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Research Article
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Erratum Notice
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Retraction Notice
The article Assisted Selection of Biomarkers by Linear Discriminant Analysis Effect Size (LEfSe) in Microbiome Data (10.3791/61715) has been retracted by the journal upon the authors' request due to a conflict regarding the data and methodology. View Retraction Notice
L'evoluzione quasi continua assistita da fagi e robotica (PRANCE) è una tecnica per l'evoluzione rapida e robusta delle proteine. La robotica consente la parallelizzazione degli esperimenti, il monitoraggio in tempo reale e il controllo del feedback.
Le tecniche di evoluzione accelerata dalla robotica migliorano l'affidabilità e la velocità dell'evoluzione utilizzando il controllo del feedback, migliorando i risultati degli esperimenti di evoluzione delle proteine e degli organismi. In questo articolo, presentiamo una guida alla configurazione dell'hardware e del software necessari per implementare l'evoluzione quasi continua assistita da fagi e robotica (PRANCE). PRANCE combina una rapida evoluzione molecolare basata sui fagi con la capacità di eseguire simultaneamente centinaia di esperimenti di evoluzione indipendenti e controllati dal feedback. Questo documento descriverà i requisiti hardware e la configurazione di PRANCE, tra cui uno strumento per la gestione dei liquidi, un lettore di piastre, pompe ausiliarie, riscaldatori e contenitori stampati in 3D. Descriviamo come configurare il robot per la gestione dei liquidi in modo che sia compatibile con il software open source basato su Python. Infine, forniamo suggerimenti per i primi due esperimenti che possono essere condotti con un sistema PRANCE di nuova costruzione che esercita le sue capacità e convalida che il sistema è pronto per condurre un'evoluzione multiplexata. Questa guida ha lo scopo di fungere da manuale per orientarsi nella considerevole configurazione delle apparecchiature associate alla conduzione dell'evoluzione accelerata dalla robotica.
PRANCE è una combinazione di due potenti tecniche di evoluzione diretta. La prima è PACE1, una tecnica molecolare che accoppia cicli di diversificazione e selezione genica al rapido ciclo di vita del batteriofago M13, consentendo cicli rapidi di evoluzione che si verificano continuamente in colture di fagi liquidi. Questa selezione è guidata dall'uso di un circuito genico codificato da plasmidi che accoppia la funzione della proteina in evoluzione all'espressione di pIII, la proteina del rivestimento della coda di M13, necessaria per la propagazione dei fagi, questo è illustrato nella Figura 1. A livello sperimentale, la diluizione continua della coltura fagica liquida consente una selezione continua. Il rigore selettivo può quindi essere modulato sia a livello del circuito genico che a livello sperimentale controllando la velocità di diluizione della coltura fagica. PACE può quindi essere applicato a qualsiasi sfida di ingegneria biomolecolare per la quale esiste un sensore molecolare in grado di rilevare l'attività desiderata nei batteri E. coli per indurre l'espressione di pIII. Le applicazioni includono l'evoluzione del legame proteina-proteina 2,3,4, del legame proteina-DNA 5, della solubilità proteica6 e di numerose funzioni enzimatiche specifiche7. Il secondo è Evolution 8,9, accelerato dalla robotica, che utilizza un controller di feedback per eliminare due comuni modalità di fallimento dell'evoluzione diretta: l'estinzione, che si verifica quando l'ambiente è troppo rigoroso, e la mancanza di evoluzione, che si verifica quando l'ambiente è troppo indulgente. A differenza del passaggio seriale dei fagi come avviene in PANCE (Phage-assisted Non-continuous Evolution)7,10, l'evoluzione "quasi continua" accelerata dalla robotica comporta un rapido pipettaggio che mantiene le colture a metà fase logaritmica, consentendo alle popolazioni di sperimentare cicli continui di infezione e propagazione. Quando queste due tecnologie vengono utilizzate insieme, vengono denominate PRANCE, acronimo di Phage and Robotics-assisted Near-continuous Evolution8, che consente un'evoluzione continua robusta, multiplexata e rapida. PRANCE è stato utilizzato per far evolvere polimerasi, tRNA e ammino-aciltRNA sintetasi e per effettuare il controllo del feedback durante tali evoluzioni per migliorarne la velocità e l'affidabilità8.
Ci sono diversi dettagli sulla configurazione hardware e software di PRANCE che consentono l'uso di batteriofagi su un robot per la manipolazione dei liquidi. Invece di utilizzare il software predefinito fornito dal produttore del robot, utilizziamo un pacchetto software open source basato su python11, che consente un'esecuzione rapida e simultanea e, quindi, la possibilità di mantenere i bioreattori semi-continui a metà fase logaritmica. Il tempo di assenza dei ricercatori può essere esteso a diversi giorni facendo in modo che diversi componenti sul ponte si autosterilizzino regolarmente, e questo si ottiene con il controllo automatico delle pompe in grado di candeggiare e risciacquare questi componenti. La contaminazione incrociata dei fagi può essere eliminata mediante l'uso di un robot per la manipolazione dei liquidi che non utilizza punte a montaggio forzato e un'attenta regolazione delle impostazioni di manipolazione dei liquidi.
1. Configurazione dell'hardware
NOTA: Vedere la Figura 2 per una panoramica dei componenti hardware di un sistema PRANCE e la Figura 3 per le foto di questi componenti assemblati fisicamente.
2. Preparazione del software
3. Preparazione pre-corsa
4. Integrazione hardware e software
Risultati dei test di infezione
Questo test rivelerà problemi con la coltura batterica, la clonazione e il titolo dei fagi, la stabilità della temperatura dell'apparecchiatura, le impostazioni di gestione dei liquidi e l'integrazione del lettore di piastre. Un test di infezione fagica di successo rivelerà un'infezione fagica chiara e rapida nelle lagune inoculate con fago e nessun segnale nelle lagune senza fagi. La Figura 10 mostra alcuni risultati rappresentativi di un test di infezione fagica. I risultati sperimentali possono anche essere confrontati con le Figure 1d e 1c di questo documento PRANCE8, a seconda che venga implementata una configurazione "PRANCE a caldo" (alimentata da un turbidostato batterico vivo) o "PRANCE fredda" (alimentata da una coltura in fase intermedia raffreddata). Questo test può rivelare diversi problemi comuni. I problemi con la preparazione della coltura batterica possono spesso causare infezioni deboli o assenti. I batteri possono essere infettati in modo ottimale dal fago M13 solo quando si trovano nella fase intermedia e a 37 °C. Ad altre temperature e fasi di crescita, mostrano un'espressione pilosa più debole e quindi sono meno suscettibili all'infezione fagica12. L'inoculazione con fago a basso titolo o fago con mutazioni della spina dorsale può causare un segnale ritardato o assente. I problemi con le impostazioni di guadagno del lettore di piastre per la fluorescenza o la luminescenza saranno rivelati da questo test.

Figura 1: Schema del circuito genetico in funzione durante il test di infezione dell'apparato PRANCE. Quando l'RNA polimerasi T7, codificata sul genoma del fago, infetta l'ospite di Escherichia coli , viene trascritta e si lega all'AP al promotore T7, che porta alla trascrizione della proteina fagica pIII e della proteina luxAB, che, a sua volta, facilita la propagazione dei fagi e la produzione di luminescenza. Abbreviazioni: PRANCE = Phage- and Robotics-assisted Near-continuous Evolution; AP = plasmide accessorio. Fare clic qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

Figura 2: Uno schema dei componenti fisici del sistema PRANCE. Un frigorifero immagazzina le colture mescolate, che vengono poi spostate sul ponte del robot da una serie di pompe, al serbatoio batterico, "la cialda". Il robot per la manipolazione dei liquidi viene utilizzato per spostare le colture batteriche dalla "cialda" utilizzando la testa di pipettaggio ai pozzetti di contenimento per riscaldarle alla temperatura di incubazione, e quindi alle lagune dove avviene l'incubazione principale. Sia i pozzi di contenimento che le lagune sono piastre standard da 2 mL. Il robot preleva i campioni in piastre di lettura monouso, che a loro volta vengono spostate in un lettore di piastre per la misurazione. Abbreviazione: PRANCE = Phage- and Robotics-assisted Near-continuous Evolution. Fare clic qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

Figura 3: L'apparato robotico PRANCE. (A) Configurazione PRANGER. (I) Filtro HEPA e riscaldatore esterno. (II) Frigorifero per colture. (III) Custodia principale del robot. (IV) Lettore di targhe. (V) Pompe e serbatoi. (B) Custodia del robot. (VI) Pompe colturali principali. (VII) Serbatoi di acqua, rifiuti e candeggina. (VIII) Pompe lavavetri. (C) Custodia del robot. (IX) Braccio di pipettaggio e pinza robotizzati. (X) Puntali per pipette. (XI) Componente stampato in 3D per consentire la distribuzione della coltura sul robot ("la cialda"). (XII) Piastre per il campionamento nel lettore di piastre. (XIII) Secchi per il lavaggio delle punte. (XIV) "Lagune": recipienti di coltura dove avviene la coltura evolutiva. Abbreviazioni: PRANCE = Phage- and Robotics-assisted Near-continuous Evolution; HEPA = particolato ad alta efficienza. Fare clic qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

Figura 4: Layout del ponte. (A) Rappresentazione 3D del layout del piano nel software di controllo del robot. (B) Fotografia dei componenti del ponte. Fare clic qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

Figura 5: Screenshot della riga di comando con i parametri di esempio (sopra) e il software di controllo dell'esecuzione (sotto). Il pulsante di riproduzione si trova in alto a sinistra e può essere cliccato con il mouse o azionato con un touchscreen a seconda dell'implementazione locale. Fare clic qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

Figura 6: Il file manifesto del controller configurato per le esecuzioni dei test. Le lagune contenenti la coltura #0 si troverebbero nelle colonne 1 e 3 della piastra a 96 pozzetti profondi. Le colonne rimanenti sarebbero vuote. Le righe A, B, D ed E della piastra a 96 pozzetti sono contrassegnate sulla colonna di destra per l'infezione da fagi (1), le altre righe (0) sono controlli senza fagi. Questa istanza del manifesto del controller comporterebbe la diluizione della laguna con 210 μL di coltura ad ogni ciclo. Fare clic qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

Figura 7: Calcolo del tasso di diluizione lagunare effettivo utilizzando il foglio di calcolo DilutionCalculator. Vedere il file supplementare 2 per il foglio di calcolo DilutionCalculator. Come si vede in questa figura, una laguna da 550 μL diluita da 210 μL di coltura fresca ogni ciclo di 30 minuti, con campioni da 150 μL per la misurazione della piastra del lettore prelevati ogni quattro cicli, corrisponderà a un tasso di diluizione effettivo di 1,0 volumi di laguna/h (dopo ogni 1 ora, rimarrà il 50% del liquido lagunare originale all'inizio dell'ora) Fare clic qui per visualizzare una versione più grande di questo figura.

Figura 8: Sistema di riscaldamento del robot. Il riscaldatore si attiva collegando l'alimentazione come indicato dal cerchio rosso. Fare clic qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

Figura 9: Impostazioni del protocollo di decontaminazione UV. Fare clic qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

Figura 10: Misurazione di un test di infezione eseguito sul sistema PRANCE. I campioni vengono prelevati durante la corsa e vengono effettuate misurazioni della luminescenza e dell'assorbanza. Per ogni laguna, le misure di luminescenza sono divise per la corrispondente misura di assorbanza e tracciate in funzione del tempo. Le lagune che sono state infettate da Phage sono colorate in verde, mentre le lagune di controllo non infette sono colorate in nero. Abbreviazione: PRANCE = Phage- and Robotics-assisted Near-continuous Evolution. Fare clic qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
File supplementare 1: file STL per la stampa 3D dei componenti del ponte personalizzati necessari per il sistema PRANCE, tra cui, come minimo, il serbatoio batterico/collettore di distribuzione ("waffle"). Fare clic qui per scaricare il file.
File supplementare 2: foglio di calcolo DilutionCalculator. Fare clic qui per scaricare il file.
Gli autori non hanno conflitti da rivelare.
L'evoluzione quasi continua assistita da fagi e robotica (PRANCE) è una tecnica per l'evoluzione rapida e robusta delle proteine. La robotica consente la parallelizzazione degli esperimenti, il monitoraggio in tempo reale e il controllo del feedback.
Ringraziamo Emma Chory e Kevin Esvelt per il loro aiuto e i loro consigli con la configurazione hardware e software. Samir Aoudjane, Osaid Ather ed Erika DeBenedictis sono supportati dallo Steel Perlot Early Investigator Grant. Questo lavoro è stato sostenuto dal Francis Crick Institute, che riceve i suoi finanziamenti principali dal Cancer Research UK (CC2239), dal Medical Research Council del Regno Unito (CC2239) e dal Wellcome Trust (CC2239).
| serbatoio batterico stampato in 3D "waffle" | - | https://drive.google.com/file/d/16ELcvfFPzBzNSto0xUrBe-shi23J9Na7/view; Per | |
| stampante 3D | Robot deckFormLabs | Form 3B+ | Componenti della stampante 3D |
| Resina per stampante 3D (trasparente) | Materiale di consumoFormLabs | RS-F2-GPCL-04 | per stampante 3D |
| 8-1.000 &; Testa a L | Hamilton | 10140943 | per robot di manipolazione liquidi |
| 96-1.000 µ Testa di pipettaggio L | Hamilton | 10120001 | Per robot per la manipolazione dei liquidi |
| Micropiastre per lettore di piastre in polistirene nero | Millipore Sigma | CLS3603 | Per il ponte del robot |
| BMG Labtech Spectrostar FLuorstar Omega | BMG Labtech | 10086700 | Per il robot per la manipolazione dei liquidi |
| Soluzione di pulizia | Fluorochem Limited | F545154-1L | utilizzato per pulire le parti del robot per la manipolazione dei liquidi |
| Piastre per pozzetti profondi | Appleton | Woods ACP006 | vengono utilizzate per contenere i batteri in evoluzione sul ponte del riscaldatore a |
| colsure | roboticheStego | 13060.0-01 | riscalda all'interno dell'involucro del robot |
| Hamilton STAR | Hamilton 870101 | per robot per la manipolazione dei liquidi | |
| Riscaldatore | Erbauer BGP2108-25 | per il robot per la movimentazione dei liquidi | |
| HIG Bionex centrifuga | Hamilton | 10086700 | per robot di manipolazione dei liquidi |
| pinza a piastre iSWAP | Hamilton | 190220 | per robot di manipolazione dei liquidi |
| tubi da laboratorio | Merck | Z280356 | per costruire il collettore di manipolazione dei liquidi |
| connettore luer-barb | AIEX | B13193/B13246 | per la connettorizzazione dei tubi |
| Piastra di agitazione magnetica | Camlab | SKU - 1189930 | Per Frigorifero ausiliario |
| Braccio di pipettaggio molecolare | Hamilton | 173051 | Per robot di manipolazione dei liquidi |
| Omega | BMG labtech | 5.7 | software di controllo del lettore di piastre |
| Valvole di ritegno unidirezionali | Masterflex | MFLX30505-91 | a sezioni unidirezionali del collettore di manipolazione dei liquidi |
| pyhamilton | MIT/Open source | https://github.com/dgretton/std-96-pace%20PRANCE | software di controllo robot python open source |
| pymodbus | opensource | 3.5.2 | interfaccia software della pompa python |
| Refrigetator | Tefcold | FSC175H | consente di utilizzare batteri raffreddati al posto del torbidostat |
| S2060 Ceppo batterico | Addgene Addgene: #105064 | E. coli | |
| temperature controller | Digiten | DTC102UK | Utilizzato per controllare termostaticamente i riscaldatori |
| Regolatore dell'interruttore | del termostato WILLHI | WH1436A | WILLHI WH1436A 10 A Regolatore di temperatura Interruttore termostato digitale 110 V Regolatore sottovuoto NTC 10K Sensor versione migliorata; per Robot di manipolazione dei liquidi |
| Venus | Hamilton | 4.6 | Software di controllo robot proprietario |
| Stazione di lavaggio per MPH 96/384 | Hamilton | 190248 | per robot per la movimentazione dei liquidi |
| Produttori di pompe consigliati | |||
| Azienda | Numero di catalogo | Note | Documentation |
| Agrowtek | AD6i Hexa Pump | https://www.agrowtek.com/doc/im/IM_ADi.pdf | |
| Amazon | INTLLAB 12V DC | ||
| Cole-Parmer | EW-07522-3 | Masterflex L/S Digital Drive, 100 giri/min, 115/230 V CA | https://pim-resources.coleparmer.com/instruction-manual/a-1299-1127b-en.pdf |
| Cole-Parmer | EW-07554-80 | Masterflex L/S Azionamento a velocità variabile Economy, da 7 a 200 giri/min, 115 V c.a. | https://pim-resources.coleparmer.com/instruction-manual/a-1299-1127b-en.pdf |