July 31st, 2011
תקנים איזוטופ יציב ו ללכוד על ידי Anti-פפטיד נוגדנים (SISCAPA) זוגות להעשרת הזיקה של פפטידים עם איזוטופ יציב דילול ספקטרומטריית מסה (MRM-MS) כדי לספק מדידה כמותית של פפטידים כתחליפי עבור חלבונים, בהתאמה. כאן אנו מתארים את פרוטוקול באמצעות חלקיקים מגנטיים בפורמט אוטומטיות חלקית.
המטרה הכוללת של ההליך הבא היא לבודד ולכמת פפטידים בתערובת מורכבת הפועלים כתחליפים לחלבון שלהם. ראשית, חלבונים גדולים בתערובת מתעכלים לפפטידים מרכיבים באמצעות אנזים כמו טריפסין. לאחר מכן אנליטי הפפטידים הממוקדים ותקן פנימי של איזוטופ יציב עם תווית דוקרני מועשרים באמצעות נוגדנים לפפטיד אנטיפ, המשותקים על חלקיקים מגנטיים מקודדים בחלבון G לאחר בידוד.
הפפטידים הממוקדים נרמזים מהחלקיקים המגנטיים ומנותחים על ידי ספקטרומטריית מסה לכימות ביחס לתקן הפנימי. היתרונות העיקריים של טכניקה זו על פני שיטות קיימות כמו בדיקות אימונולוגיות מסורתיות הוא שהיא מהירה וחסכונית יותר בבניית מספר רב של בדיקות. יש לו אחוזי הצלחה גבוהים והוא מוכפל בקלות ומדגים שההליך יונח.
טכנאי במעבדה החזיק Eloqua פלזמה של 10 מיקרוליטר על קרח רטוב. העבירו את הדגימה לצלחת באר בעומק של 1000 מיקרוליטר וכסו בסרט משל כדי לנטרל את החלבונים ב-20 מיקרוליטר של אוריאה טרייה תשע טוחנת 30 מילי-מולרית DTT לכל דגימה ודגירה למשך 30 דקות ב-37 מעלות צלזיוס, הוסיפו שלושה מיקרוליטרים של 500 מילי-מולרי טרי I oto אצטמיד לכל דגימה ודגרו במשך 30 דקות בחושך בטמפרטורת החדר. כעת יש לדלל את האוריאה ל-0.6 מולרית עם 100 מילי-מולרי טריס pH שמונה, ולהוסיף 10 מיקרוליטר של מיקרוגרם אחד למיקרוליטר נסיעות ותמיסת מלאי ליחס של 1 עד 50 אנזים למצע.
לאחר הדגירה של התגובה ב-37 מעלות צלזיוס למשך הלילה בשלושה מיקרוליטרים של חומצה פורמית מסודרת לריכוז סופי של 1% המשך להוסיף את תקן האיזוטופ היציב או תקנים מרובים. אם מבצעים בדיקת מולטיפלקס, שטפו היטב את צלחת המחסנית של אואזיס עם 500 מיקרוליטר של 0.1% חומצה פורמית ב-80% ניטריל ACE, וזרקו את הזרימה. לאחר מכן יש לאזן את לוחית המחסנית על ידי הוספת 500 מיקרוליטר של 0.1% חומצה פורמית במים ולהשליך את הזרימה.
טען את דגימות העיכול על לוחית המחסנית והתאם את הוואקום כך שהזרימה תהיה איטית מאוד. שטפו שלוש פעמים עם 500 מיקרוליטר של 0.1% חומצה פורמית במים והשליכו את הזרימה דרך הפפטידים פעמיים עם 500 מיקרוליטר של 0.1% חומצה פורמית בניסוי של 80% אצטו, ואז ליופיליזציה או האיץ את הפליטה ליובש והרכיבו מחדש את הפפטידים המיובשים ב-50 מיקרוליטר PBS בתוספת 0.03%Chaps מעבירים את הדגימות לצלחת באר סטנדרטית של קינגפישר 96 מוסיפים מיקרוגרם אחד של נוגדן ו-1.5 מיקרוליטר חלבון G חרוזים מגנטיים מקודדים לכל מטרה. מערבולת את החרוזים לפני ההוספה.
כדי להבטיח שהחרוזים תלויים היטב. מכסים את הצלחת בנייר כסף ודוגרים למשך הלילה עם צנטריפוגה נופלת עדינה. הצלחת ב 400 סל"ד למשך 10 שניות כדי להסיר כל נוזל משטח נייר הכסף.
הסר את מכסה נייר הכסף. מניפולציה לדוגמה מתרחשת על פלטפורמת שלדג אוטומטית בפלטפורמת Kingfisher. שטפו את החרוזים פעמיים עם 200 מיקרוליטר PBS בתוספת 0.03% צ'אפס ופעם אחת עם 200 מיקרוליטר של דילול אחד עד 10 של PBS בתוספת 0.03% צ'אפים כעת חומקים מהפפטידים עם 25 מיקרוליטר של 5% חומצה אצטית בתוספת 0.03% צ'אפס.
הנח את לוחית הפליטה על מגנט והעביר את הפליטה לצלחת 96 באר תוך הקפדה לא להעביר את שאריות החרוזים. כסו את הצלחת עם שטיח התקרה, העבירו את הצלחת הזו המכילה את האלואט לספקטרומטר המסה המשולש והמרובע, לניתוח. שיטת MRM בנויה על ידי השגת ספקטרום מסה טנדם של הפפטיד המעניין מאשר בחירה ואופטימיזציה של יוני שברי המעבר הטובים ביותר.
בדרך כלל, תצורה לניתוח MRM משתמשת במלכודת C 18 ובעמודות אנליטיות עם שני שלבים ניידים. טען 10 מיקרוליטר מהדגימה והוציא על ידי שיפוע ליניארי. שלב אזורי שיא עבור הפפטידים הקלים והכבדים, וחשב את יחס שטח השיא של פפטיד ללא תווית לפפטיד מסומן בכל דגימה.
הפפטידים הקלים והכבדים נפלטים בו זמנית וניתן לנטר מעברים מרובים עבור כל פפטיד כדי לאשר את הזהות, שטח השיא של הפפטיד האנדוגני נמדד ביחס לשטח התקן הפנימי כדי לספק מדד כמותי של פפטיד המטרה. לאחר צפייה בסרטון זה, אתה אמור להבין היטב כיצד ליישם טכניקה זו במעבדה שלך. ניתן להשתמש בו כדי לכמת כל חלבון מעניין, מה שהופך אותו למתאים למגוון רחב של יישומים במחקר ביולוגי.
מאמר זה מתאר את טכניקת התקנים של איזוטופים יציבים ו-Capture by Anti-Peptide Antibodies (SISCAPA), המשלבת העשרה באפיניות של פפטידים עם ספקטרומטריית מסה בדילול איזוטופים יציבים למדידת פפטידים כמותית. הפרוטוקול משתמש בחלקיקים מגנטיים בפורמט אוטומטי חלקית כדי לשפר את היעילות.
Quantitative protein measurement remains a critical bottleneck in target validation and biomarker discovery, where traditional immunoassays face cost, lead time, and interference limitations. SISCAPA offers a scalable, multiplexable alternative that enhances predictive confidence in early discovery by providing stoichiometric, antibody-independent quantification of proteotypic peptides. This supports risk-adjusted portfolio decisions and translational continuity from hypothesis to preclinical models.
SISCAPA integrates into the discovery continuum from target validation through lead identification, enabling quantitative measurement of proteins as a foundation for assay development and screening campaigns.