Tracciamento di segnalazione all'interno di aggregati di cellule ipossiche Encapsulated

Summary

Un metodo per foto-incapsulamento delle celle in un idrogel PEG reticolato è descritto. Segnalazione ipossiche all'interno incapsulato insulinoma murino (MIN6) aggregati è monitorato attraverso un sistema marcatore fluorescente. Questo sistema permette la visione seriale di cellule all'interno di un idrogel impalcatura e la correlazione di segnalazione ipossia con i cambiamenti nel fenotipo delle cellule.

Abstract

Nel diabete mellito di tipo 1, la distruzione autoimmune delle cellule β pancreatiche provoca la perdita di produzione di insulina e un'iperglicemia potenzialmente letale. Come opzione terapeutica alternativa all'iniezione di insulina esogena, è stato esplorato il trapianto di tessuto pancreatico funzionale^1,2. Questo approccio offre la promessa di un ripristino più naturale e a lungo termine della normoglicemia. La protezione del tessuto del donatore dal sistema immunitario dell'ospite è necessaria per prevenire il rigetto e l'incapsulamento è un metodo utilizzato per raggiungere questo obiettivo.

I materiali di derivazione biologica, come l'alginato³ e l'agarosio⁴, sono stati la scelta tradizionale per la costruzione delle capsule, ma possono indurre infiammazione o crescita eccessiva fibrotica⁵ che può ostacolare il trasporto di nutrienti e ossigeno. In alternativa, gli idrogel sintetici a base di poli(glicole etilenico) (PEG) non sono degradanti, facilmente funzionalizzati, sono disponibili ad alta purezza, hanno dimensioni dei pori controllabili e sono estremamente ^{biocompatibili,6,7,8}. Come ulteriore vantaggio, gli idrogel di PEG possono formarsi rapidamente in una semplice reazione di fotoreticolazione che non richiede l'applicazione di temperature non fisiologiche^6,7. Tale procedura è descritta qui. Nella reazione di reticolazione, la degradazione UV del fotoiniziatore, 1-[4-(2-idrossietossi)-fenil]-2-idrossi-2-metil-1-propano-1-one (Irgacure 2959), produce radicali liberi che attaccano i doppi legami vinilico-carbonio del PEG dimetacrilato (PEGDM) inducendo la reticolazione alle estremità della catena. La reticolazione può essere ottenuta in 10 minuti. È stato dimostrato che gli idrogel PEG costruiti in questo modo supportano favorevolmente le cellule^7,9 e la bassa concentrazione del fotoiniziatore e la breve esposizione all'irradiazione UV non sono dannose per la vitalità e la funzione del tessuto incapsulato¹⁰. Mentre metacriliamo il nostro PEG con il metodo descritto di seguito, il PEGDM può anche essere acquistato direttamente da fornitori come Sigma.

Una conseguenza intrinseca dell'incapsulamento è l'isolamento delle cellule da una rete vascolare. L'apporto di sostanze nutritive, in particolare di ossigeno, è quindi ridotto e limitato dalla diffusione. Questa ridotta disponibilità di ossigeno può avere un impatto particolare sulle cellule β la cui funzione secretoria dell'insulina è fortemente dipendente dall'ossigeno^11-13. La composizione e la geometria della capsula influenzeranno anche i tassi di diffusione e le lunghezze dell'ossigeno. Pertanto, descriviamo anche una tecnica per identificare le cellule ipossiche all'interno delle nostre capsule PEG. L'infezione delle cellule con un adenovirus ricombinante consente la produzione di un segnale fluorescente quando vengono attivate le vie intracellulari del fattore inducibile dall'ipossia (HIF)¹⁴. Poiché gli HIF sono i regolatori primari della risposta trascrizionale all'ipossia, rappresentano un marcatore bersaglio ideale per la rilevazione del segnale ipossico¹⁵. Questo approccio consente un rilevamento facile e rapido delle cellule ipossiche. In breve, l'adenovirus ha la sequenza per una proteina fluorescente rossa (Ds Red DR di Clontech) sotto il controllo di un trimero di elementi sensibili all'ipossia (HRE). La stabilizzazione di HIF-1 in condizioni di basso ossigeno guiderà la trascrizione della proteina fluorescente (Figura 1). Ulteriori dettagli sulla costruzione di questo virus sono stati pubblicati in precedenza¹⁵. Il virus viene conservato in glicerolo al 10% a -80° C come aliquote da 150 μL in provette da centrifuga da 1,5 mL a una concentrazione di 3,4 x 10¹⁰ pfu/mL.

Precedenti studi nel nostro laboratorio hanno dimostrato che le cellule MIN6 incapsulate come aggregati mantengono la loro vitalità per 4 settimane di coltura al 20% di ossigeno. Gli aggregati MIN6 coltivati al 2 o all'1% di ossigeno hanno mostrato sia segni di cellule necrotiche (ancora circa l'85-90% vitali) mediante colorazione con bromuro di etidio, sia cambiamenti morfologici relativi alle cellule in ossigeno al 20%. La forma sferica liscia degli aggregati visualizzati al 20% è andata persa e gli aggregati sono apparsi più come gruppi disorganizzati di cellule. Sebbene il basso stress da ossigeno non causi un calo pronunciato della vitalità, sta chiaramente influenzando l'aggregazione e la funzione di MIN6, misurata dalla secrezione di insulina stimolata dal glucosio¹⁵. L'analisi Western blot di cellule incapsulate in ossigeno al 20% e all'1% ha anche mostrato un aumento significativo di HIF-1α per le cellule coltivate in condizioni di basso ossigeno, che è correlato con l'espressione della proteina DsRed DR.

Protocol

1. PEGDM sintesi e PEGDM fotoattivi preparazione macromer soluzione

1. Pesare 2 g di PEG (lineari, 10.000 Da) in un flacone di vetro 40ml con tappo in plastica rigida.
2. Aggiungere circa 308μL di anidride metacrilico e vagamente tappo del flaconcino.
3. Microonde la fiala in alto per 2 minuti in un forno a microonde standard ad uso privato. Indossare guanti resistenti al calore, completamente vortice il flacone, poi in alto a microonde per altri 5 minuti.
4. Brevemente il flacone permettono di raffreddare abbastanza da essere maneggiato con i guanti. Stappare e aggiungere lentamente il cloruro di metilene, mentre agitando il flaconcino. Aggiungi sufficiente in modo che la soluzione appare chiara ed omogenea, vortex il campione, se necessario. Il volume totale del cloruro di metilene utilizzato deve essere 1,5 - 2 ml.
5. PEGDM precipitato in 200 ml di freddo, agitato dietiletere aggiungendo goccia a goccia la soluzione.
6. Raccogliere il PEGDM filtrazione sotto vuoto e lasciarlo asciugare.
7. Sciogliere il PEGDM in quantità adeguatadi acqua deionizzata (tipicamente 100 -150 ml).
8. Dializzare la soluzione contro l'acqua deionizzata per 5 giorni in tubi di dialisi, con un peso molecolare di cut-off di 1.000 Da. Sostituire l'acqua una volta al giorno.
9. Aliquota della soluzione in appositi contenitori e congelare a -80 ° C durante la notte. Liofilizzare la soluzione per 4 giorni fino ad ottenere una polvere bianca PEGDM purificata. Conservare la polvere a 4 ° C, quando non in uso.
10. Per preparare una soluzione PEGDM fotoattivi, prima preparare una percentuale 0,5 Peso soluzione fotoiniziatore magazzino sciogliendo Irgacure 2959 in acqua deionizzata. Vortex la soluzione e conservarla nel buio.
11. Preparare un 10% in peso PEGDM e 0,025% in peso Irgacure 2959 soluzione in soluzione salina bilanciata di Hank (HBSS). Vortex a fondo per garantire lo scioglimento del PEGDM. Noi di solito preparare 1 ml di questa soluzione in un momento.
12. Sterilizzare la soluzione filtrandola attraverso un filtro 0,2 micron siringa in una provetta per microcentrifuga da 1,8 ml. Avvolgere il tubo in alluminioe conservare a 4 ° C

2. Cultura, l'infezione e l'aggregazione di cellule MIN6

1. MIN6 cellule sono coltivate in RPMI 1640 medium supplementato con 10% FBS, glucosio 7mm, 100 unità / mL penicillina / streptomicina, e 0,5 mg / ml amphotercin B in un ambiente umidificato a 37 ° C e 5% di CO _2.
2. Per rilasciare le cellule dalla superficie coltura trattata fiasco, aspirare il terreno, lavare le cellule con 37 ° C di calcio / magnesio senza HBSS, aspirare il HBSS, poi aggiungere 2 ml di 37 ° C tripsina-EDTA soluzione e permettono alle cellule di incubare per 3 minuti.
3. Saldamente vaso sul lato del pallone per battere il celle libere, quindi aggiungere 8 mL di 37 ° C di media e vigorosamente pipetta la sospensione cellulare su e giù facendo attenzione a non introdurre bolle.
4. Pipettare le cellule in una provetta sterile 15 ml centrifuga ed effettuare un conteggio delle cellule utilizzando un emocitometro o una cella di altri procedura di conteggio.
5. Nella preparazione di infettare le cellule con il produttorevirus, in primo luogo determinare il numero totale delle cellule di essere infetti e calcolare il volume di sospensione di virus necessari per raggiungere il desiderato molteplicità di infezione (MOI) (da 50 a 100 particelle infettive per cella).
6. Diluire il virus in HBSS con attenzione pipeting la giusta quantità di sospensione di virus in un pre-aliquotati volume di HBSS in una provetta da microcentrifuga da 1,8 ml. 50 ml di HBSS per pozzetto di cellule aggregazione è appropriato.
7. Disperdere le cellule pipeting su e giù nel loro tubo, poi pipettare il volume necessario per raggiungere 400.000 cellule per pozzetto nei pozzetti di un 6-pozzetti sospensione cultura.
8. Aggiungere il volume appropriato di virus diluito in ciascun pozzetto per ottenere il desiderato MOI.
9. Aggiungi medio in ciascun pozzetto per portare il volume totale fino a 1,7 ml.
10. Posizionare la piastra su un agitatore orbitale all'interno dell'incubatore. Impostare l'agitatore in un ambiente basso in modo che il mezzo lava delicatamente intorno ai pozzi (~ 100 rpm). Permettono alle cellule di aggregazionete per 24-36 ore. Aggregati con un diametro approssimativo di 75-175 micron dovrebbe essere formato.

3. Incapsulamento delle celle a PEGDM

1. Le cellule possono essere incapsulati come una dispersione (passo 2.4) o l'aggregazione seguente (punto 2.10). Dal momento che il precursore soluzione idrogel PEGDM è un liquido, le cellule possono tendere a risolvere prima di reticolazione e la formazione di idrogel. Se il regolamento dovrebbe avvenire rapidamente, come nel caso di grandi aggregati, può essere utile per produrre l'idrogel in due fasi in modo che le cellule risolvere su un piano centrale del gel. Un one-step procedura di sintesi idrogel appropriata per le cellule disperse è mostrato (Figura 2) e la procedura in due fasi è mostrato così (Figura 3) e di dettaglio di seguito (3,2-3,9).
2. Creare un vaso in cui l'idrogel sarà formata da taglio la punta affusolata off di una siringa da 1 ml di plastica e l'immissione aprirlo finire in un rack.
3. Pipettare 20 ml di PEGDM fotoattivi cosìluzione in l'estremità aperta della siringa sul pistone assicurandosi il volume copre l'intera superficie dello stantuffo. Regolare lo stantuffo in piccoli incrementi per ottenere una superficie piana fluido.
4. Posizionare la pipetta nel rack e la posizione del rack sotto una lampada UV (365nm, ~ 7 mW / cm ²⁾ per circa 8 minuti per consentire la reticolazione idrogel. Durante questo tempo, la preparazione delle cellule può essere iniziata
5. Pipettare un volume contenente il numero desiderato di cellule / aggregati in un tubo di 1,8 ml microcentrifuga, berretto, e centrifugare la provetta a 130 g per 5 minuti.
6. Utilizzando un micropipettor, rimuovere con attenzione i media senza disturbare il pellet di cellule sulla punta del tubo. Come capo dei media si avvicina il pellet, può essere utile utilizzare una più fine, 10 punta della pipetta microlitri.
7. Delicatamente risospendere il pellet cellulare in 20 ml di soluzione fotoattivi PEGDM (usare una bocca larga punta della pipetta se si lavora con aggregati) e aggiungere la sospensione cellulare alla siringa sulla parte superiore del secoloe precedentemente reticolato porzione idrogel.
8. Esporre la siringa per ulteriori 8 minuti di luce UV per completare la costruzione del idrogel. Al termine, le cellule devono essere completamente incapsulato all'interno del idrogel cilindrico (Figura 3).
9. Espellere l'idrogel dalla siringa e in 1 ml di HBSS nel pozzo di un 24-pozzetti per lavare brevemente il gel. Trasferire il gel per 1 ml di media nel pozzo di un 24-pozzetti e cultura sotto le condizioni desiderate.

4. Monitoraggio ipossia

1. In qualsiasi momento durante l'immagine della cultura, le cellule usando la microscopia a fluorescenza per monitorare l'avvio di segnalazione ipossiche. A seconda di cosa viene esposta si può immagine nel multi-pozzetti o trasferire il gel di un vetrino da microscopio prima del posizionamento sul palco microscopio. Eccitazione picco di Ds Rosso è raggiunta a 556nm e picco di emissione avviene a 586nm. Emissione è abbastanza intenso, e quindi photobleaching non è stato osservatoried per essere problematico. Intervallo di tempo tra l'inizio della produzione di proteine ​​e il rilevamento primo segnale è di circa 12 ore. Il segnale è sufficientemente specifica da identificare le singole cellule di segnalazione, ma la risoluzione può essere inadeguato per determinare la localizzazione del segnale intracellulare. Nelle cellule di segnalazione, il segnale si osserva tipicamente in modo uniforme in tutto il citoplasma. Intensità del segnale può anche aumentare con l'esposizione estesa a ipossia, anche se non abbiamo ancora pienamente determinato se questo è dovuto alla maggiore espressione della proteina, accumulo di proteine ​​nel complesso, o ritardata maturazione delle proteine.

5. Rappresentante risultati

Un esempio rappresentativo di MIN6 aggregati incapsulato in un idrogel PEG è mostrato in Figura 4. Il gel reticolato sarà solido in tutto, prendendo la forma del recipiente in cui è stata eseguita la reazione. Un gel con lisce superfici esterne è preferibile per l'impianto di aiuto nella prevenzione di un nuovo corpo estraneosponse. All'interno il gel, aggregati di cellule dovrebbe essere completamente chiusa nella matrice e omogeneamente distribuita in modo da migliorare il trasporto dei nutrienti.

Immagini rappresentative di segnalazione ipossiche in MIN6 aggregati sono illustrati nella Figura 5. Identico MIN6 aggregati infettati con il virus marcatore sono state coltivate in entrambe il 20% O ₂ (5a) o 1% O ₂ (5b) per 44 ore prima della cattura dell'immagine.

Figura 1. Schematica delle attività del nostro sistema marcatore ipossia. Inserimento adenovirali della Red Ds DR gene a monte e promotore HRE permette di ipossia indotta la produzione della proteina fluorescente sotto il controllo di HIF-1.

Figura 2. Diagramma di flusso procedurale per l'unico passaggio incapsulamento di dispersi MIN6 celle di una crosslinked idrogel PEGDM. Per ogni gel, le cellule disperse sono sospese in 40μL della soluzione macromer fotoattivi PEGDM. Questo è posto in una siringa 1 ml e decapitato l'idrogel è formata sotto la luce UV 365nm dopo 10-12 minuti. Al termine, il disco idrogel è rimosso dalla siringa, lavato e messo in un mezzo pieno di pozzetti per l'incubazione.

Figura 3. Diagramma di flusso procedurale per il doppio passo incapsulamento di aggregati MIN6 cellule in un idrogel PEGDM reticolato. Per ogni gel, un mezzo-gel è il primo formato da reticolazione UV 20μL della soluzione macromer PEGDM fotoattivi per 8 minuti. MIN6 aggregati sono accuratamente sospesi in un 20μL addizionale di soluzione fotoattivi macromer che viene aggiunto in cima alla pre-formata a metà gel. Il gel completo è formato da un ulteriore 8 minuti di esposizione ai raggi UV con aggregati completamente incapsulato nel medialepiano del gel.

Figura 4. Immagine di un idrogel 40μL sotto ingrandimento 20X. MIN6 aggregati (~ 400.000 cellule totali) si vedono chiaramente all'interno del gel. Diametro idrogel è di circa 6mm (bar = 1mm).

Ipossia Figura 5. Fluorescente di segnalazione in forma aggregata MIN6 cellule in un idrogel PEGDM. Le cellule che sono state incapsulate e poi messe in incubazione a 20% O ₂ per 44 ore non vengono visualizzati segnalazione ipossia (a), mentre le cellule che sono state incapsulate poi incubate in 2 O _2% per 44 ore visualizzare segnale chiaro e onnipresente. (Bar = 100μm) (b).

Discussion

Il metodo presentato qui offre una tecnica rapida e semplice per l'incapsulamento delle cellule in un idrogel PEG con il minimo uso di non-fisiologiche condizioni. PEG rappresenta un materiale di incapsulamento molto utile per la sua biocompatibilità e la facilità di modifica. Semplice variazione di percentuale PEG nella soluzione fotoattivi, per esempio, possono essere utilizzati per regolare le proprietà meccaniche, come modulo di compressione, e proprietà di trasporto attraverso la dimensione dei pori. Inoltre, PEG è facilmente modificabile con l'aggiunta di catene laterali. Idrogel PEG, quindi, rappresentano sia un dispositivo promettente clinico e una piattaforma flessibile per la ricerca in vitro

Un metodo per il monitoraggio ipossia nel PEG-incapsulato cellule è stato presentato. Questo metodo è utile per la semplicità di rilevazione ipossia e per evitare la necessità di sacrificare le cellule di interesse. La tecnica può essere applicata ad una varietà di tipi di cellule in una varietà di condizioni che rendono le sue noiefulness ampio. Per esempio, l'ipossia come spunto per la differenziazione delle cellule staminali possono essere rintracciati in colture di cellule staminali Micromass. Tuttavia, questo metodo può essere applicato solo per disperdere i sistemi cellulari o sistema in cui le cellule sono disperse in seguito aggregate. Inoltre, il rilevamento del segnale fluorescente può essere difficile nei tessuti più grandi o più dense.

Materials

Nome del reagente	Azienda	Numero di catalogo	Commenti (opzionale
PEG	Sigma-Aldrich	309028-500G
Anidride metacrilico	Sigma-Aldrich	276685-100ML
Microonda	Emerson	MW8784SB
Vortex	Settori scientifico	SI-A236
Cloruro di metilene	Sigma-Aldrich	D65100-1L
Etere dietilico	Sigma-Aldrich	346136-1L
Dialisi Tubi	Spettro	132640
	Laboratori
Congelatore
Liofilizzatore	Labconco	7670521
Pompa del vuoto	Welch	8917Z-01
Irgacure 2959	Ciba-Geigy	029891301PS04
HBSS	Mediatech	21-022-CV
Filtro siringa	VWR	28145-477
RPMI 1640	Mediatech	*	* Formulazione personalizzati
FBS	PAA Laboratories	A15-351
Penicillina-Streptomicina	Mediatech	30-002-CI
Amfotericina B	Mediatech	30-003-CF
Incubatrice	Thermo Scientific	3597	NAPCO Serie 8000 WJ w / O2 soppressione
Tripsina EDTA	Mediatech	25-052-CI
Shaker orbitale	VWR	12620-926
Lampada UV	Sanyo Denri	FLR40SBLB / M	Tiene due 40W, lampade UV 365nm blu blacklight
Centrifuga	Eppendorf	5811 000.010 *	* Numero d'ordine. Modello 5810 R
Microscopio	Nikon	TI-ND6-PFS	Con filterset di eccitazione 556nm / 586nm emissione