Modelli animali di piccola taglia come i topi sono stati ampiamente utilizzati per studiare le malattie umane e per sviluppare nuovi interventi terapeutici. Nonostante la ricchezza di informazioni ottenute da questi studi, le caratteristiche uniche di immunità mouse nonché la specificità di specie di malattie virali come il virus dell'immunodeficienza umana (HIV) ha portato allo sviluppo di modelli murini umanizzati. I modelli precedenti ha comportato l'utilizzo di C. B 17 scid / scid topo e il trapianto di timo fetale umano e nel fegato fetale chiamati tua / liv (SCID-hu) 1, 2 o il trasferimento adottivo di umani leucociti del sangue periferico (SCID-huPBL ) 3. Entrambi i modelli sono stati utilizzati principalmente per lo studio dell'infezione da HIV.
Uno dei limiti principali di entrambi questi modelli era la mancanza di ricostituzione stabile di cellule immunitarie nella periferia di renderli un modello più fisiologicamente rilevante per studiare la malattia da HIV. A tal fine, il ronzio BLTmodello murino anized è stato sviluppato. BLT è l'acronimo di midollo osseo / fegato / timo. In questo modello, da 6 a 8 settimane di età NOD.Cg-Prkdcscid Il2rgtm1Wjl / SzJ (NSG) topi immunocompromessi ricevere il tuo / liv impianto come nella SCID-hu modello di topo solo per essere seguita da un secondo trapianto di cellule staminali ematopoietiche umane 4. Il vantaggio di questo sistema è la piena ricostituzione del sistema immunitario umano in periferia. Questo modello è stato utilizzato per studiare l'infezione da HIV e latenza 5-8.
Abbiamo generato una versione modificata di questo modello, in cui usiamo geneticamente modificato cellule staminali ematopoietiche (HHSC) per costruire la tua / liv impianto seguita da iniezione di trasdotte autologo HHSC 7, 9. Questo approccio si traduce nella generazione di lignaggi geneticamente modificati. Ancora più importante, abbiamo adattato questo sistema per esaminare il potenziale di generare funzionali cellule T citotossici (CTL) che esprime uno specifico recettore di cellula T melanoma. Utilizzando questo modello siamo stati in grado di valutare la funzionalità del nostro CTL transgenico vivo utilizzando la tomografia ad emissione di positroni (PET) per determinare regressione tumorale (9).
L'obiettivo di questo protocollo è quello di descrivere il processo di generazione di questi topi transgenici e di valutare l'efficacia in vivo utilizzando l'imaging dal vivo PET. Come nota, dato che usiamo tessuti umani e vettori lentivirali, i nostri impianti sono conformi alle linee guida CDC NIH per livello di biosicurezza 2 (BSL2) con precauzioni speciali (BSL2 +). Inoltre, i topi del GFN sono gravemente immunocompromessi in tal modo, la loro custodia e la manutenzione devono essere conformi ai più elevati standard di salute ( http://jaxmice.jax.org/research/immunology/005557-housing.html ).