. 59, 932-946 (2008).</li>
<li>Barres, B. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+mystery+and+magic+of+glia%3A+a+perspective+on+their+roles+in+health+and+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">The mystery and magic of glia: a perspective on their roles in health and disease.</a> Neuron. 60, 430-440 (2008).</li>
<li>Lee, S. Y., Haydon, P. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Astrocytic+glutamate+targets+NMDA+receptors%5BTitle%5D)+AND+%22J+Physiol%22%5BJournal%5D)">Astrocytic glutamate targets NMDA receptors.</a> J Physiol. 581, 887-888 (2007).</li>
<li>Shigetomi, E., Bowser, D. N., Sofroniew, M. V., Khakh, B. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Two+forms+of+astrocyte+calcium+excitability+have+distinct+effects+on+NMDA+receptor-mediated+slow+inward+currents+in+pyramidal+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Two forms of astrocyte calcium excitability have distinct effects on NMDA receptor-mediated slow inward currents in pyramidal neurons.</a> J Neurosci. 28, 6659-6663 (2008).</li>
<li>Cahoy, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+transcriptome+database+for+astrocytes%2C+neurons%2C+and+oligodendrocytes%3A+a+new+resource+for+understanding+brain+development+and+function%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">A transcriptome database for astrocytes, neurons, and oligodendrocytes: a new resource for understanding brain development and function.</a> J Neurosci. 28, 264-278 (2008).</li>
</ol>

היא מבוססת היטב כי האסטרוציטים להציג הגבהים סידן תוך תאי. אלה מתרחשות באופן ספונטני, יכול להיות מופעלות על ידי הפעילות העצבית או על ידי יישום של אגוניסטים כדי להפעיל את הקולטנים על פני השטח astrocyte 11. נושא אחד חשוב במחלוקת היא האם astrocyte הגבהים סידן תוך תאי יכול לעורר את שחרורו של מולקולות איתות כי הפעלת הקולטנים על נוירונים 11, 12. זה שנוי במחלוקת כי יש כבר ראיות בעד ונגד השקפה זו, מודגשת כפי שהיידון 7, 13 ו - 11 מעבדות מקארתי בסקירות. על סמך האחרונות...

<table><tbody><tr><td>כיסויי זכוכית מיקרוסקופים עגולים, מס' 1, VWR&amp;#174;</td><td>כלי</td><td>VWR international</td><td>48380-068</td><td></td></tr><tr><td>Poly-D-lysine hydrobromide</td><td>ריאגנט</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P0899</td><td></td></tr><tr><td>Laminin מממברנת בסיס של סרקומה עכברית מסוג Engelbreth-Holm-Swarm</td><td>ריאגנט</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>L2020</td><td></td></tr><tr><td>תמיסת מלחים מאוזנת של Earle&amp;rsquo;s (EBSS) (1X), נוזל</td><td>ריאגנט</td><td>Invitrogen</td><td>14155-063</td><td></td></tr><tr><td>תווך בסיסי מינימלי (MEM) (1X), נוזל המכיל מלחים של Earle&amp;rsquo;s, אך ללא L-glutamine או phenol red</td><td>ריאגנט</td><td>Invitrogen</td><td>51200-038</td><td></td></tr><tr><td>תמיסת Penicillin-Streptomycin נוזלית</td><td>ריאגנט</td><td>Invitrogen</td><td>15140-122</td><td></td></tr><tr><td>תמיסת Sodium pyruvate</td><td>ריאגנט</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S8636</td><td></td></tr><tr><td>תמיסת HEPES 1 M</td><td>ריאגנט</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>H0887</td><td></td></tr><tr><td>תוסף N-2 (100X), נוזל</td><td>ריאגנט</td><td>Invitrogen</td><td>17502-048</td><td></td></tr><tr><td>סרום סוס, שעבר אינאקטיבציה בחום</td><td>ריאגנט</td><td>Invitrogen</td><td>26050-088</td><td></td></tr><tr><td>PAPAIN-022</td><td>ריאגנט</td><td>Worthington Biochemical</td><td>LK003178</td><td></td></tr><tr><td>תווך Neurobasal&amp;#8482; (1X) נוזלי ללא Phenol Red</td><td>ריאגנט</td><td>Invitrogen</td><td>12348-017</td><td></td></tr><tr><td>תוסף B-27 נטול סרום (50X), נוזל</td><td>ריאגנט</td><td>Invitrogen</td><td>17504-044</td><td></td></tr><tr><td>L-Glutamine-200 mM (100X), נוזל</td><td>ריאגנט</td><td>Invitrogen</td><td>25030-149</td><td></td></tr><tr><td>מסנני תאים</td><td>כלי</td><td>BD Biosciences</td><td>352350</td><td></td></tr><tr><td>פלטות BD Falcon רב-באירי בעלות תחתית שטוחה עם מכסים, סטריליות</td><td>כלי</td><td>BD Biosciences</td><td>353046</td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td>ריאגנט</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S7653</td><td></td></tr><tr><td>KCl</td><td>ריאגנט</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P3911</td><td></td></tr><tr><td>CaCl&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt; hexahydrate</td><td>ריאגנט</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>21108</td><td></td></tr><tr><td>MgCl&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt; hexahydrate</td><td>ריאגנט</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M2670</td><td></td></tr><tr><td>HEPES free acid</td><td>ריאגנט</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>H3375</td><td></td></tr><tr><td>D-(+)-glucose</td><td>ריאגנט</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G7528</td><td></td></tr><tr><td>Fluo-4, AM תמיסה 1 mM ב-DMSO</td><td>ריאגנט</td><td>Invitrogen</td><td>F-14217</td><td></td></tr><tr><td>Pluronic&amp;#174; F-127 תמיסה 20% ב-DMSO</td><td>ריאגנט</td><td>Invitrogen</td><td>P-3000MP</td><td></td></tr><tr><td>שמן טבילה TYPE DF</td><td>מיקרוסקופ</td><td>Cargill Labs</td><td>16242</td><td></td></tr><tr><td>תא פתוחה לכיסויי זכוכית עגולים של 25 mm, נפח 100 &amp;mu;l</td><td>כלי</td><td>Warner Instruments</td><td>64-0362 (RC-21BDW)</td><td></td></tr><tr><td>פלטפורמת P-2 לתאי Series 20, ללא מחמם</td><td>כלי</td><td>Warner Instruments</td><td>64-0278 (P-2)</td><td></td></tr><tr><td>FluoSpheres מיקרוספירות עם מודיפיקציית קרבוקסילאט, 0.1 &amp;mu;m, פלואורסצנטיות צהוב-ירוק (505/515) 2% מוצקים</td><td>ריאגנט</td><td>Invitrogen</td><td>F8803</td><td></td></tr></tbody></table>

מדידת הקרוב ממברנה פלזמה ו global dynamics סידן תאיים בתוך האסטרוציטים

Measuring Near Plasma Membrane and Global Intracellular Calcium Dynamics in Astrocytes

המוח מכיל ותאי גלייה. האסטרוציטים, סוג של תא גליה, כבר מזמן ידוע לספק תפקיד תומכת פסיבית נוירונים. עם זאת, הראיות עולה כי הגדלת האסטרוציטים יכולים גם להשתתף באופן פעיל תפקוד המוח דרך אינטראקציות פונקציונלי עם הנוירונים. עם זאת, היבטים בסיסיים רבים של הביולוגיה astrocyte נותרו שנויים במחלוקת, לא ברור ו / או נחקרו בניסוי. נושא אחד חשוב בדינמיקה של הארעיים סידן תאיים ב האסטרוציטים. זה רלוונטי כי סידן הוא הקים גם שליח שנייה חשוב כי זה הוצע כי הגבהים סידן astrocyte יכול לעורר את שחרורו של משדרי של האסטרוציטים. עם זאת, לא היתה כל תיאור מפורט או מספקת של סידן קרום ליד הפלזמה איתות האסטרוציטים. סך הקרינה השתקפות פנימית (TIRF) מיקרוסקופיה הוא כלי רב עוצמה כדי לנתח אירועים איתות רלוונטי מבחינה פיזיולוגית בתוך כ 100 ננומטר של קרום הפלזמה של תאים חיים. כאן, אנו משתמשים במיקרוסקופ TIRF ולתאר כיצד לפקח ליד הממברנה הפלסמטית והעולמית הדינמיקה סידן תוך תאי כמעט בו זמנית. חידוד נוסף יישום שיטתי של גישה זו יש פוטנציאל להודיע ​​על פרטים מדויקים של איתות סידן astrocyte. הבנה מפורטת של הדינמיקה סידן astrocyte עלול לספק בסיס להבנה אם, איך, מתי ולמה האסטרוציטים ונוירונים לעבור סידן תלויי אינטראקציות תפקודית.

אנו מתארים כיצד למדוד ליד קרום והעולמית הדינמיקה סידן תוך תאי בתרבית בתוך האסטרוציטים באמצעות השתקפות פנימית מוחלטת מיקרוסקופיה epifluorescence.

מדידת הקרוב ממברנה פלזמה ו Global Dynamics סידן תאיים בתוך האסטרוציטים

המוח מכיל תאי גלייה. ידוע כבר זמן רב כי אסטרוציטים, סוג של תאי גלייה, ממלאים תפקיד תומך פסיבי עבור נוירונים. עם זאת, ...

בחלק הראשון של סרטון זה, נדגים כיצד להכין תרבית משותפת (co-culture) של אסטרוציטים ונוירונים. לשם כך, מספר Hippo Campi מחולדות בשלב P1 נאספים למבחנה, מעובדים בעיכול באמצעות propane, מופרדים על ידי ation, ולאחר מכן נזרעים על לוחות כיסוי (coverslips). החלק השני יראה כיצד למדוד דינמיקה של סידן תוך-תאי באסטרוציטים, תהליך הכולל טעינה של צבע האינדיקציה לסידן flu oh four אל תוך האסטרוציטים, ומדידה של דינמיקת סידן גלובלית באמצעות מיקרוסקופיית epi ומדידה של דינמיקת סידן קרוב לממברנה באמצעות מיקרוסקופיית turf.על ידי שינוי התאורה באופן אוטומטי ומהיר, ניתן לצפות הן בסידן גלובלי והן בסידן קרוב לממברנה כמעט בו-זמנית. שלום, אני Aji omi, חוקר פוסט-דוקטורט ממעבדת Budget COS במחלקה לפיזיולוגיה באוניברסיטת קליפורניה לוס אנג'לס. היום נראה לכם הליך לדימיון סידן של אסטרוציטים.אנו משתמשים בפרוצדורה זו במעבדתנו ללימוד דינמיקת סידן גלובלית ודינמיקה של סידן בקרבת הממברנה באסטרוציט. באמצעות שינוי האלימינציה באופן אוטומטי ומהיר, אנו יכולים להבחין בין סידן גלובלי לבין סידן בקרבת הממברנה. כמעט בו-זמנית, אראה כיצד אנו מחילים TP כדי לגרום לעלייה בריכוז הסידן באסטרוציט.אסיים בסיכום ובדיון על המחסום עם השיטה למחקר של astrocyte. אז בואו נתחיל בלימוד. כדי להתחיל את תרבית ה-astrocyte, הסר את העור ואת הגולגולת מראשו של גור חולדה שעבר עריפת ראש.הניחו את המוח בתוך צלחת פטרי הממולאת בתמיסת דיסקציה קרה, בצעו דיסקציה לשני ההמיספירות והסירו את הקרומים (meninges). לאחר מכן, בצעו דיסקציה להיפוקמפוסים. קצצו את ההיפוקמפוסים לחתיכות של בערך 1x1 מילימטר.בצע עיכול בתמיסת Pappa בטמפרטורה של 37 degrees Celsius למשך 11 עד 13 דקות. הוצא את הרקמה המנותחת מהאינקובטור. לאחר שהחתיכות של הרקמה שקעו, הוצא אותן בזהירות מעיכול הפרופאן והוסף חמישה milliliters של מצע היפוקמפוס (hippocampal medium) כדי לשטוף את חתיכות ההיפוקמפוס הקצוצות.חזור על שלב זה ולבסוף, השהה מחדש במצע היפוקמפלי. בצע טריטורציה לתאים כחמש פעמים באמצעות שלוש פיפטות מלוטשות בלהבה הגדלות בהדרגה. לאחר מכן, העבר את התאים דרך מסנן תאים עם גודל נקבים של 70 micrometers והוסף ארבעה milliliters של מצע למסנן.ספרו את התאים ב-10 µL של התרחוף. התאימו את נפח המצע ההיפוקמפלי כך שיהיו 400,000 תאים למיליליטר. כעת הכינו זכוכית כיסוי לזריעת תרחוף התאים על ידי שאיבת הלמינאט מהכיסויים, שנחשפו לתמיסת למינאט למשך לילה.לפני ייבוש המכסים, טפטפו 200 µL של תגלי התאים לכל זכוכית כיסוי. השאירו אותם להיקשר למשך 60 דקות באינקובטור. לאחר האינקובציה, הוסיפו שני מיליליטרים של מצע היפוקמפלי לכל באר.למחרת, שאבו את מצע ההיפוקמפוס הישן כדי להסיר תאים מתים ופסולת, והוסיפו שני מיליליטרים של מצע היפוקמפוס רענן שחומם מראש. תחזוקה של תרביות משותפות (Co-cultures) של אסטרוציטים ונוירונים צריכה להתחיל ארבעה ימים לאחר הזריעה, על ידי הוספה של מיליליטר אחד של מצע נוירובזאלי רענן פעמיים בשבוע. הקפידו להדגיר את המצעים כ-30 דקות באינקובטור בתוך בקבוק מאוורר כדי להגיע לשיווי משקל של הטמפרטורה והפחמן הדו-חמצני.לפני חקר האסטרוציטים, מומלץ לבחון חרוזי פלואורסצנציה ננומטריים כדי לאפטם את זווית הלייזר עבור ה-turf. לשם כך, יש להניח 200 µL של מים על צלחת פטרי, להוסיף 1 µL של חרוזי פלואורסצנציה בגודל 100 nm ולערבב. יש לבחון את החרוזים באמצעות מיקרוסקופיית פלואורסצנציה אפי-פואלית (epi fluorescence microscopy). לאחר מכן, יש לבחון את החרוזים באמצעות מיקרוסקופיית turf.עבור דימות סידן, מקמו את התרבית בבאר בתוך פלטה של שש בארות הממולאת בשני מיליליטר של בופר הקלטה להיפוקמפלי המכיל 2.5 micromolar flu oh 4:00 AM ו-0.05%onic F1 27, תמיסה של 20% ב-DMSO, והדגרירו בטמפרטורת החדר למשך 10 עד 30 דקות; זכרו לכסות את הפלטה כדי למנוע הבהרה של ה-fluoro. ארבע, הסירו את תמיסת ה-flu oh four ושטפו את כיסויי הזכוכית שלוש פעמים עם בופר הקלטה להיפוקמפלי. הדגרירו את כיסויי הזכוכית השטופים בטמפרטורת החדר למשך 30 דקות.הנח את כיסוי הזריקה (cover slip) בתא, נקה את הצד השני של כיסוי הזריקה בעזרת נוזל לניקוי עדשות והוסף 200 µL של hippocampal buffer. הנח טיפה קטנה של שמן אימרסיה על העדשה והצב את התא על בסיס המיקרוסקופ. התבונן בתאים באמצעות תאורה בשידור (transmission light) כדי לבצע פוקוס ולבחון את מראה התאים.לאחר מכן, האირო את התאים באור של 488 ננומטר ממקור מונוכרומטי וקבעו אם האות הפלואורסצנטי של flu oh four הוא אחיד וניתן לזיהוי. באסטרוציטים, השתמשו בתאורה מסוג epi ו-turf למדידת סידן באסטרוציטים. כאן, חרוזי פלואורסצנציה נצפים באמצעות תאורת epi.בנוסף ליצירת פלואורסצנציית רקע, הן מראות גם תנועה בראונית משמעותית ככל שזווית ההארה משתנה. כאשר הלייזר מתקרב לזווית הקריטית, קרן הלייזר מוחזרת באופן מלא מממשק הזכוכית-מים. החזרה פנימית מלאה זו יוצרת שדה אלקטרומגנטי הנקרא השדה האוואנסנטי (evanescent field).לשכבה זו יש עומק לתוך התא בעל מדד שבירה נמוך של כ-100 nanometers. ניתן לעורר פלואורופורים בשכבה דקה זו על פני הדגימה. כאן מוצגים חרוזי פלואורסצנציה שנצפו באמצעות תאורה בתחתית (turf illumination) בהשוואה לתאורת epi.יחס האות לרעש של התאורה עולה באופן משמעותי כאשר מקטינים את הזווית. קרן הלייזר אינה מוחזרת מהפני השטח ועוברת דרך זכוכית הכיסוי כדי לפגוע ישירות בחרוזי הפלואורסצנציה. ניתן להבחין ברמות גבוהות של פלואורסצנציית רקע.כעת נגדיל את הזווית. שוב, רעש הרקע פוחת משמעותית וניתן לראות חרוזי פלואורסצנציה סמוך לפני השטח של כיסוי הזריקה. תמונות אלו מראות אסטרוציטים ונוירונים הטוענים flu oh four.אסטרוציטים הם תאים שטוחים בעלי שלוחות דקות, בעוד שלנוירונים יש גופי תא עגולים ודנדריטים עבים וארוכים. הן האסטרוציטים והן הנוירונים נראים בריאים ומלאים בفلו. או ארבעה כראוי.בחינת אסטרוציטים באמצעות מיקרוסקופיה אפיפלואורסצנטית או קונפוקלית מועילה כדי לדעת אם האסטרוציטים בריאים ואם אינדיקטורים לסידן הוטענו אל תוך האסטרוציטים כראוי. באזורי האסטרוציט הקרובים ביותר לזכוכית המכסה, אזורים הנקראים footprint, נצפה כי TP גורם לעלייה בסידן בקרבת ממברנת הפלזמה. ידוע כי אסטרוציטים מההיפוקמפוס מבטאים קולטנים אנרגים טהורים, ומתן TP לאמבט התרבית עלול לגרום לשחרור סידן גלובלי.הרגנו לראות כיצד להכין תרבית של אסטרוציטים מההיפוקמפוס וכיצד למדוד את רמת הסידן באסטרוציטים הן באופן גלובלי והן בקרבת ממברנה הפלזמה. בעת ביצוע פרוצדורה זו, חשוב לזכור להבטיח את זווית הלייזר האופטימלית; הדרך הטובה ביותר לוודא זאת במיקרוסקופ היא לצפות בהתנהגות של מהירויות זרימה של 100 millimeter. הקלטה סימולטנית של רמת סידן גלובלית ורמת סידן בקרבת הממברנה תספק לנו לא רק תיאור מפורט של אות הסידן, אלא גם תובנה חדשה לגבי מנגנון ויסות הסידן באסטרוציטים.כמו כן, עלה בדעתנו כי הגישה המתוארת כאן שימושית למדידת רמות סידן גלובליות ותוך-תאיות בקרבת הממברנה בתחומים אחרים של תאים מעוררים שטרם נחקרו. וזהו זה. תודה שצפיתם ובהצלחה בניסוי שלכם.

measuring-near-plasma-membrane-global-intracellular-calcium-dynamics

Research

JoVE Journal

Biology

ביולוגיה

ההכנה של פרוסות חריפות מוח מhippocampi המבודד, כמו גם את ההקלטות אלקטרו סימולטני של האסטרוציטים ונוירונים...

קלטות אלקטרו כפולות של תגובות Astroglial ועצביות עוררו-synaptically בפרוסות ביפוקמפוס חריפות

מקור: Bannai, H., et. al., Dissection of Local Ca2+ Signals in Cultures by Membrane-Targeted Ca2+ Indicators. J. Vis. Exp. (2019)הסרטון מדגים הדמיה פלואורסצנטית כדי לצפות בדינמיקת סידן ספונטנית ספציפית לתא באסטרוציטים על ידי ניטור רציף של חלבונים רגישים לסידן הממוקמים על קרום הפלזמה והרטיקולום האנדופלזמי.

הדמיית סידן ספונטנית עבור דינמיקה ספציפית לתא באסטרוציטים

כאן אנו מתארים עיבוד של פרוטוקולים המשמשים כדי לגרום פלסטיות homeostatic בנוירונים לחקר הפלסטיות של קולטני G-חלבון בשילוב astrocytic. לאחרונה משמש כדי לבחון שינויים בקבוצת astrocytic אני mGluRs בעכברים לנוער, ניתן ליישם השיטה למדידת קנה מידה של GPCRs astrocytic השונות, ברקמות של עכברים בוגרים באתרו וin vivo, ולקבל הערכה טובה יותר של הרגישות של קולטני astrocytic לשינויים בפעילות עצבית.

גרימת פלסטיות של astrocytic רצפטורים על ידי מניפולציה של מחירים ירי עצביים

המאפיינים והתפקודים של אותות Ca2+ תוך-תאיים של אסטרוציטים בסטריאטום עדיין לא נחקרו במלואם. אנו מתארים שיטות לביטוי מדדי סידן מקודדים גנטית באסטרוציטים סטריאטליים באמצעות נגיפים הקשורים לאדנוטיפ 2/5 (AAV2/5), כמו גם נהלים להדמיה מהימנה של אותות Ca2+ בתוך אסטרוציטים סטריאטליים באתרם.

ההדמיה תאית Ca 2 + אותות בstriatal האסטרוציטים מעכברים בוגרים באמצעות אינדיקטורים סידן מבחינה גנטית מקודדים

פרוטוקול AWESAM המתוארים כאן הוא אופטימלי culturing האסטרוציטים מאתר בבידוד מתאי המוח אחרים בצורה מהירה, פשוטה וזולה. AWESAM האסטרוציטים התערוכה ספונטנית Ca2 + איתות, מורפולוגיה, ג'ין ביטוי ופרופילי דומה האסטרוציטים ויוו.

Culturing In Vivo-כמו האסטרוציטים מאתר באמצעות פרוטוקול AWESAM מהירה, פשוטה וזולה

המודגמות כאן הם פרוטוקולים לבידוד (1) טרי שלם מוחי אנדותל "צינורות" ומדידות (2) בו זמנית הסידן אנדותל של קרומית אפשרית במהלך אנדותל, נגזר hyperpolarization. עוד, שיטות אלה מאפשרים כוונון תרופתי של תאי אנדותל סידן, איתות חשמלי כמשתנים ניסיוני בודדים או אינטראקטיביות.

מדידות סימולטני של סידן תאיים, פוטנציאל ממברנה אנדותל מוחי העכבר טרי מבודדת ללא פגע

כאן אנו מציגים פרוטוקול עבור Ca2 + הדמיה של נוירונים ותאי גלייה, המאפשרת את הקרע של Ca2 + אותות ברזולוציה subcellular. תהליך זה הוא החלים על כל סוגי תאים לאפשר הביטוי של Ca מקודדים גנטית2 + מחוונים.

דיסקציה של Ca מקומי2 + אותות בתאים בתרבית על ידי קרום, ממוקדות Ca2 + אינדיקטורים

כאן אנו מתארים בשיטת הדמיה לחיות מחוץ לתמונה כדי להמחיש הובלה תאיים של אורגלים וסחר של חלבונים קרום פלזמה ב astrocytes מורטין. פרוטוקול זה מציג גם מתודולוגיה לניתוח תמונה כדי לקבוע מסלולים להובלת מטענים וקינטיקה.

המחשה וניתוח של תחבורה תאיים של אורגלים וcargos אחרים באסטרוציטים

פרוקטוקול זה נועד לספק שיטה במבחנה ובהדמיה של ויוו מיטוכונדריאלי Ca2+ באסטרוציטים ונוירונים.

הדמיה מיטוכונדריאלית Ca2 + ספיגה אסטרוציטים ונוירונים באמצעות אינדיקטורים Ca2+ מקודדים גנטית (GECIs)

השיטות הנוכחיות מתארות גישה לא רציומטרית להדמיית סידן ברזולוציה גבוהה, תת-מדורית in vivo ב- Caenorhabditis elegans באמצעות מדדי סידן מקודדים גנטית זמינים.

הדמיה תת-תאית של טיפול בסידן עצבי ב-Vivo

פרוטוקול זה מספק תיאור מקיף של שיטה לרישום סימולטני של אותות סידן מנוירונים ואסטרוציטים באזורים מוחיים רבים הקשורים לזיכרון ומדגים את יישומו במהלך פרדיגמת התנהגות למידה וזיכרון.

שיטת פוטומטריית סיבים דו-צבעונית לתיעוד פעילות אסטרוציטים-נוירונים באזורים שונים במוח במהלך התנהגויות למידה וזיכרון

למד מדידת דינמיקת סידן תאי באסטרוציטים באמצעות מיקרוסקופיית שיקוף פנימי כולל ואפי-פלואורסצנציה. שיטה זו מאפשרת תצפית בו-זמנית בסידן גלובלי ובסמוך לממברנה הפלזמה.

מדידת הקרוב ממברנה פלזמה ו Global Dynamics סידן תאיים בתוך האסטרוציטים

גלה סרטונים נוספים