Summary
Tümör immünoterapide kullanım için otolog dendritik hücreler, çok sayıda (DC'ler) oluşturmak için en yaygın olarak kullanılan yöntem tarif edilmektedir. Gibi bir yöntem monositlerden DC'ler ayırt etmek için, IL-4 ve GM-CSF kullanır. Bu hastaya geri enjekte edilmeden önce olgunlaşmamış DC'lerin olgun ve daha sonra antijen ile yüklenir için uyarılır.
Abstract
Klinik çalışmalarda antijen yüklü DC aşıları güvenli ve tümörler 1 için umut verici tedavi olduğunu kurduk da, klinik etkinliği kurulacak kalır. Bir yöntem olup, İyi Üretim Prosesi (GMP) kurallarına uygun olarak hazırlanan, aşağıda açıklanan klinik çalışmalar 2 DC'lerin sayıda üretmek için en yaygın ex vivo olarak hazırlama yönteminin bir iyileştirmedir.
Bizim yöntem sentetik TLR 3 agonisti DC uyarmak için Polyinosinic-polisitidilik Asit-poli-L-lisin Karboksimetilselüloz (Poli-ICLC) kullanır. Daha önceki çalışmada, CD83 ve CD86, interlökin-12 indüksiyonu (IL-12), tümör nekroz faktörü (TNF), interferon gama-kaynaklı bir regülasyonu ile değerlendirildi gibi poli-ICLC insan DC'ler için en güçlü tek olgunlaşmasını teşvik olduğunu tespit Protein 10 (IP-10), interleukmin 1 (IL-1) ve tip I interferonlar (IFN), ve en az interlökin 10 (IL-10) üretimi. DC lökaferezis ile elde edilen dondurulmuş periferik kan mononükleer hücreleri (PBMC) ayrılıyor. PBMC, Ficoll gradyan santrifüj ile izole edildi ve alikotlar halinde dondurulur. 1. günde, PBMC çözülmüş ve ° C doku kültürü inkübatöründe 37 de 1-2 saat inkübasyondan sonra plastik yüzeye yapışma monositler seçmek için doku kültürü şişeleri üzerine kaplanmıştır. İnkübasyondan sonra, lenfositler yıkanır ve yapışık monositler interlökin-4 varlığında (IL-4) ve olgunlaşmamış DC'lerin ayırt etmek için, granülosit-makrofaj koloni uyarıcı faktör (GM-CSF), 5 gün boyunca kültürlenmiştir. 6. günde, olgunlaşmamış DC'lerin aşı kalitesi için bir kontrol olarak hizmet eder ve aşı 3 immünojenisitesini artırmak olabilir anahtar deliği limpet hemosiyanin (KLH) proteini ile pals edilmiştir. DC'ler olgunlaşması için uyarılmış peptit antijen ile yüklenir ve bir gece inkübe edilir. 7. günde, hücreler yıkandı ve ihtiva eden 1 ml'lik kesirler dondurulur4 - kontrollü bir sınıf dondurucu kullanarak 20 x 10 6 hücre. DH partiler için çok sürümü test yapılır ve hasta enjekte edilmeden önce minimum teknik özellikleri karşılamalıdır.
Protocol
1. PBMC 4 İzolasyon ve Kriyoprezervasyon
- Aseptik başak bir plazma transfer seti kullanarak lökaferezis torbaya erişim limanlarından biri. 60 ml'lik şırınga kullanarak, steril bir 500 ml'lik şişe içine hastadan elde edilen lökaferezis aktarın.
- Oda sıcaklığında RPMI kullanarak orijinal ses 2x lökaferezis hacmi ayarlayın. Iyice karıştırın.
- Yavaşça Ficoll-Paque PLUS şişe karıştırın. Steril bir 50 ml'lik konik bir tüp içine 12 ml Ficoll Paque Plus eklenmesi.
- Ficoll içeren her bir steril 50 ml konik tüp seyreltilmiş lökaferezis ürünün yavaşça tabakası 30 mi. Ficoll ve hücre süspansiyonu arasındaki arayüz rahatsız etmemek için dikkatli olun.
- Lökaferezis tüm katmanlı edilene kadar adımları 1.3 ve 1.4 tekrarlayın.
- , Fren ile oda sıcaklığında 20 dakika boyunca 1000 x g 'de 50 ml konik tüp santrifüjleyin.
- Dikkatle her tüp ve transfe gelen PBMC'lerin bulutlu tabakası hasatyeni bir steril 50 ml tüp r.
- 50 ml lik bir son hacme kadar her bir tüpe RPMI ekleyin. Tersine çevirerek yavaşça karıştırın.
- 4 10 dakika ° C tam fren ile 500 × g hücreleri santrifüj.
- Her bir tüpten süpernatantlar çıkarın. Her bir tüp, hücre topakları yeniden süspanse edin ve 50 ml 'lik bir son hacim RPMI ekleyin. Tersine çevirerek yavaşça karıştırın.
- 4, 6 dakika boyunca 500 ° C x g'de santrifüjleyin hücrelerin
- Her bir tüpten süpernatantlar çıkarın. Süspanse edin ve bir adet 50 ml'lik konik bir tüp içine birlikte yüzme hücre süspansiyonları.
- Fazla yer RPMI ile 50 ml toplanmış PBMC hacmi getirin. Tersine çevirerek yavaşça karıştırın.
- 4, 6 dakika boyunca 300 ° C x g'de santrifüjleyin hücrelerin
- Süpernatantı. 50 ml RPMI hücre pelletini. Tek tip hücre süspansiyonu sağlamak için hafifçe karıştırın.
- Hücrelerin sayısını ve hücre canlılığı belirler. Canlı hücrelerin toplam sayısını hesaplayın.
- 300 hücreleri santrifüj4, 6 dakika boyunca x g ° C Dondurma ortamı hazırlayın. Insan AB serumu (Valley Biyomedikal) içinde, dondurma ortamı% 10 dimetil sülfoksit (DMSO Miltenyi Biotec) oluşur.
- Süpernatantı. 2 x 10 8 hücre / soğuk dondurma ortamı içinde ml 'lik bir nihai konsantrasyonda tekrar süspansiyon hücreleri.
- 1.8 mi cryovials 1 ml'lik olun.
- Kontrollü oranı dondurucu içine cryovials aktarın ve donma koşmak, Program 1 başlar. Miktarı sonunda, hemen sıvı nitrojen dondurucunun buhar fazına dondurulmuş kriyotüplerin aktarın.
2. Gün 0: monositler gelen dendritik hücreler farklılaşması
- , Steril bir 50 ml konik tüp, 30 ml RPMI /% 1 otolog plazma ekleyin.
- 37 ° C su banyosunda yavaşça sallanarak dondurulmuş PBMC'ler çözülme hacimde. Tamamen çözülmüş olduğunda, steril bir 50 ml'lik konik bir tüp için flakon içeriği aktarın. Iyice karıştırın.
- 6 dakika için hücreler santrifüjeoda sıcaklığında, 500 x g 'de. Süpernatantı ve RPMI /% 1 otolog plazma küçük bir hacim içinde tekrar süspansiyon pelet hücreleri. Daha sonra 50 ml nihai hacme kadar fazla RPMI /% 1 otolog plazma ekleyin. Iyice karıştırın.
- 6 dakika 500 x g, oda sıcaklığında tekrar hücreleri santrifüjleyin. Süpernatan aspire ve 50 ml RPMI /% 1 otolog plazma pelletini. Iyice karıştırın.
- Hücrelerin sayısını ve hücre canlılığı belirler. Canlı hücrelerin toplam sayısını hesaplayın.
- Levha 40 RPMI 1.40 ml / 225 cm 2 EasyFlask üzerine% 1 otolog plazma x 10 8 hücre. Tüm hücreleri kaplama edilene kadar tekrarlayın.
- 1 için yan düz EasyFlasks inkübe - 37 2 saat ° C doku kültürü inkübatör monositler balona bağlı kalmanıza olanak sağlar% 5 CO 2 içeren içinde.
- Kuluçka tamamlandıktan sonra, inkübatör EasyFlask kaldırmak ve yapışmayan hücreler USI çıkarmak için iki kez yıkayınönceden ısıtılmış RPMI ng 30 ml.
- İkinci yıkamadan sonra, 400-1,000 IU / ml IL-4 ve 100-1.000 IU / ml GM-CSF, 5-8, 40 ml RPMI /% 1 otolog plazma ekleyin. Bu protokol için, 400 IU / ml IL-4 ve 100 IU / ml GM-CSF kullanılarak uygulanır.
- 37 ° C'de 2 gün boyunca inkübe EasyFlasks ° doku kültürü inkübatöründe C,% 5 CO2 içeren.
3. Gün 2: IL-4 ve GM-CSF ile dendritik hücrelerin beslenmesi
- Her EasyFlask için 400-1,000 IU / ml IL-4 ve 100-1.000 IU / ml GM-CSF ile 4 ml RPMI /% 1 otolog plazma ekleyin. Dönen ve yan sallayarak karıştırın.
- 37 ° C, doku kültürü inkübatörü içinde% 5 CO2 içeren daha fazla 3 gün boyunca EasyFlasks (Gün 5 kadar) inkübe edin.
4. 5. Gün: Olgunlaşmamış dendritik Hücre Hasat
- Şiddetle şişeler dönen tarafından ve yapışmayan ve gevşek yapışık hücrelere tekrar süspansiyon ve aşağı yukarı pipetleme kültürler hasat. TransferYeni bir 50 ml konik tüplere hücreler hasat.
- Oda sıcaklığında 6 dakika boyunca 500 x g'de santrifüj tüpleri. Süpernatantlar çıkarın ve 50 ml RPMI /% 1 otolog plazma hücre pelletini. Iyice karıştırın.
- Hücrelerin sayısını ve hücre canlılığı belirler. Canlı hücrelerin toplam sayısını hesaplayın.
- Oda sıcaklığında 6 dakika boyunca 500 x g'de santrifüj tüpleri. Plaka 1-2 x 10 400 IU / ml IL-4 ve 6-çukurlu doku kültür plakaları içinde 100 IU / ml GM-CSF ile 3 ml RPMI /% 1 otolog plazma içinde oyuk başına 6 hücre.
- Plakalar 37 ° C'de doku kültürü inkübatörü 2 gece boyunca% 5 CO içeren.
5. 6. Gün: dendritik hücreler olgunlaşması ve Antijen Yükleniyor
- 10 ug / ml KLH'ye 6 oyuklu kültür plakaları içinde kuyu 1/3 ekleyin. Girdap plakaları karıştırmak için. KLH sadece ilk DC aşı için kullanılır, çünkü sadece KLH kuyu 1/3 eklenir. Sonraki DC aşıları conyalnızca tümör antijen peptidleri tain.
- DC farklı uyaranlara kullanarak olgun teşvik edilebilir. Klinik çalışmalarda kullanılmış olan en yaygın olgunlaşması uyaran bir sitokin kokteyli (TNFa, IL-1 β, ve IL-6) ve prostaglandin E2 (PGE2) 9,10 olmuştur. Daha yakın zamanlarda, Toll-benzeri reseptör (TLR) agonistlerinin kullanımı popülerlik kazanmıştır 11,12. Bu protokol, kuyulara 2 mg / ml Polyinosinic-polisitidilik Asit-poli-L-lisin Karboksimetilselüloz (Poli-ICLC) ekleyin ve iyice karıştırın. Poli-ICLC poli-L-lisin-* ve karboksimetilselüloz (Oncovir, Inc tarafından imal edilmektedir) ile stabilize Poli-IC klinik düzeyde bir formülasyondur.
- Her bir çapraz rekabete 13 önlemek için, yalnızca tek bir peptid alıcı, kendi belirlenmiş oyuklara 100 ug / ml uzun peptid antijenleri (NY-ESO-1 ve / veya Melan-A/MART-1) ekleyin.
- Levhalar 37 ° C'de inkübe edin doku kültürü kuluçka% 5 CO içeren ° C <alt> 2 O / N
6. Gün 7: dendritik hücreler, Kriyoprezervasyon
- Otolog plazma ve% 10 DMSO kullanarak DC Donma Çözüm hazırlayın. Herhangi bir parçacık halinde malzemeyi çıkarmak için 4 ° C'de 20 dakika boyunca 2,000 DC at dondurma solüsyonuna x g santrifüj edilir. Yeni etiketli 15 ml konik tüp süpernatant aktarın. 4 Mağaza ° kullanana kadar C.
- gecelik inkübasyon tamamlandıktan, hasat ve havuz 50 ml konik tüpler içine peptidler ile darbeli DC içeren tüm kuyuları.
- 6 dakika boyunca 500 x g'de santrifüj tüpleri. Süpernatantlar çıkarın. 5 ml RPMI /% 1 otolog plazma hücre pelletini. Kadar RPMI /% 1 otolog plazma ile 50 ml toplam hacmi getirmek. Iyice karıştırın.
- Hücrelerin sayısını ve hücre canlılığı belirler. Canlı hücrelerin toplam sayısını hesaplayın.
- , Oda sıcaklığında 6 dakika boyunca 500 x g'de santrifüj tüpleri. Süpernatantlar çıkarın ve 5 ml Steri her pelletinile% 0.9 NaCl, USP ve yeni 15 ml konik tüpler transfer. Daha steril% 0.9 NaCl, USP 14 ml hücre süspansiyonu her getirin. Tersine çevirerek kapağı ve karıştırın.
- Önceki adımı iki kez tekrarlayın. Son santrifüj işleminden sonra, pelet bozmadan mümkün olduğunca yakın hücre pelletleri elde etmek, süpernatantlar çıkarın.
- 4 de DC Donma Çözüm hücre pelet tekrar süspansiyon - 20 x 10 6 hücre / her 1.8 ml CryoTube flakon ml ve kısım 1 ml.
- DC aşıların alikotları aşağı dondurma ve uzun süreli depolama için bir sıvı azot dondurucu buhar fazına hemen aktarmak için, kontrollü oranı dondurucu, Program 1 kullanın.
7. Çok Release Test
- DC aşı her parti değerlendirilir ve genellikle 5 ila 6 hafta aşı hazırlandıktan sonra çalışmaya hasta, içine enjeksiyon için serbest bırakılmadan önce belirli çok bırakma kriterleri (Tablo 1) karşılamak gerekir.
- Canlılık:Otomatik kan sayım cihazının kullanıldığı DC aşı canlılığı değerlendirin. Kabul edilebilir minimum canlılık özellikleri>% 70'tir.
- Kimlik: flow sitometri ile olgun DC'ler (CD11c + CD14-CD83 +) kimliğini değerlendirin. CD11c + hücrelerin yüzdesi,>% 50 olmalıdır. CD11c + ve CD14 + hücrelerin yüzdesi olmalıdır <% 30 ve CD11c'nin yüzdesi +, CD14 ve CD83 + hücre olmalıdır> 50%.
- Sterilite: doğrudan kültür ve Gram boyama ile anaerobik ve aerobik bakteri ve mantar varlığı için test DC aşı. Doğrudan bir kültür sistemi ve endikatör hücre hattı, DNA florokrom boyama Testi kullanarak Mycoplasma varlığı açısından değerlendirir. Bu testler için, asgari özellikleri ayarlamak hiç büyüme tüm kültürlerden görülmektedir olmasıdır.
- Endotoksin: Kinetik-QCL kinetik kromojenik LAL testi kullanılarak endotoksin içeriği değerlendirin ve asgari kriterleri karşılamak için <50 EU / ml olmalıdır.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
10 arası - Başlangıç PBMC'ler% 20, kültür periyodunun sonunda DC'ler farklılaşırlar. Olgun DC CD11c olan +, CD14-, CD83 +, CD40 + ve CCR7 + (Şekil 1). Bunlar MHC sınıf I ve sınıf II molekülleri ile birlikte uyaran moleküller CD80 ve CD86 arasında yüksek düzeyde ifade eder. Diğer TLR agonistleri 14 ile karşılaştırıldığında, poli-ICLC da PDL-1 daha düşük düzeyde arttırmaktadır. Ayrıca, bu Poli-IC-olgunlaşmış DC'ler salgılar büyük IL-12 arasında miktarlarda (Şekil 2 ve 15,16) ve allojenik T hücreleri (Şekil 3) arasında proliferasyonunu.
Şekil 1. Tamamen farklılaşmış DC Temsilcisi fenotip Poly-IC ile olgunlaştı. Tüm DC ileri ve yan dağılım arsa üzerinde kapılı idi. DC'ler belirlendis CD11c + ve CD14-. Poly-ICLC yanıt olarak DC'ler olgunlaşması (kalın çizgi) CD83, CD40, ve CCR7 ifadesi göre değerlendirilir ve uyarılmamış DC (gri gölge) ile karşılaştırılmıştır. büyük rakam görmek için buraya tıklayın .
Şekil 2. DC sitokinler yüksek düzeyde üretmek Poli-IC ile olgunlaştı. 3 sağlıklı donörlerden ayırt DC'lerden Süpernatanlar Poli-IC ile DH gecede olgunlaşma sonra alındı. Üretilen sitokinler, sitokin Boncuk Dizisi (CBA) ile ölçüldü insan enflamatuar sitokinler, IL-12p70, TNF, IL-10, IL-6, IL-1β, IL-8 ve büyüklüğüne Kiti (BD Biosciences).
rc = "/ files/ftp_upload/50085/50085fig3.jpg" />
Şekil 3,. DC'ler allojenik T hücrelerinin proliferasyonunu Poli-ICLC ile olgunlaşmış. Poli-ICLC-olgunlaşmış DC'ler sağlıklı donörlerden Carboxyfluorescein diasetat succinimidyl ester (CFSE)-etiketli allojenik T hücreleri ile 1:10 inkübe edildi. 6 gün sonra, proliferasyon (A) CD3 yolluk + T hücre popülasyonu ile akış sitometrisi ile değerlendirildi. X ekseni, proliferasyon bir ölçü olarak, KAKE seyreltme gösteren çeşitli ko-kültür koşulları: T hücreleri tek başına, DC, poli-ICLC uyarılmış DC ve fitohemaglütinin (PHA) ile uyarılan T-hücrelerinde uyarılmamış. Sitokin salgılanması (B) yayılması sırasında BD CBA İnsan IFNy büyüklüğüne Th1/Th2 sitokin II Kiti (BD Biosciences), TNF, IL-10, IL-6, IL-4 ile kültürlerde süpernatanlarından değerlendirildi ve IL-2,. Diğer sitokinlerin deneyinde ölçülebilir düzeylerini tespit edilmemiştir olarak sadece IFNy gösterilmiştir./ / Www.jove.com/files/ftp_upload/50085/50085fig3large.jpg "target =" _blank "> büyük rakam görmek için buraya tıklayın.
| Test | Yöntem | Kriterleri |
| Yaşayabilirlik | ViaCount Reaktif ile Guava Kişisel Hücre Analizi | >% 70 |
| Kimlik | Sitometrisi -% CD11c + hücreleri | >% 50 |
| Sitometrisi -% CD11c + CD14 + hücreler | <% 30 | |
| Sitometrisi -% CD11c + CD14-CD83 + hücreler | >% 50 | |
| Kısırlık | Bakteriyel ve Mantar Kültürleri | Negatif |
| Mycoplasma: Doğrudan Hücre Kültürü | Negatif | |
| Endotoksin | Kinetik Kromojenik LAL Testi | <50 EU / ml ' |
| Fonksiyon | Karışık Lenfosit Reaksiyonu | Rapor Sonuçlar |
Tablo 1. Lot Release Kriterleri.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Faz I ve II, monosit türevli DC'lerin klinik çalışmalarda, hastalar, ancak klinik başarıya 1 sınırlı olmuştur bağışıklık tepkileri ortaya göstermiştir. Bu tümör immünoterapötik kullanım için en uygun DC oluşturmak için nasıl fikir birliği eksikliği kısmen olabilir. Klinik dereceli DC oluşturmak için birçok yolu olmasına rağmen, bu yöntemler monositler, olgunlaşma ikna etmek için kullanılan uyarı ve antijen yükleme yöntemleri ayırt etmek için kullanılan sitokinlerin kullanımı açısından farklılık gösterir. En uygun DC'ler oluşturmak için formül hala 2 tanımlanmaya devam etmektedir.
In vitro çalışmalar son DC'ler, klinik çalışmaların çoğunda kullanılmıştır proinflamatuar sitokinlerin 10 bir kokteyl ile olgunlaştı özellikle PGE2 varlığı, düzenleyici T hücreleri ve Th2 yanıtları 17, ekspres İDO farklılaşma neden olabileceğini göstermiştir 18 ve IL-12p70 eksiktirüretim 19. Bu etkiler önemli ölçüde bağışıklık yanıtları teşvik ve bu nedenle in vivo etkilerini optimize etmek için olgunlaşan DC'lerin alternatif yöntemler değerlendirmek için ihtiyaç desteklemek için aşı yeteneğini zayıflatmak.
TLR agonistlerinin kullanımı, özellikle TLR 3 agonist Poly-IC, Poly-IC-olgunlaşmış DC'ler MHC molekülleri ve CD83 istikrarlı yüksek ifade sahip olduğunu In vitro çalışmalar göstermiştir. DC DC klinik etkinliğini artırabilir olgun ve uyaran moleküller CD40, CD80, ve CD86 14,15,20. Buna ek olarak, Poli-IC-olgunlaşmış DC'ler IL-12, 14,16,20, yüksek düzeyde anti-tümör yanıtı 21 üretimi için önemli bir sitokin, hem de TNF-α gibi diğer pro-enflamatuar sitokinler, IL-6, üretilen IL-1β, IP-10 ve tip I 14 IFN'ler. Daha da önemlisi, bir insan papilloma virüsü (HPV) antijen ile doldurulan DC, fare tümör modellerinde gösterilmiştir ve w olgunlaşarakith Poli-IC-astarlı sitotoksik T hücre yanıtlarını HPV16-ifade tümörleri 22 kurulan ortadan kaldırılması kabil edildi. DC olgunlaşması durumu ve IL-12 varlığında klinik çalışmalarda 23,24 olarak etkinliği ile ilişkili görünmektedir olarak, olgun DC'lere Poly-IC kullanımının klinik başarı hedefe ulaşmak yolunda önemli bir adım olabilir.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Yazarlar aşağıdaki maddi destek aldık: NIH (AI061684, AI071078, AI044628 ve K08 AI084578 (Miller)), Bill ve Melinda Gates Vakfı, Doris Duke Vakfı, Kanser Araştırma Enstitüsü, Lupus Araştırma İttifak ve Zümrüt Vakfı. Nina Bhardwaj hazırlanması ve bağışıklık işlemek için dendritik hücrelerin kullanımı ile ilgili patentleri bir coinventor olduğunu. Yazarlar herhangi bir diğer ilgili bağlantıları ya da bir finansal faiz veya ayrı ifşa olanlardan el yazması tartışılan konu veya malzeme ile mali çatışma ile herhangi bir kuruluş veya kurum ile finansal katılımı var.
Acknowledgments
Yazarlar Poly-ICLC armağanı için Andres Salazar (Oncovir, Inc) teşekkür etmek istiyorum.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| RPMI-1640 medium with L-glutamine | BioWhittaker | 12-702F | |
| 1M HEPES buffered saline | BioWhittaker | 17-737E | |
| Phosphate buffered saline (PBS) | BioWhittaker | 17-516F | |
| Human albumin, 25% solution USP | Aventis Behring | ||
| Ficoll-Hypaque PREMIUM | GE Healthcare | 17-5442-03 | |
| Human AB serum | Valley Biomedical | HP1022 | |
| Sterile saline USP | Hospira | ||
| CryoMACS DMSO | Miltenyi Biotec | 170-076-303 | |
| Leukine GM-CSF, 0.5 mg/ml | Berlex | A02266 | |
| MACS GMP IL-4 | Miltenyi Biotec | 170-076-101 | |
| Hiltonol, Poly-ICLC, 2 mg/ml | Oncovir | NA | |
| VACMUNE KLH | Biosyn | ||
| 225 sq cm EasyFlasks | Nalgene Nunc | 159934 | |
| Falcon 6-well tissue culture plates | Becton Dickinson | 353046 | |
| 1.8 ml CryoTube vials | Nalgene Nunc | 377267 | |
| Controlled Rate Freezer | Thermo | CryoMed |
References
- Lesterhuis, W. J., et al. Dendritic cell vaccines in melanoma: from promise to proof. Crit. Rev. Oncol. Hematol. 66, 118-134 (2008).
- Sabado, R. L., Bhardwaj, N. Directing dendritic cell immunotherapy towards successful cancer treatment. Immunotherapy. 2, 37-56 (2010).
- Schumacher, K. Keyhole limpet hemocyanin (KLH) conjugate vaccines as novel therapeutic tools in malignant disorders. J. Cancer. Res. Clin. Oncol. 127, Suppl 2. 1-2 (2001).
- Jaatinen, T., Laine, J. Isolation of mononuclear cells from human cord blood by Ficoll-Paque density gradient. Curr. Protoc. Stem Cell Biol. Chapter 2, Unit 2A 1 (2007).
- Eichler, H., et al. Multicenter study on in vitro characterization of dendritic cells. Cytotherapy. 10, 21-29 (2008).
- Feuerstein, B., et al. A method for the production of cryopreserved aliquots of antigen-preloaded, mature dendritic cells ready for clinical use. J. Immunol. Methods. 245, 15-29 (2000).
- O'Neill, D., Bhardwaj, N. Generation of autologous peptide- and protein-pulsed dendritic cells for patient-specific immunotherapy. Methods Mol. Med. 109, 97-112 (2005).
- de Vries, I. J., et al. Phenotypical and functional characterization of clinical grade dendritic cells. J. Immunother. 25, 429-438 (2002).
- Jonuleit, H., et al. Pro-inflammatory cytokines and prostaglandins induce maturation of potent immunostimulatory dendritic cells under fetal calf serum-free conditions. Eur. J. Immunol. 27, 3135-3142 (1997).
- Lee, A. W., et al. A clinical grade cocktail of cytokines and PGE2 results in uniform maturation of human monocyte-derived dendritic cells: implications for immunotherapy. Vaccine. 20, Suppl 4. A8-A22 (2002).
- Bhardwaj, N. Harnessing the immune system to treat cancer. J. Clin. Invest. 117, 1130-1136 (2007).
- Gnjatic, S., Sawhney, N. B., Bhardwaj, N. Toll-like receptor agonists: are they good adjuvants? Cancer J. 16, 382-391 (2010).
- Kedl, R. M., Kappler, J. W., Marrack, P. Epitope dominance, competition and T cell affinity maturation. Curr. Opin. Immunol. 15, 120-127 (2003).
- Bogunovic, D., et al. TLR4 engagement during TLR3-induced proinflammatory signaling in dendritic cells promotes IL-10-mediated suppression of antitumor immunity. Cancer Research. 71, 5467-5476 (2011).
- Verdijk, R. M., et al. Polyriboinosinic polyribocytidylic acid (poly(I:C)) induces stable maturation of functionally active human dendritic cells. J. Immunol. 163, 57-61 (1999).
- Rouas, R., et al. Poly(I:C) used for human dendritic cell maturation preserves their ability to secondarily secrete bioactive IL-12. Int. Immunol. 16, 767-773 (2004).
- Jongmans, W., Tiemessen, D. M., van Vlodrop, I. J., Mulders, P. F., Oosterwijk, E. Th1-polarizing capacity of clinical-grade dendritic cells is triggered by Ribomunyl but is compromised by PGE2: the importance of maturation cocktails. J. Immunother. 28, 480-487 (2005).
- Krause, P., et al. Prostaglandin E2 is a key factor for monocyte-derived dendritic cell maturation: enhanced T cell stimulatory capacity despite IDO. J. Leukoc. Biol. 82, 1106-1114 (2007).
- Morelli, A. E., Thomson, A. W. Dendritic cells under the spell of prostaglandins. Trends Immunol. 24, 108-111 (2003).
- Adams, M., et al. Dendritic cell (DC) based therapy for cervical cancer: use of DC pulsed with tumour lysate and matured with a novel synthetic clinically non-toxic double stranded RNA analogue poly [I]:poly [C(12)U] (Ampligen R). Vaccine. 21 (12), 787-790 (2003).
- Colombo, M. P., Trinchieri, G. Interleukin-12 in anti-tumor immunity and immunotherapy. Cytokine Growth Factor Rev. 13, 155-168 (2002).
- Mayordomo, J. I., et al. Bone marrow-derived dendritic cells pulsed with synthetic tumour peptides elicit protective and therapeutic antitumour immunity. Nat Med. 1, 1297-1302 (1995).
- Dhodapkar, M. V., et al. Rapid generation of broad T-cell immunity in humans after a single injection of mature dendritic cells. J. Clin. Invest. 104, 173-180 (1999).
- Schuler-Thurner, B., et al. Rapid induction of tumor-specific type 1 T helper cells in metastatic melanoma patients by vaccination with mature, cryopreserved, peptide-loaded monocyte-derived dendritic cells. J. Exp. Med. 195, 1279-1288 (2002).
