טכניקת In Vitro להבדיל בין GM-CSF המייצרים תאי T מסייעים לבין תאי T נאיביים

0 צפיות7:01 דק' • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

גורם מגרה מושבת גרנולוציטים-מקרופאגים, GM-CSF מופרש על ידי תאי T helper המייצרים GM-CSF או תאי THGM. תאים אלה מראים ביטוי נמוך של ציטוקינים ספציפיים לתאי T מסייעים אחרים.

כדי להתחיל בהתמיינות במבחנה של תאי THGM, קח תרחיף תאי T מסייע - מבודד מטחול העכבר - המכיל תאים בוגרים המופעלים על ידי אנטיגן ותאים נאיביים לא ממויינים.

הוסף נוגדנים עם תווית פלואורסצנטית המכוונים לסמני פני שטח אופייניים של התאים הנאיביים והבוגרים. בצע מיון תאים המופעל על ידי פלואורסצנטיות כדי לבודד את תאי ה-T הנאיביים.

צלחת את התאים בבאר מצופה בנוגדנים הנקשרים לקומפלקס הקולטן של תאי T. הוסף נוגדן שנקשר לקולטן הגירוי המשותף. הקישור הסינרגטי מפעיל את התאים.

הוסף אינטרלוקין 7 - ציטוקין - הגורם להתמיינות לתאיTHGM וייצור GM-CSF. הוסף פורבול מיריסטאט אצטט, PMA - תרכובת פרו דלקתית, יונומיצין - יונופור סידן ומעכב הובלת חלבון.

PMA נכנס לתא ומפעיל חלבון קינאז. היונומיצין החדיר לממברנה מעביר את יוני הסידן בתוך התא - ומעלה את ריכוז הסידן התוך-תאי.

הפעלת החלבון קינאז ורמת סידן גבוהה יוזמים אותות המגרים מחדש אתתאי ה-T.H.GM - וכתוצאה מכך ייצור GM-CSF גבוה יותר. מעכב הובלת החלבון חוסם את הפרשת GM-CSF, ומסייע לזיהוי תוך-תאי.

בצע צביעה אימונופלואורסצנטית, זיהוי ציטוקינים תוך-תאיים וניתוח התאים באמצעות ציטומטריית זרימה. רוב התאים המראים רמות גבוהות של GM-CSF אך ביטוי נמוך של ציטוקינים אחרים מצביעים על התמיינות מוצלחת לתאיT.HGM.

כדי לבודד את תאי ה-T החיוביים ל-CD4, השעו מחדש את כדור תאי הדם הלבנים ב-5 מיליליטר של מאגר בידוד תאים, וסנן את תרחיף התאים דרך מסננת של 30 מיקרומטר לתוך צינור חדש של 15 מיליליטר כדי להסיר כל פסולת. לאחר הספירה, השעו מחדש את התאים ב-1 x 107 תאים לכל 90 מיקרוליטר של ריכוז חיץ, והוסיפו 10 מיקרוליטר של חרוזים מגנטיים מצומדים נגד CD4 לכל 1 x 107 תאים למשך 15 דקות דגירה ב-4 מעלות צלזיוס, עם ערבוב כל 5 דקות.

בזמן שהתאים דוגרים, הנח עמוד הפרדה על מעמד מגנטי, והרטיב מראש את העמוד עם 2 מיליליטר חיץ. לאחר מכן, שטפו את התאים עם 5 מיליליטר חיץ והשעו מחדש את הגלולה במיליליטר אחד של מאגר. טען את הדגימה על העמודה, ואסוף את השבר השלילי CD4 בצינור חרוטי של 15 מיליליטר.

כאשר כל התאים עברו דרך העמוד, שטפו את המאגר שלוש פעמים עם 1 מיליליטר חיץ לכל שטיפה לפני שהוא מתייבש. לאחר הכביסה האחרונה, העבירו את העמוד לצינור חרוטי חדש של 15 מיליליטר, וצללו את העמודה עם 2 מיליליטר של מאגר בידוד תאים כדי להוציא את שבר החרוז החיובי. לאחר מכן, אסוף את התאים החיוביים ל-CD4 על ידי צנטריפוגה.

למיון תאים המופעלים על ידי פלואורסצנטיות של תאי ה-T הנאיביים, השעו מחדש את כדור התא החיובי CD4 הממוין בחרוזים ב-500 מיקרוליטר של מאגר, וערבבו את התאים עם קוקטייל נוגדנים מצומד פלואורסצנטי מתאים. לאחר 20 עד 30 דקות על קרח, מוגן מפני אור, שטפו את התאים ב-5 מיליליטר של חיץ טרי, והשעו מחדש את הגלולה ב-500 מיקרוליטר של חיץ טרי.

סנן את התאים דרך רשת ניילון, והעביר את התאים לצינור FACS מקודד מראש עם 500 מיקרוליטר של מאגר. שער לבחירת אוכלוסיות התאים הגבוהות של ליגנד CD62 חיובי ל-CD4, CD25 שלילי ו-CD44 נמוך. לאחר מכן, מיין את חלקי תאי ה-T הנאיביים חיוביים ל-CD4, CD25 שליליים, CD-44 נמוכים, CD-62 ליגנד גבוה לצינור צנטריפוגה חדש של 15 מיליליטר וגלול את תאי ה-T הנאיביים החיוביים ל-CD4 על ידי צנטריפוגה.

עבור גורם מגרה מושבת גרנולוציטים-מקרופאגים, או GM-CSF, התמיינות תאי T מסייעים, השעו מחדש את תאי ה-T הממוינים בריכוז של 1 x 106 תאים למיליליטר במדיום RPMI שלם המכיל 50 מיקרו-מולרי בטא-מרקפטואתנול, ושאבו את נוגדן האפסילון נגד CD3 מכל באר של צלחת 48 בארות מקודדת מראש.

לאחר מכן, זרעו 2.5 x 105 תאים לכל באר יחד עם IL-7, anti-CD28 ו-anti-IFN gamma, ודגרו על התאים ב-37 מעלות צלזיוס ו-5% CO2 למשך שלושה ימים. ביום השלישי של התרבית, השתמש במיקרוסקופ כדי לבדוק את התמיינות התאים, וקצור את התאים לצנטריפוגה.

השעו מחדש את הגלולה במדיום RPMI שלם טרי למשך שתי כביסות, והשעו מחדש את התאים במיליליטר אחד של מדיום שלם טרי לאחר הכביסה השנייה לספירה. פצלו את התאים לשלושה נפחים שווים, ועוררו מחדש את המנה הראשונה של תאים עם PMA ויונומיצין בנוכחות מעכב הובלת חלבון למשך 4 עד 6 שעות.

בתום הגירוי, קצרו את התאים לצביעה בנוגדנים נגד CD4. לאחר 30 דקות, תקן את התאים עם 200 מיקרוליטר של מאגר קיבוע למשך 20 עד 60 דקות, ולאחר מכן שתי שטיפות במיליליטר אחד של מאגר חדירות לכל שטיפה. לאחר מכן, צבע לביטוי ציטוקינים תוך תאיים למשך 30 דקות בחושך.

08:39

מודל העכבר In Vivo הפעלת תא T CD4 תמים מידה, התפשטות של בידול Th1 הנגרם על ידי תאים דנדריטים הנגזרות מח עצם

סרטונים קשורים

0 צפיות

07:39

בידוד של CD4+ תאי-T וניתוח של מחזורי Helper T-הזקיקים (cTfh) קבוצות משנה תא מ באמצעות דם היקפיים של Cytometry זרימה 6-צבע

סרטונים קשורים

0 צפיות

12:02

בידוד של שלשלות חוץ-תאיות מועשרות אקסוזום הנושאות גרנולוציט-מקרופאג' גורם מעורר מושבה מתאי גזע עובריים

סרטונים קשורים

0 צפיות

08:52

דור Multivirus ספציפיים תאים T כדי למנוע / לטפל זיהומים נגיפיים לאחר השתלת allogeneic תא גזע hematopoietic

סרטונים קשורים

0 צפיות

14:23

דור של מושרה תאים T רגולטוריים של האדם תאים ראשוניים טי נאיביות וזיכרון

סרטונים קשורים

0 צפיות

12:47

התמיינות מכוונת של המושרה בתאי גזע pluripotent כלפי לימפוציטים-T

סרטונים קשורים

0 צפיות

12:59

בידוד ובידול של Th17 הנאיביים T מסוג CD4 לימפוציטים

סרטונים קשורים

0 צפיות

07:12

העכבר נאיבי CD4 + בידוד תא T במבחנה בידול לתוך תת תא T

סרטונים קשורים

0 צפיות

10:33

ובידוד Ex Vivo תרבות של Vδ1 + CD4 + תאי T γδ, Extrathymic αβT-תא אב

סרטונים קשורים

0 צפיות

11:50

Retroviral תמרה של Helper T תאים כגישה גנטית לחקר מנגנוני בקרת הבידול והתפקוד שלהם

סרטונים קשורים

0 צפיות

עודכן לאחרונה: 15 אוגוסט 2026