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Il protocollo di studio è stato approvato dal Comitato Etico della Facoltà di Medicina dell'Università di Harran (decisione n. HRU/23.12.23; 10 luglio 2023). A causa del disegno retroattivo, il consenso informato fu rinunciato. Tutte le procedure sono state condotte secondo gli standard del laboratorio istituzionale. Gli strumenti di ricerca utilizzati in questo protocollo sono elencati nella Tabella dei Materiali.
1. Disegno dello studio e selezione dei pazienti
I risultati della coltura delle vie respiratorie inferiori dei pazienti ricoverati in una terapia intensiva per malattie toracici ospedalizzate universitarie tra marzo 2017 e marzo 2023 sono stati revisionati retrospettivamente. I pazienti sono stati inclusi se il COVID-19 non era sospettato clinicamente o radiologicamente e i risultati del test della reazione a catena della polimerasi SARS-CoV-2 (PCR) erano negativi. Sono stati esclusi i pazienti sotto i 18 anni e quelli con risultati PCR positivi.
I pazienti sono stati suddivisi in gruppi pre-COVID-19 (prima di marzo 2020) e post-COVID-19 (marzo 2020 e dopo) in base alla data del primo caso confermato di COVID-19 in Turchia.
2. Collezione di esemplari
I campioni delle vie respiratorie inferiori includevano espettorato, aspirazione tracheale profonda (DTA) e lavaggio broncoalveolare (BAL) raccolti in condizioni asettiche secondo le pratiche cliniche standard in terapia intensiva.
Campioni di sputum e DTA sono stati prelevati da pazienti intubati e non intubati utilizzando tecniche di aspirazione sterile. Campioni di BAL sono stati raccolti durante una broncoscopia fibrotica utilizzando un'instillazione salina sterile seguita da aspirazione.
3. Valutazione preliminare del campione
I campioni di expectorto e DTA sono stati inizialmente valutati tramite colorazione di Gram. I campioni erano considerati idonei per la coltura se contenevano almeno 25 leucociti polimorfonucleari e meno di 10 cellule epiteliali squamose per campo a bassa potenza a ingrandimento 100x. Gli esemplari che non soddisfavano questi criteri venivano esclusi.
4. Lavorazione della coltura
I campioni di espetto sono stati processati utilizzando un metodo di coltura qualitativa. I campioni sono stati inoculati su agar di sangue di pecora al 5%, agar blu di metilene eosina e agar cioccolato, quindi incubati aerobicamente a 37 °C e valutati dopo 24 e 48 ore. Solo i microrganismi predominanti che mostrano crescita che si estende almeno fino al secondo settore di striatura sono stati considerati clinicamente significativi.
I campioni DTA e BAL sono stati processati utilizzando metodi di coltura quantitativa. Le aliquote sono state inoculate sullo stesso mezzo e incubate in condizioni identiche. Sono state considerate significative soglie di crescita di almeno 100.000 unità formative di colonie (CFU) per mL per DTA e almeno 10.000 CFU per mL per i campioni BAL
5. Identificazione dei microrganismi
Tutti gli isolati che soddisfano criteri predefiniti sono stati identificati utilizzando la spettrometria di massa a tempo di volo per ionizzazione laser assistita da matrici (MALDI-TOF MS) secondo le procedure standard di laboratorio.
6. Registrazione e analisi dei dati
Caratteristiche demografiche, tipi di campioni, risultati delle colture, microrganismi identificati e esiti di discarica sono stati registrati sistematicamente. Le distribuzioni dei microrganismi sono state confrontate tra i periodi pre- e post-COVID-19.
7. Analisi statistica
Le analisi statistiche sono state effettuate utilizzando SPSS (versione 15.0) e il software Minitab. La normalità delle variabili continue è stata valutata utilizzando il test di Shapiro-Wilk. Le variabili categoriche sono state confrontate utilizzando il test del chi-quadrato. È stata condotta un'analisi di regressione logistica per valutare le associazioni tra distribuzione dei microrganismi e mortalità. Un valore p inferiore a 0,05 è stato considerato statisticamente significativo.