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Immunologia
0 visualizzazioni • 5:45 min • July 8th, 2025
Le cellule T regolatorie, o Treg, sono una sottopopolazione specializzata di cellule T che esercita effetti immunosoppressivi per mediare l'omeostasi del sistema immunitario. Le Treg esprimono i marcatori della superficie cellulare CD4, CD25 e Neuropilina 1, Nrp1 e i fattori di trascrizione nucleari forkhead box P3, Foxp3 e Helios.
Per isolare le Treg dai linfonodi drenanti pancreatici di topo, o PDLN, posizionare una rete metallica su un tubo conico. Posizionare i PDLN sulla rete e macinare il tessuto per dissociarlo meccanicamente. Aggiungere un mezzo adatto sopra la rete, lavando le cellule nel tubo.
Centrifugare, rimuovendo le cellule morte e i detriti cellulari. Risospendere le cellule vitali nel terreno. Far passare le cellule attraverso un tappo filtrante montato su un tubo a fondo tondo per ottenere una sospensione omogenea di una singola cellula, eliminando eventuali grumi cellulari rimanenti.
Aggiungere anticorpi anti-CD4, anti-CD25 e anti-Nrp1 coniugati con fluorocromo. Gli anticorpi anti-CD4 e anti-CD25 si legano ai rispettivi antigeni di superficie cellulare sulle Treg. Contemporaneamente, l'anti-Nrp1 si lega ai recettori Nrp1.
Trattare le cellule con un tampone di fissazione della permeabilizzazione adatto, fissando le cellule e permeabilizzando le membrane cellulari e nucleari. Aggiungere anticorpi coniugati con fluorocromo mirati a Foxp3 e Helios.
Le membrane permeabilizzate consentono agli anticorpi di entrare nelle cellule e legarsi ai rispettivi bersagli intranucleari. Analizzare le cellule utilizzando la citometria a flusso.
Le Treg sono caratterizzate dall'espressione positiva sulla superficie cellulare di CD4, CD25 e Nrp1, insieme ai fattori di trascrizione nucleare Foxp3 e Helios.
Per prima cosa, metti una provetta conica da 15 millilitri in una griglia. Posizionare una rete metallica sterile da 250 micrometri sul tubo. Risciacquare la rete con 1 millilitro di RPMI. Quindi, trasferisci i linfonodi sulla rete metallica e usa un paio di pinzette per macinarli attraverso la rete. Applicare 1 millilitro di RPMI sulla rete per lavare le cellule nel tubo. Ripetere questo processo di trasferimento e macinazione dei linfonodi tre volte per ogni campione, quindi rimuovere la rete.
Centrifugare le provette a 433 x g e a 4 gradi Celsius per 5 minuti. Scartare il surnatante e risospendere le cellule in circa 5 millilitri di RPMI, quindi riempire le provette con RPMI. Ripetere questo processo dalla centrifugazione dei campioni al riempimento della provetta con RPMI una sola volta.
Centrifugare nuovamente le provette a 433 x g e a 4 gradi Celsius per 5 minuti. Scartare il surnatante e risospendere il pellet cellulare in 2 millilitri di RPMI. Trasferire 2 millilitri di sospensione cellulare in provette a fondo tondo da 5 millilitri con tappi per filtri cellulari.
Innanzitutto, centrifugare la sospensione cellulare dai campioni PDLN a 433 x g e a 4 gradi Celsius per 5 minuti. Scartare il surnatante. Colorare le cellule con anticorpi di superficie, come indicato nel protocollo di testo, e incubare le provette sul ghiaccio per 40 minuti.
Quindi, aggiungere 200 microlitri di tampone FACS a ciascuna provetta. Centrifugare a 433 x g e a 4 gradi Celsius per 5 minuti ed eliminare il surnatante. Ripeti questo processo: aggiungendo il tampone, centrifugando e scartando il surnatante una volta. Risospendere il pellet cellulare in 500 microlitri di tampone di fissazione della permeabilizzazione per fissare e permeabilizzare le cellule.
Trasferire i tubi in frigorifero a 4 gradi Celsius durante la notte. Il giorno successivo, centrifugare la sospensione cellulare dai campioni PDLN a 433 x g e a 4 gradi Celsius per 5 minuti. Scartare il surnatante e risospendere il pellet cellulare in 500 microlitri di tampone di lavaggio per permeabilizzazione. Centrifugare nuovamente le cellule a 433 x g e a 4 gradi Celsius per 5 minuti e scartare il surnatante.
Colorare le cellule con anticorpi intracellulari, come indicato nel protocollo di testo. Incubare le provette con ghiaccio per 1 ora. Successivamente, aggiungere 500 microlitri di tampone di lavaggio per permeabilizzazione a ciascun tubo. Centrifugare a 433 x g e a 4 gradi Celsius per 5 minuti. Scartare il surnatante e risospendere il pellet in 500 microlitri di tampone di lavaggio per permeabilizzazione.
Centrifugare ancora una volta a 433 x g a 4 gradi Celsius per 5 minuti. Scartare il surnatante e risospendere il pellet cellulare in 300 microlitri di tampone FACS. Quindi, analizzare le cellule su un citometro a flusso come indicato nel protocollo di testo.
In questo articolo viene descritta l'isolazione e la caratterizzazione di cellule T regolatorie (Treg) dai linfonodi pancreatici drenanti di topo. Le Treg svolgono un ruolo fondamentale nel mantenimento dell'omeostasi del sistema immunitario grazie ai loro effetti immunosoppressivi.
Questo protocollo consente l'isolamento preciso e la caratterizzazione fenotipica di sottopopolazioni di cellule T regolatorie provenienti dai linfonodi pancreatici drenanti di origine murina, supportando la validazione degli bersagli nella scoperta di farmaci immunomodulanti. Definendo le popolazioni di Treg mediante marcatori di superficie e intracellulari, fornisce un sistema rilevante per la patologia, utile alla riduzione del rischio meccanicistica di terapie mirate alla tolleranza immunitaria. Il metodo aumenta l'affidabilità predittiva nei modelli preclinici fornendo letture quantitative e riproducibili mediante citometria a flusso per la valutazione dell'interazione con il bersaglio e dell'attività funzionale.
Il metodo si inserisce nel percorso di scoperta che va dalla convalida del bersaglio alla valutazione preclinica, offrendo un approccio affidabile per valutare gli effetti di composti immunomodulanti sulle popolazioni di Treg.
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Ultimo aggiornamento: 29 agosto 2026