Quantificazione dell'alginato batterico mediante il dosaggio del carbazolo dell'acido uronico

0 visualizzazioni4:17 min • September 26th, 2025

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Prendi una coltura del batterio Pseudomonas aeruginosa in brodo.

Placcare la coltura su agar di isolamento e incubare per promuovere la crescita batterica e la produzione di alginato, un esopolisaccaride composto da acidi uronici.

Aggiungi soluzione salina isotonica al prato batterico e raschia per raccogliere le cellule batteriche insieme all'alginato.

Trasferire la sospensione in un tubo, vorticare per disperdere il contenuto e posizionarla sul ghiaccio per evitare la degradazione enzimatica.

Misurare la densità ottica, o OD, per determinare la densità batterica.

Aggiungere la sospensione batterica alla soluzione acido-borato e mescolare per idrolizzare l'alginato in monomeri di acido uronico.

Aggiungere il carbazolo, un reagente cromogenico, e incubare. In condizioni acide, il reagente reagisce con gli acidi urronici per formare complessi colorati.

Misurare l'assorbanza per quantificare i livelli di acido uronico, che riflettono la concentrazione di alginato.

Utilizzando una curva standard, determinare la concentrazione di alginato, quindi dividerla per la densità cellulare batterica misurata per calcolare la produzione di alginato per unità di biomassa.

Per iniziare il dosaggio del carbazolo dell'acido uronico, identificare una singola colonia da una coltura pura del ceppo desiderato da testare e prelevare la colonia utilizzando uno stuzzicadenti sterile.

Metti lo stuzzicadenti in una provetta per colture contenente cinque millilitri di PIB. Coltiva in un'incubatrice shaker a 37 gradi Celsius per 24 ore. Dopo l'incubazione, aggiungere un'aliquota del brodo PIB fermentato su una piastra PIA preriscaldata.

Utilizzando uno spandiconcime sterile, distribuire il brodo sulla piastra e far crescere a 37 gradi Celsius per 24 ore. Utilizzando un pipettatore e una pipetta sterile da 50 millilitri, aggiungere lo 0,85% di cloruro di sodio al prato adulto e raccogliere il campione raschiando la piastra con uno spandiconcime. Aspirare il campione utilizzando una pipetta fresca da 50 millilitri e trasferirlo in una provetta di raccolta da 50 millilitri.

Agitare il campione in alto per mescolare e posizionare i campioni sul ghiaccio. Per misurare l'OD 600 dei campioni, prima si spegne lo spettrofotometro utilizzando un millilitro di cloruro di sodio allo 0,85%. Quindi aggiungere un millilitro di campione a una nuova cuvetta monouso e leggere il diametro esterno. Ripetere questo passaggio due volte per ottenere una triplicazione di letture per ogni campione.

Ora aggiungi tre millilitri della soluzione di borato di acido solforico nelle provette di coltura e lascia riposare sul ghiaccio. Aggiungere lentamente 350 microlitri del campione raccolto alla miscela acida nelle provette. Dopo aver girato brevemente al minimo, aggiungere 100 microlitri di soluzione di carbazolo ed etanolo allo 0,1% alla miscela di campioni acidi.

Tappare il tubo e girare a vortice sull'impostazione media per cinque secondi. Quindi mettere in un bagno asciutto a 55 gradi Celsius per 30 minuti. Dopo l'incubazione, agitare brevemente le provette alla massima potenza e lasciarle raffreddare per cinque minuti.

Utilizzare il tubo con cloruro di sodio allo 0,85% come bianco per lo spettrofotometro. Quindi aggiungere un millilitro della miscela a una cuvetta pulita e leggere il diametro esterno dei campioni a 530 nanometri su uno spettrofotometro. Preparare una curva standard misurando l'OD 530 delle diluizioni seriali di concentrazioni note di acido d-mannuronico.

Ripeti due volte ed estrai un'equazione lineare da queste letture. Calcolare la concentrazione di alginato in ciascun campione utilizzando la curva standard e dividere la concentrazione di alginato dall'equazione lineare per OD 600 per ottenere la quantità totale di alginato per OD 600.

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Ultimo aggiornamento: 15 agosto 2026