Name: Generazione, purificazione e caratterizzazione di specie DISC1 Cell-invasive Protein (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-08-30T12:00:00.000+00:00
Duration: 14 min 33 s
Description: Impara a generare e purificare aggresomi di proteina DISC1 per studiare l'invasione cellulare in colture di neuroblastoma umano. Questi metodi permettono di analizzare il ruolo di DISC1 nei disturbi da conformazione proteica.

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Questo lavoro è stato finanziato da NEURON-ERANET scoprire (BMBF 01EW1003) per CK e JPH, DFG (Ko 1679/3-1, GRK1033) per CKVB è supportata da una concessione del Forschungskommission della Facoltà di Medicina dell&#39;Università di Düsseldorf.

1. Preparazione di cellule del donatore aggresome: trasfezione di monomerico proteina fluorescente rossa (MRFP) o Enhanced Green Fluorescent Protein (eGFP)-tagged Figura umana intera (FL) DISC1 <ol><li> Seed 1,5 x 10 6/10 cm parabola umana neuroblastoma NLF (FLN; Children Hospital di Philadelphia, Philadelphia, PA), le cellule in dieci 10 piatti cm e crescere durante la notte. NLF cellule vengono coltivate in mezzo RPMI-1640 integrato con 10% FBS, penicillina / Strepomycin, L-glutammina. Il giorno successivo, le cellule devono essere al 70-80% di confluenza. </li><li> Transitoriamente transfettare ogni piatto 10 cm con 15 pg di DNA plasmidico e reagenti di trasfezione Metafectene (Biontex, Martinsried, Germania). In breve, per un piatto 10 cm, 15 pg di DNA plasmidico e 30 Metafectene microlitri sono stati aggiunti a 750 pl Opti-MEM, miscelate e incubate a temperatura ambiente per 20 min. 5 piatti sono state trasfettate con pcDNA3.1 MRFP / eGFP-tagged umane (FL) DISC1 e 5 piatti con il eGFP-plasmide solo. </li></ol> 2. AggresomePurificazione di cellule del donatore trasfettate Il protocollo qui descritto è una combinazione di un metodo per purificare Lewy-Body da tessuto cerebrale 13 e un protocollo per isolare grandi aggregati e aggresomes 14. Poiché i metodi già esistenti sono basati sull&#39;uso di detergenti, l&#39;isolamento di detersivo privo di proteine ​​per l&#39;applicazione in cella-invasività saggi è critica. <ol><li> 48 ore dopo la trasfezione, monitorare l&#39;espressione di eGFP e mRFP/eGFP-DISC1 e confermare la formazione del aggresomes sotto un microscopio a fluorescenza (Figura 1). </li><li> Lavare le cellule con PBS pH 7.4, raschiare con 400 microlitri di PBS ciascuna, aggiungere 1X cocktail di inibitori delle proteasi (Roche, Indianapolis, IN) e distruggere le cellule utilizzando un omogeneizzatore Precellys24 (tecnologie di Bertin, Francia). In breve, aggiungere 1 ml di sospensione cellulare in una provetta di lisi 2 ml e aggiungere 10 perle di ceramica. Lisare le cellule con 3 x 60 impulsi al secondo. La forza meccanica del processo puòaumentare la temperatura all&#39;interno del campione superiore a 37 ° C quindi occorre prestare attenzione per raffreddare il campione nel ghiaccio dopo la procedura di lisi. </li><li> Raffreddare le celle su ghiaccio e aggiungere 10 mM MgCl 2, 40 U / ml DNasi A e incubare per 60 min a 37 ° C </li><li> Preparare soluzioni di 80%, 50%, 20% saccarosio (w / v) in PBS pH 7,4 (10 ml ciascuna). </li><li> Preparare il gradiente di saccarosio in una provetta da 15 ml falcon, partendo con 2 ml di saccarosio 80%, seguito da 50% e 20%. Versare il gradiente lentamente e fare attenzione a non disturbare i livelli già versato. Strato il lisato digerito sopra il gradiente e centrifugare per 15 min a 1000 xga 4 ° C. </li><li> Raccogliere accuratamente l&#39;interfase tra lo strato di saccarosio del 50-80% con una pipetta e mescolare con 5 volumi di PBS pH 7,4. Centrifugare per 15 min a 1000 xga 4 ° C. Ripetere il lavaggio altre due volte. In questa interfase, aggresomes sono fluorescenti e possono essere visualizzati in un microscopio a luce UV. </li><li> Eliminare il supernatante erisospendere il pellet in 250-500 microlitri di PBS pH 7.4. Questo pellet contiene il aggresomes purificata (Figura 2). </li></ol> 3. Trattamento dei destinatari cellule SH-SY5Y con mRFP/eGFP-DISC1 Aggresomes <ol><li> Sementi 5 x 10 4 destinatario SH-SY5Y neuroblastoma umano esprimono costitutivamente GFP-DISC1 (598-854) su vetrini sterili in ciascun pozzetto di una piastra a 24 pozzetti. SH-SY5Y cellule sono coltivate in DMEM/F-12 terreno supplementato con penicillina / streptomicina, aminoacidi non essenziali (NEAA) e 10% di FBS. </li><li> 24 ore più tardi, aggiungere 10 microlitri in ciascun pozzetto e incubare per 48-72 ore. </li><li> Lavare le cellule 3 x con PBS pH 7.4 e spegnere fluorescenza extracellulare con 0,04% Trypan Blue per 5 min. </li><li> Fissare le cellule con 4% PFA in PBS pH 7.4 per 10 min in ghiaccio, lavare una volta con sterile H 2 O e montare i coprioggetti su vetrini con prolungare oro con DAPI montaggio medio (Invitrogen, USA). </li><li> Confermare l&#39;assorbimento /invasione di esogenamente aggresomes applicati dalla colocalizzazione con proteine ​​assunti espresse da cellule riceventi in Z-stack immagini. </li></ol> Eppure, assorbimento / invasione proteina esogena non potrebbe essere rilevata sostanzialmente in parallelo con l&#39;assunzione di proteine ​​della cellula ospite. Nel nostro esempio MRFP-tagged DISC1 aggresomes recluta solubile GFP-tagged DISC1 (598-854) proteina espressa dalla cellula ospite (vedi Figura 3). Foto sono state scattate in un confocale Zeiss LSM 510 o di un microscopio Zeiss AxioVision Apotome2. 4. Generazione di DISC1 ricombinante (598-785) In una pubblicazione precedente abbiamo analizzato la capacità di vari DISC1 frammenti proteici di auto-interazione basata sulla presenza di auto-associazione domini. Tra tutte le proteine ​​frammenta testato DISC1 umano (598-785) visualizzata la forte propensione multimerizzazione 4 (Figura 4). Pertanto, DISC1 umano (598-785) è stato clonato in pET15b (nvagen, Madison, Wisconsin) contenente un 6-istidina N-terminale, espressa in E. coli BL21-(lDE3) Rosetta (Novagen, USA), e purificato in condizioni denaturanti a 8 mol / l urea come descritto 4. In breve, il protocollo è descritto di seguito. <ol><li> BL21-(IDE3) Rosetta E. coli sono state coltivate in 2 x 500 ml 2YT contenente 5 mM-arginina-HCl, 5 mM MgSO4, 100 pg / ml carbencillin, 35 mg / ml di cloramfenicolo fino ad una OD 600: 0,6-0,8 e DISC1 (598-785) è stata indotta l&#39;espressione con 1 mM IPTG. </li><li> DISC1 (598-785) è stata espressa per 4 ore a 37 ° C, l&#39;espressione è stata terminata per raccogliere i batteri mediante centrifugazione. </li><li> Il pellet batterico è stato risospeso in 50 ml di tampone TE (50 mM Tris-HCl pH 8,0, 5 mM EDTA) più 2 mM PMSF, 1% TX-100, 250 ug / ml lisozima, 20 mM MgCl 2 e 400 ml U/50 DNasi I. Per garantire la completa lisi, la reazione è stata incubata per 30 min a temperatura ambiente con delicata agitazione. </li><li> Aggiungere 10 mM β-mercaptoethanol (ME) e 500 mM NaCl e incubare per altri 30 min. </li><li> Spin down corpi di inclusione batterici a 20,000 g per 30 min a 4 ° C. </li><li> Risospendere il pellet in 50 ml di tampone di estrazione contenente 50 mM Tris pH 8,0, 5 mM di imidazolo, 500 mM NaCl, urea 8 M e 10 mM β-ME e rimuovere detriti mediante centrifugazione a 20,000 g per 30 min a 4 ° C. </li><li> Lavare il Ni-NTA agarosio matrice con tampone di estrazione. Incubare la risospeso, estratto precleared proteina con Ni-NTA matrice per 2 ore a RT. </li><li> Lavare il Ni-NTA matrice con tampone di estrazione contenente 12 mM imidazolo. </li><li> Eluire la proteina lentamente con 15 ml di tampone di eluizione contenente 50 mM Tris, 500 mM NaCl, 300 mM imidazolo, 8 M urea, 1 mM PMSF, 5 mM EDTA e 10 mM β-ME. </li><li> Dializza la proteina graduale di PBS pH 7,4 contenente 10 mM β-ME. </li></ol> Dal 1 ° L cultura batterica di partenza, è possibile isolare fino a 50 mg di ricombinante DISC1 (598-785) protein. α-sinucleina ripiegamento Per esperimenti con α-sinucleina, 500 microgrammi della proteina ricombinante (Sigma-Aldrich, USA) è stato sciolto in PBS ad una concentrazione di 1 mg / ml. Per ottenere oligomeri, ripiegatura è stata eseguita la notte a 37 ° C, come descritto in una pubblicazione precedente 10. 5. Etichettatura di DISC1 ricombinante (598-785) con DyLight594 <ol><li> Prima del processo di etichettatura successivo, DISC1 (598-785) proteina ha la essere liberato dalla β-ME. Pertanto, la proteina viene dializzato 3 volte al PBS pH 7,4 ad una diluizione di 1:2000. </li><li> Etichetta 1 mg DISC1 (598-785) con DyLight 594 maleimide (Thermo Scientific, USA) secondo le istruzioni del produttore. In breve, sciogliere 1 mg / ml di proteina in PBS pH 7,4 e si aggiungono 5 TCEP mM di recuperare liberi gruppi tiolici. Aggiungere 20 ml di DMF colorante disciolto nella reazione e incubare per 2 ore a RT. </li><li> 3 x dializza la proteina di PBS pH7,4 con un rapporto di 1:2000 per 2 h ciascuna. </li></ol> Per aumentare ulteriormente la purezza della proteina etichettata una sua 6-etichettato affinità basata-purificazione su una colonna di Ni-NTA viene eseguita. <ol start="4"><li> Lavare 1 ml Ni-NTA matrice (Qiagen, Germania) con 10 ml di PBS pH 7,4. </li><li> Applicare l&#39;etichetta, proteine ​​dializzato alla colonna e farlo funzionare sulla colonna lentamente. </li><li> Lavare la proteina con 3 x 20 ml di PBS pH 7,4 </li><li> Eluire la proteina con PBS pH 7,4, 500 mM imidazolo gocce monitorando la banda colorata sulla colonna Ni-NTA per ridurre il volume eluato. </li><li> Dializza l&#39;eluato a 3 x 10 mM pH 7,4 napi ad una diluizione di 1:2000 per 2 h ciascuna. </li><li> Utilizzare una siringa sterile 0,45 micron filtro per filtrare l&#39;eluato, aliquota in 5 x 100 campioni ul e congelare in azoto liquido a scatto. La quantità totale di proteine ​​dovrebbe essere di 0,5-1 mg / ml in ciascuna aliquota 100 ul. </li></ol> opzionale Concentrazionezione passo <ol start="10"><li> Per iniezioni stereotactical ratto, la proteina è stata concentrata 10 volte in una velocità-vac (Concentratore Eppendorf 5301). La condizione di buffer finale era di 100 Napi mM. </li></ol> α-sinucleina Etichettatura L&#39;etichettatura e purificazione (Ni-NTA colonna) ricombinante della α-sinucleina è stata eseguita in parallelo DISC1 (598-785). Il materiale di partenza è stato totale 500 mg invece di 1 mg per DISC1 (598-785). 6. Trattamento dei destinatari cellule SH-SY5Y con etichetta ricombinante DISC1 (598-785) Proteine <ol><li> Seme 5x10 4 destinatario SH-SY5Y neuroblastoma umano costitutivamente esprimono GFP-DISC1 (598-854) su vetrini sterili in ciascun pozzetto di una piastra a 24 pozzetti. </li><li> Aggiungi proteina marcata al mezzo di coltura cellulare ad una concentrazione di 5-10 mg / ml ed incubare per 48-72 hr. </li><li> Lavare le cellule 3 x con PBS pH 7.4 e dissetare estrazionefluorescenza ellular con il 0,04% Trypan Blue per 5 min. </li><li> Fissare le cellule con 4% PFA in PBS pH 7.4 per 10 min in ghiaccio, lavare una volta con sterile H 2 O e montare i coprioggetti su vetrini con prolungare oro con DAPI montaggio medio (Invitrogen, USA). </li><li> Confermare l&#39;assorbimento / invasione di proteina ricombinante esogena applicata da colocalizzazione con proteine ​​assunti espresse da cellule riceventi in Z-stack immagini generate da scansione laser microscopia confocale. Eppure, assunzione di proteina endogena potrebbe non essere rilevata sostanzialmente in parallelo con invasione di proteine ​​della cellula ospite, Z-stack immagini possono ancora confermare la natura invasiva della proteina. </li></ol> Nel nostro esempio, rec. DISC1 (598-785) * almeno in parte solubile reclute GFP-tagged DISC1 (598-854) proteina espressa dalla cellula ospite (vedi Figura 5A). Per ricombinante α-sinucleina invasione, ma non il reclutamento viene mostrato (Figura 5B). Le foto sono state presesu un confocale Zeiss LSM-510 o un microscopio Zeiss AxioVision Apotome2. L&#39;iniezione del concentrato (ca. 4 pl di 2,5 mg / mL), etichettati DISC1 (598-785) * nei risultati mPFC nella diffusione della proteina intorno al sito di iniezione, che può essere rilevato anche dopo perfusione dell&#39;animale con 4% PFA in PBS pH 7,4 con una filterset rodamina. Nel nostro esempio DISC1 (598-785) è occupata da una serie distinte di neuroni e può essere monitorato con Z-stack di immagini (Figura 6). In generale, l&#39;iniezione di altre proteine ​​poi quelle qui utilizzato non comportano necessariamente invasione cellulare. L&#39;evento invasione dipende essenzialmente dalla natura della proteina, tuttavia una purificazione pulita è un prerequisito per ulteriori analisi. 7. Risultati rappresentativi Aggresomes costituiti ricombinante DISC1-eGFP FL purificato da cellule NLF invaso destinatario SH-SY5Y ceLLS a bassa efficienza (circa 0.3% 5), come visto da colocalizzazione con microscopia confocale (Figura 3). Come precedentemente segnalato, DISC1 (598-785) espressa e purificata da E. coli formano multimeri 4 erano ugualmente cellula-invasiva ad un&#39;efficienza di circa il 20% 5 (figura 5A), simile a quella di α-sinucleina che è stato utilizzato in parallelo come controllo positivo (Figura 5B). Labeled DISC1 ricombinante (598-785) espressa e purificata da E. coli è stato anche cellule invasive ai neuroni in vivo quando la proteina è stata multimerico stereotassica iniettato nella corteccia prefrontale mediale di un topo (figura 6; Pum, Bader, Huston, Korth, non pubblicato). <img src="/files/ftp_upload/4132/4132fig1.jpg" alt="Figura 1" /> Figura 1. Cellule di neuroblastoma NLF transitoriamente esprimere FP-DISC1 (rosso). Red aggresomes fluorescenti possono essere deteCTED all&#39;interno delle cellule. <img src="/files/ftp_upload/4132/4132fig2.jpg" alt="Figura 2" /> Figura 2. Purificata MRFP-tagged DISC1 aggresomes dopo la purificazione in un gradiente di saccarosio. <img src="/files/ftp_upload/4132/4132fig3.jpg" alt="Figura 3" /> Figura 3. Immagine fluorescente di aggresomes invaso. MRFP-tagged flDISC1 aggresomes sono stati purificati e incubate con cellule SH-SY5Y neuroblastoma overexpressing solubile GFP-tagged DISC1 (598-854). La presa di una aggresomes etichettati è monitorata da Z-stack immagini su un Laser-Scan microscopio (Zeiss LSM 510). <img src="/files/ftp_upload/4132/4132fig4.jpg" alt="Figura 4" /> Figura 4. SEC-profilo di rec. DISC1 (598-785) contenente la S704 e C704 polimorfismi a singolo nucleotide (SNP). Entrambe le varianti mostrano una perturbazione di oligomerizzazione ordinata e la formazione di alto peso molecolare multemporizzatori (freccia rossa). Questa immagine è modificata rispetto alla pubblicazione di Leliveld et al., Biochimica 2009. <img src="/files/ftp_upload/4132/4132fig5.jpg" alt="Figura 5" /> Figura 5. Fluorescente Z-pila di foto di invasivo DyLight marcato DISC1 ricombinante (598-785). SH-SY5Y neuroblastoma esprimenti GFP-solubile DISC1 (598-854) sono state incubate con etichettati, proteina ricombinante ad una concentrazione di 5 mg / ml. (A) aggregati rossa mostra l&#39;invasione di rec. DISC1 (598-785), proteine ​​e punti gialli indicano una assunzione di solubile GFP-DISC1 (598-854) in aggregati. (B) ricombinante α-sinucleina (rosso) invade le cellule senza assunzione con una frequenza di circa il 20%. <a href="/files/ftp_upload/4132/4132fig5large.jpg" target="_blank">Clicca qui per ingrandire la figura</a> . <img src="/files/ftp_upload/4132/4132fig6.jpg" alt="Figura 6" /> Figura 6. Immagine di immunofluorescenzal&#39;etichetta iniettato, DISC1 ricombinante (598-785) della proteina. Z-stack immagini conferma la presenza di rec. DISC1 (598-785) proteina in neuroni corticali di ratto colorate con un anticorpo contro nuclei neuronali (NeuN, verde).

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</ol>

Nessun conflitto di interessi dichiarati.

In questo studio si descrive la purificazione di mRFP/eGFP-DISC1 aggresomes da una linea cellulare di neuroblastoma trasfettate, la preparazione e l&#39;etichettatura di una specie di proteine ​​ricombinanti DISC1 e la loro applicazione in cella-invasione delle cellule riceventi esperimenti in vitro e in vivo. La purificazione di nativi mRFP/eGFP-DISC1 aggresomes stato sviluppato da protocolli per isolare Lewy corpo come le strutture e grandi aggregati 13, 14, ma modificato per evitare l&#39;uso di detergenti e per minimizzare il rischio di falsi positivi invasione cellulare che potrebbe verificarsi a causa di detergenti facilitato la penetrazione della membrana. Un miglioramento futuro possibile potrebbe essere la per aumentare ulteriormente la purezza delle aggresomes per sonicazione per membrane completamente separati rimanenti citoscheletro e dalle aggresomes. Aumentando purezza globale, il numero di eventi di invasione totali registrati per grandi aggresomes mAy essere aumentata 5. Se la definizione limitata della nostra suggerito 3-fase saccarosio è sufficiente per aggresomes di specie altra proteina deve essere testato, in questo senso il protocollo descritto qui dovrebbe essere considerato come un punto di partenza per l&#39;ottimizzazione individuale. Le aggresomes purificati dimostrato di essere molto robusta nelle nostre mani, fasi di lavaggio supplementari (senza detergente) per eliminare le tracce di saccarosio non ridurre in modo significativo il rendimento complessivo. In una pubblicazione precedente abbiamo descritto che l&#39;assemblaggio di oligomero DISC1 dipende multimerizzazione domini distinti del C-terminale 4 (Figura 4). Abbiamo scelto questo frammento solubile di espressione ricombinante in E. coli e successive e Ni-NTA depurazione. Per monitorare la sua multimerizzazione e di confrontare la sua invasività cellulare con un cellulare descritto invasiva proteine ​​come α-sinucleina, abbiamo etichettato DISC1 (598-785) con il colorante fluorescente DyLight594, e rispetto la suacell-invasività con quella altrettanto marcato α-sinucleina. La cella invasività della ricombinante DISC1 frammento è stato notevolmente aumentata rispetto a quella dei nativi, lunghezza DISC1 aggresomes, probabilmente a causa della sua piccola dimensione e purezza molto superiore. Anche in questo caso, la purezza sembra giocare un ruolo decisivo nella cella-invasività. Nel nostro esempio i aggresomes invasive reclutati proteina solubile omologo della linea cellulare ricombinante bersaglio che è stato espresso in una solubile, cioè cellule disperse forma. L&#39;espressione di una proteina fluorescente (GFP o RFP ad esempio) nella linea cellulare del destinatario è un vantaggio in quanto permette la colocalizzazione di aggresomes invasive e proteine ​​ricombinanti nel termine cellula ricevente tramite Z-stack imaging. Cellule invasive aggresomes DISC1 e frammenti multimerici espressa e purificata da E. coli potrebbe essere una caratteristica che definisce una malattia conformazionali proteiche relative alla DISC1, DISC1opathies 15. Risoluzione dei problemi: Bassa resa aggresome dopo purificazione gradiente di saccarosio: Il gradiente di saccarosio introdotto in questo protocollo funziona bene con eGFP/mRFP-DISC1 (FL) aggresomes. Aggresomes costituiti da altre proteine ​​possono essere di dimensioni variabili, pertanto le concentrazioni di saccarosio deve essere ottimizzata da altri utenti. Insufficiente purificazione di proteine ​​ricombinanti: Eventuali contaminanti batterici nel processo di purificazione della proteina ricombinante sarà anche essere etichettati in fasi successive del protocollo. Per evitare contaminazioni, eseguire la proteina su una SDS-PAGE e confermare che la proteina ricombinante è almeno del 95% mediante colorazione con Coomassie-blu. Per garantire la massima qualità e resa, il protocollo deve essere ottimizzata per ciascuna singola proteina. Basso etichettatura efcienza di proteine ​​ricombinanti: Eventuali contaminazioni che contengono gruppi sulfidrilici liberi diminuirà etichettatura efficiente della proteina. Pertanto, dialisi estensiva e Ni-NTA purificazione basato è obbligatoria.

<table border="1"><tbody><tr><td> Reagente nome </td><td> Azienda </td><td> Numero di catalogo </td><td> Commenti </td></tr><tr><td> RPMI 1640 </td><td> Invitrogen </td><td> 11875-093 </td><td> Media dipende dalla linea cellulare ospite. La linea cellulare ricevente ottimale deve essere determinato dall&#39;utente. </td></tr><tr><td> DMEM/F-12 </td><td> Invitrogen </td><td> 11320-033 </td><td> Media dipende dalla linea cellulare ricevente. La linea cellulare ricevente ottimale deve essere determinato dall&#39;utente. </td></tr><tr><td> PBS </td><td> Invitrogen </td><td> 14190-250 </td><td></td></tr><tr><td> Metafectene </td><td> Biontex </td><td> T020-1.0 </td><td> Reagenti di trasfezione altri potrebbero funzionare bene, ma non sono stati testati con il nostro protocollo. </td></tr><tr><td> Ni-NTA agarosio </td><td> Qiagen </td><td> 30210 &lt;/ Td&gt; <td> Gli esperimenti sono stati fatti con Ni_NTA agarosio da Qiagen, altri fornitori dovrebbero funzionare bene. </td></tr><tr><td> DNasi I </td><td> Roche </td><td> 04716728001 </td><td> Non vi è alcuna necessità di DNasi RNasi libero nel processo di purificazione aggresomes. </td></tr><tr><td> Saccarosio </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> S0389 </td><td></td></tr><tr><td> Opti-MEM </td><td> Invitrogen </td><td> 31985-062 </td><td> Terreno privo di siero funziona così </td></tr><tr><td> Penicillina / streptomicina </td><td> Invitrogen </td><td> 15140122 </td><td> Supplemento per SH-SY5Y e NLF medie </td></tr><tr><td> Non-essenziale-aminoacidi (NEAA) </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> M7145 </td><td> Supplemento per SH-SY5Y medio </td></tr><tr><td> Trypan Blue 0,4% </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> T8154 </td><td> Reagente tossico </td></tr><tr><td> DyLight 594 Maleimide </td><td> Thermo Fisher Scientific- </td><td> 46608 </td><td> Ridotto colorante reattivo cisteina per formare legami stabili tioetere. Disponibile anche in altri colori. </td></tr><tr><td> Prolungare oro con DAPI </td><td> Invitrogen </td><td> P36935 </td><td> Questo mezzo di montaggio liquido antifade ha dato risultati superiori nelle nostre mani. </td></tr><tr><td> Inibitore della proteasi cocktail </td><td> Roche </td><td> 11873580001 </td><td> Sciogliere 1 tavolo in 500 microlitri H 2 O per soluzione 100X. </td></tr><tr><td> Sintetico a-sinucleina </td><td> Sigma </td><td> S7820 </td><td> Ripiega come descritto nel testo. </td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> Tabella di reagenti specifici. </td></tr><tr><td> Precellys 24 </td><td> Bertin Technologies </td><td> 03119.200.RD000 </td><td> Non abbiamo testato altri omogenea meccanicanizers diversi da questo. Altro metodo di omogeneizzazione detersivi potrebbe funzionare altrettanto bene, ma non sono stati testati per questo protocollo. </td></tr><tr><td> 5301 Concentrator (SpeedVac) </td><td> Eppendorf </td><td> 5301 000.210 </td><td> Necessaria solo se proteina deve essere concentrato. </td></tr><tr><td> LSM 510 e AxioVision Apotome2 </td><td> Zeiss </td><td> Vedi catalogo produttori </td><td> Entrambi i microscopi porto la capacità di eseguire Z-stack immagini. Questo è un prerequisito per la valutazione solida e seria di eventi invasione. </td></tr><tr><td> Coltura cellulare materiale plastico </td><td> Nunc </td><td> 10 piatti cm # 172958, piastre da 24 pozzetti # 142475 </td><td> L&#39;uso di diverse materie plastiche possa influenzare l&#39;interazione di proteine ​​ricombinanti o aggresomes e le superfici di plastica. Non abbiamo testato materiali diversi da quelli qui descritti. </td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> Tabella di materiale e attrezzature specifiche. </td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td><table border="1"><tbody><tr><td> Numero </td><td> Buffer nome </td><td> contenuto </td><td> Commenti </td></tr><tr><td> 1. </td><td> Crescita media batterica </td><td> 16 g / l Bacto Tryptone, 10 g / l Bacto estratto di lievito, 5 g / l NaCl, 5 mM-arginina-HCl, 5 mM MgSO4, 100 pg / ml carbencillin, 35 mg / ml di cloramfenicolo </td><td> Crescere batteri di OD 600: 0,6-0,8 indurre l&#39;espressione con 1 mM IPTG. </td></tr><tr><td> 2. </td><td> Risospensione tampone batterica </td><td> 50 mM Tris-HCl pH 8,0, 5 mM EDTA, 2 mM di PMSF, 1% TX-100, 250 ug / ml lisozima, 20 mM MgCl 2 e 400 U/50 ml DNasi I </td><td> Resupend pellet batterico da 1 L ovecultura rnight in 50 ml di tampone di risospensione. </td></tr><tr><td> 3. </td><td> Proteine ​​estrazione del buffer </td><td> 50 mM Tris pH 8,0, 5 mM di imidazolo, 500 mM NaCl, urea 8 M e 10 mM b-ME </td><td></td></tr><tr><td> 4. </td><td> Ni-NTA colonna di tampone di lavaggio </td><td> 50 mM Tris pH 8,0, 5 mM di imidazolo, 500 mM NaCl, urea 8 M e 10 mM b-ME, 12 mM imidazolo </td><td> Tampone di estrazione modificato con 12 mM imidazolo aggiunto. </td></tr><tr><td> 5. </td><td> Ni-NTA colonna di tampone di eluizione </td><td> 50 mM Tris, 500 mM NaCl, 300 mM imidazolo, 8 M urea, 1 mM PMSF, 5 mM EDTA e 10 mM b-ME </td><td> Il tampone di eluizione contiene 10 mm B-ME, che è dializzato in seguito. </td></tr><tr><td> 6. </td><td> PBS </td><td> 8 g / l NaCl, 0,2 g / l KCl, 1,44 g / l Na 2 HPO 4, 0,24 g / l KH 2 PO 4, regolare a pH 7,4 </td><td></td></tr><tr><td>7. </td><td> Etichettatura del buffer </td><td> PBS contenente 5 mM TCEP </td><td></td></tr><tr><td colspan="4"> Tabella ricette. </td></tr></tbody></table></td></tr></tbody></table>

generazione, purificazione e caratterizzazione di specie disc1 cell-invasive protein

Generation, Purification, and Characterization of Cell-invasive DISC1 Protein Species

Aggregazione proteica è visto come una caratteristica generale croniche, condizioni degenerative del cervello, come, per esempio, nelle malattie neurodegenerative malattia di Alzheimer (Ap, tau), morbo di Parkinson (α-sinucleina), malattia di Huntington (polyglutamine, huntingtina), e altri. L&#39;aggregazione delle proteine ​​è pensato per verificarsi a causa di proteostasis disturbato, cioè lo squilibrio tra il sorgere e degradazione delle proteine ​​mal ripiegate. Da notare che le stesse proteine ​​si trovano aggregati in forme sporadiche di queste malattie che sono mutante in rare varianti di forme familiari. La schizofrenia è una malattia cronica progressiva del cervello che in molti casi va di pari passo con un deficit cognitivo permanente e irreversibile. In un approccio del gene candidato, abbiamo studiato se turbativa-in-1 schizofrenia (DISC1), un gene clonato in una famiglia scozzese con concatenamento a cronica malattia mentale 1, 2, potrebbe essere trovato come aggregati insolubili in brain di casi sporadici di schizofrenia 3. Utilizzando il CC SMRI, abbiamo identificato in circa il 20% dei casi con CMD, ma non controlli normali o in pazienti con malattie neurodegenerative sarcosile insolubile immunoreattività DISC1 dopo frazionamento biochimica. Successivi studi in vitro hanno rivelato che la propensione aggregazione di DISC1 stata influenzata dalla malattia associata polimorfismo S704C 4, e che DISC1 aggresomes generati in vitro cellule erano invasivo 5, simile a quello che era stato mostrato per Ap 6, tau 7-9, α -sinucleina 10, polyglutamine 11, o SOD1 aggregati 12. Questi risultati ci hanno spinto a proporre che almeno un sottoinsieme di casi con CMD, quelli con DISC1 aggregato potrebbe essere disordini conformazionali proteiche. Qui si descrive il modo in cui generare DISC1 aggresomes in cellule di mammifero, purificarle su un gradiente di saccarosio e li usa per cellula-invasività studies. Allo stesso modo, si descrive il modo in cui generare un esclusivo multimerico C-terminale DISC1 frammento, etichetta e purificarlo per gli studi di invasività delle cellule. Utilizzando i multimeri ricombinanti di DISC1 otteniamo l&#39;invasività delle cellule simili come per una simile etichetta sintetico α-sinucleina frammento. Abbiamo anche dimostrato che questo frammento è ripreso in vivo quando stereotassica iniettato nel cervello di animali recipienti.

Invasione La generazione, la purificazione e la cellula del intracellulari, aggresomes citoplasmatici pieno di proteine ​​DISC1 lunghezza da colture cellulari e di una etichetta, multimerico DISC1 frammento di proteina ricombinante in<em&gt; E. coli</em&gt; Sono descritti. Invasività cella è indicato per cellule riceventi in coltura cellulare e per i neuroni<em&gt; In vivo</em&gt; Dopo l&#39;inoculazione del cervello stereotactical.

Generazione, purificazione e caratterizzazione di specie DISC1 Cell-invasive Protein

L'aggregazione proteica è considerata un tratto distintivo generale di condizioni cerebrali degenerative e croniche come, ad esempio, nelle malattie neurodegenerative quali la malattia di Alzheimer (Aβ, tau), la malattia di Parkinson (α-sinucleina), la malattia di Huntington (poliglutammina, huntingtina) e altre. Si ritiene che l'aggregazione proteica avvenga a causa di un'alterazione della proteostasi, ovvero dello sbilanciamento tra la sintesi e la degradazione di proteine mal ripiegate. È degno di nota che le stesse proteine risultino aggregate nelle forme sporadiche di tali malattie e mutate in rare varianti di forme familiari. La schizofrenia è una condizione cerebrale cronica e progressiva che in molti casi è accompagnata da un deficit cognitivo permanente e irreversibile. Attraverso un approccio basato su geni candidati, abbiamo indagato se Disrupted-in-schizophrenia 1 (DISC1), un gene clonato in una famiglia scozzese con legame con malattie mentali croniche, potesse essere riscontrato come aggregati insolubili nel cervello di casi sporadici di schizofrenia. Utilizzando il SMRI CC, abbiamo identificato in circa il 20% dei casi con CMD, ma non nei controlli normali o nei pazienti con malattie neurodegenerative, l'immunoreattività di DISC1 insolubile in sarkosyl dopo frazionamento biochimico. Studi successivi in vitro hanno rivelato che la propensione all'aggregazione di DISC1 fosse influenzata dal polimorfismo S704C associato alla malattia e che gli aggresomi di DISC1 generati in vitro fossero cellulo-invasivi, similmente a quanto dimostrato per gli aggregati di Aβ, tau, α-sinucleina, poliglutammina o SOD1. Questi risultati ci hanno spinto a proporre che almeno un sottogruppo di casi con CMD, ovvero quelli con DISC1 aggregato, possa rientrare nei disturbi conformazionali delle proteine. In questo lavoro descriviamo come generare aggresomi di DISC1 in cellule di mammifero, purificarli su un gradiente di saccarosio e utilizzarli per studi di cellulo-invasività. Analogamente, descriviamo come generare un frammento C-terminale di DISC1 esclusivamente multimerico, marcarlo e purificarlo per studi di cellulo-invasività. Utilizzando i multimeri ricombinanti di DISC1, otteniamo una cellulo-invasività simile a quella di un frammento sintetico di α-sinucleina marcato analogamente. Dimostriamo inoltre che tale frammento viene captato in vivo quando iniettato stereotassicamente nel cervello di animali riceventi.

L'obiettivo generale delle seguenti procedure è generare dischi purificati. Uno aggregato in grado di invadere le cellule riceventi. Verranno dimostrati due metodi diversi per raggiungere questo obiettivo, con il primo metodo.La proteina fluorescente disc uno che forma l'asoma è sovraespressa nelle cellule donatrici umane di neuroblastoma NLF. Le cellule vengono quindi lavate con PBS, raccolte e lisate senza l'uso di detergenti. Il DNA viene digerito e le zone di agarosio vengono purificate mediante un sistema a gradiente di saccarosio.Agrios purificati con questo metodo presentano una bassa efficienza di invasione cellulare. L'approccio alternativo consiste nell'overesprimere gli amminoacidi da 5 98 a 7 85 della proteina ricombinante disc uno in e coli. Il frammento proteico viene quindi marcato con DITE 5 94, dializzato e purificato mediante una matrice NI NTA, che rimuove qualsiasi residuo di colorante non legato e il disc multimerico.I frammenti generati con questo metodo presentano un'elevata efficienza di invasione cellulare per valutare l'invasione delle cellule ospiti. Sia il disco purificato della proteina fluorescente, i risomi, sia il disco ricombinante marcato. Un frammento viene incubato con le cellule riceventi di interesse.Viene quindi aggiunto il blu trian per eliminare la fluorescenza extracellulare e l'invasione viene visualizzata mediante microscopia confocale. Finora, l'aggregazione proteica non è stata riconosciuta come una caratteristica delle malattie mentali croniche come la schizofrenia. Dove la proteina interrotta nella schizofrenia uno è un fattore di invasività cellulare, l'aggregazione proteica rappresenta una caratteristica distintiva delle malattie da alterazione conformazionale delle proteine.Qui mostriamo con due metodi che gli aggregati proteici del disco uno sono invasivi per le cellule e che quindi i disturbi legati al disco uno o le neuropatie da disco uno sono malattie conformazionali delle proteine. I due metodi sono, in primo luogo, la purificazione del disco completo, un ASOS, da linee cellulari di neuroblastoma e, in secondo luogo, l'espressione di un frammento multimerico del dominio C-terminale del disco uno in e coli, nonché la purificazione e la marcatura con un colorante fluorescente.Sebbene il primo metodo porti solo a un'invasione cellulare scarsamente efficiente dello 0,3% delle cellule che incorporano i microsomi purificati, il frammento proteico ricombinante pur infetta fino al 20% delle cellule esposte. I metodi qui descritti dovrebbero essere trasferibili ad altre proteine per le quali la formazione dell'acrosoma o l'assemblaggio multimerico siano stati dimostrati in modo convincente. In ciascuna delle 10 piastre da 10 centimetri.Seedinare 1,5 volte 10 alla sesta cellule di neuroblastoma umano e cellule LF in mezzo RPMI 1640 integrato e far crescere per tutta la notte. Il giorno successivo, le cellule dovrebbero essere confluenti al 70-80%. Etichettare cinque piastre per la trasfezione con PC DNA 3.1 MRFP e disc umano completo etichettato con EGFP e altre cinque piastre per la trasfezione con plasmide EGFP da solo. Per ogni piastra da 10 centimetri, combinare 15 microgrammi di DNA plasmidico, 30 microlitri di metilene tetrafluorato e 750 microlitri.Opti MEM in un tubo microcentrifuga e mescolare aspirando e dispensando con una pipetta, incubare a temperatura ambiente per 20 minuti. Quindi, per trasfettare le cellule, aggiungere goccia a goccia la soluzione del reagente di trasfezione del DNA alle cellule e incubare le cellule a 37 gradi Celsius con 5% CO₂. Dopo 48 ore dalla trasfezione, monitorare l'espressione della proteina fluorescente MRFP a lunghezza intera Disc uno e confermare la formazione di agrozone mediante microscopia a fluorescenza. Alcune cellule ospitano inclusioni massicce di proteina fluorescente come mostrato in questo caso.Questo protocollo combina un metodo per purificare i corpi di Lewy dal tessuto cerebrale e il protocollo per isolare aggregati più grandi o agro zone, poiché i metodi già esistenti si basano sull'uso di detergenti, ed è fondamentale isolare proteine prive di detergenti per l'utilizzo in saggi di invasività cellulare. Successivamente, aspirare il mezzo di lavaggio con PBS e aggiungere 400 microlitri di PBS contenente un cocktail di inibitori della proteasi. Quindi raschiare le cellule e aggiungere un millilitro di sospensione cellulare e 10 sfere ceramiche in un tubo di lisi da due millilitri.Lisare le cellule utilizzando tre impulsi di 62° su un omogeneizzatore pre-cell lyse 24. La forza meccanica del processo può aumentare la temperatura all'interno del campione a oltre 37 gradi Celsius. Pertanto, si deve fare attenzione a raffreddare il campione sul ghiaccio. Dopo la procedura di lisi, una volta raffreddate le cellule sul ghiaccio, aggiungere cloruro di magnesio 10 millimolare e 40 unità per millilitro di DNAA e incubare per 60 minuti a 37 gradi Celsius con agitazione.Preparare 10 millilitri ciascuno di saccarosio all'80%, al 50% e al 20% peso/volume in PBS. Successivamente, in un tubo conico da 15 millilitri, preparare il gradiente di saccarosio iniziando con due millilitri di saccarosio all'80%, seguiti da due millilitri al 50% e da due millilitri al 20%. Versare il gradiente lentamente e fare attenzione a non disturbare gli strati già versati.Successivamente, stratificare il lisato digerito sulla parte superiore del gradiente e centrifugare per 15 minuti a 1000 ×g a quattro gradi Celsius. Con l'interruzione, raccogliere con attenzione l'interfaccia tra il 50 e l'80% dello strato di saccarosio mediante pipetta e mescolare con cinque volumi di un tubo conico da 15 millilitri; centrifugare per 15 minuti a 1000 ×g a quattro gradi Celsius. Rimuovere con cura il soprannatante e conservare il pellet contenente la zona agri.Ripetere il lavaggio altre due volte in questa interfaccia. Le agro zone sono fluorescenti e possono essere visualizzate al microscopio sotto luce UV dopo l'ultimo lavaggio; scartare il soprannatante e risospendere il pellet in 250-500 microlitri di PBS. Questo pellet contiene le agro zone purificate.Aggiungere 10 microlitri di disco MRFP, una sospensione asoma, in ciascun pozzetto di una piastra a 24 pozzetti contenente cellule di neuroblastoma umano SHSY-5Y. Esprimere costitutivamente il disco GFP solubile con un'estremità C legata a coprislip di vetro sterili e incubare per 48-72 ore; al termine dell'incubazione, lavare le cellule tre volte con PBS e bloccare la fluorescenza extracellulare con blu di trian allo 0,04% per cinque minuti.Quindi lavare con PBS per rimuovere il trian blu. Successivamente, posizionare la piastra sul ghiaccio e aggiungere PFA al 4% in PBS per 10 minuti per fissare le cellule. Poi eseguire un lavaggio con acqua sterile e montare i coverslip su vetrini utilizzando il mezzo di montaggio Prolong Gold con DPI.Confermare l'assunzione nell'invasione in modo esogeno. Applicare le zone di aggregazione mediante codistribuzione con le proteine reclutate espresse dalle cellule riceventi in immagini Zack. Questo Zack comprende circa sei micrometri di profondità.24 immagini acquisite a intervalli di 200 nanometri. La fluorescenza del disco MRFP di una zona agri mostrata in rosso recluta il terminale citosolico GFPC del disco. Un frammento mostrato in verde indica colocalizzazione di colore giallo, dimostrando che le zone agri sono entrate nel citosol del ricevente e hanno reclutato la proteina del disco uno precedentemente solubile.In questa parte del protocollo, il disco umano uno verrà etichettato con DITE 5 94. Questo D consente il monitoraggio diretto della proteina ricombinante senza la necessità di ulteriori colorazioni immunoistochimiche. Iniziare liberando la proteina preparata come descritto nel documento allegato dal beam mercaptoetanolo, dializzandola tre volte in due litri di PBS a una diluizione di uno a 2000.Etichettare successivamente un disco da un milligrammo con DITE 5 94 IDE, sciogliere un milligrammo per millilitro di proteina in PBS e aggiungere TCEP a 5 millimolari per recuperare i gruppi SH liberi; aggiungere 20 microlitri del colorante disciolto in DMF alla reazione e incubare per due ore a temperatura ambiente. Utilizzando un cassetto di dialisi SLI con cutoff di peso molecolare di 10.000 Daltons, dializzare la proteina tre volte in PBS in un rapporto di 1 a 2000, per due ore ogni volta. Successivamente, per aumentare ulteriormente la purezza della proteina etichettata.Viene eseguita una purificazione per affinità basata su un marcatore his su una colonna NI NTA. Lavare un millilitro di matrice NI NTA con 10 millilitri di PBS, quindi applicare alla colonna la proteina dializzata marcata e farla passare attraverso la colonna.Gradualmente la soluzione perderà parte del suo colore blu a causa del legame della proteina alla matrice NTA; il colorante libero non marcato rimarrà nel flusso passante. Una volta che la soluzione proteica è entrata nella colonna, lavare la colonna tre volte con 20 millilitri di PBS per eluire la proteina; aggiungere quindi due millilitri di PBS contenente 500 millimolari di ole alla colonna.Impostare la valvola su velocità ridotta ed eluire goccia a goccia, monitorando la banda colorata sulla colonna N NI NTA. Per essere chiarito, questa frazione colorata dell'eluito contiene una proteina ricombinante marcata; trasferire l'EIT in una cassetta per dialisi SLI e dializzare l'EIT tre volte in NAPI 10 millimolare, con un rapporto di diluizione di 1 a 2000, per due ore ciascuna in due litri. Dopo la dialisi, spingere l'EIT attraverso un filtro sterile da siringa da 0,45 micrometri, quindi suddividere in aliquote di 100 microlitri per cinque volte e congelare rapidamente in azoto liquido.La quantità totale di proteina deve essere compresa tra 0,5 e un microgrammo per millilitro in ogni aliquota di 100 microlitri. Per valutare l'invasività della proteina, aggiungere del mezzo contenente da cinque a 10 microgrammi per millilitro della proteina ricombinante disc marcata a ciascun pozzetto di una piastra a 24 pozzetti contenente cellule di neuroblastoma umano SH-SY5Y riceventi, costitutivamente esprimenti il marcatore GFP solubile al termine C di disc su coprioggetti di vetro sterili, e incubare per 48-72 ore.Spegnere la fluorescenza extracellulare, fissare e montare le cellule come fatto per le cellule trattate con agri-zona, confermando l'invasione della proteina ricombinante esogenamente applicata mediante Zack Imaging. Quando la proteina marcata viene internalizzata, viene rilevata all'interno del perimetro delle cellule riceventi nelle immagini ottenute mediante microscopia confocale. Questo Zack comprende una profondità di circa cinque micrometri in 24 passi di 220 nanometri.Qui, il frammento ricombinante del dominio uno del disco, da 598 a 785, mostrato in rosso, viene internalizzato da cellule riceventi che esprimono la forma solubile del dominio uno del disco marcata con GFP all'estremità C-terminale, mostrata in verde, per determinare l'invasività della proteina disco uno. Aggregati di acrosomi costituiti da disco uno completo marcato con MRFP sono stati purificati da cellule NLF e applicati su cellule riceventi SH-SY5Y come descritto in questa immagine. L'acrosoma di disco uno marcato con A-M-R-F-P ha invaso una cellula di neuroblastoma umano SH-SY5Y che esprime la forma solubile di disco uno marcata con GFP all'estremità C-terminale.Inoltre, il disco uno asomo marcatto con MRFP è stato in grado di reclutare il disco uno solubile marcato con GFP in aggregati insolubili per determinare l'invasività; il disco uno ricombinante etichettato con DIA light è stato applicato a cellule di neuroblastoma SH-SY5Y che esprimono disco uno solubile marcato con GFP, come mostrato qui. La proteina ricombinante disco uno, mostrata in rosso, ha invaso la cellula ricevente; i puntini gialli indicano il reclutamento del disco uno solubile marcato con GFP all'estremità C-terminale in aggregati. Il disco uno ricombinante espresso e purificato da E. coli si è dimostrato altresì invasivo per le cellule neuronali in vivo, quando la proteina multimerica è stata iniettata stereotassicamente nella corteccia prefrontale mediale di un ratto. L'immagine di Zack conferma la presenza della proteina ricombinante disco uno nei neuroni corticali del ratto, evidenziata mediante colorazione con un anticorpo contro i nuclei neuronali.Abbiamo appena illustrato due metodi per generare aggregati della proteina disc uno allo scopo di studiare l'invasione cellulare. Utilizzando uno di questi metodi, possiamo analizzare gli effetti cellulari derivanti dall'assorbimento degli aggregati di disc uno, evitando le potenziali variabili disturbanti legate all'espressione genica ricombinante indotta dalla trasfezione di DNA estraneo. Queste tecniche possono essere applicate per indagare gli effetti biologici della patologia proteica di disc uno in vitro nelle cellule, nonché in vivo mediante inoculazione intracerebrale o altre vie di somministrazione in modelli animali.Siamo certi che queste tecniche potranno essere trasferite anche ad altri aggregati proteici, eventualmente con lievi modifiche al protocollo adottato per ciascuna proteina specifica. Quando si esegue questa procedura, assicurarsi di dedicare tempo a un'analisi accurata delle immagini di microscopia confocale.

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lesioni al fegato sono accompagnate da espansione di cellule progenitrici che rappresenta una popolazione cellulare eterogenea. Classificazione Novel di questo compartimento cellulare consente di distintivo più sottoinsiemi. Il metodo qui descritto illustra l'analisi citofluorimetrica ed elevato isolamento purezza vari sottogruppi che possono essere utilizzati per ulteriori analisi.

L&#39;isolamento e arricchimento di fegato progenitrici sottoinsiemi identificati da un marcatore combinazione romanzo di superficie

I processi che governano l'invasione della vescica cancro rappresentano opportunità di biomarcatore e sviluppo terapeutico. Qui vi presentiamo un modello di invasione del cancro della vescica che incorpora 3-d cultura di sferoidi di tumore, time-lapse imaging e microscopia confocale. Questa tecnica è utile per definire le caratteristiche del processo invasivo e per lo screening di agenti terapeutici.

Sistema di coltura cellulare 3D per studiare l'invasione e la valutazione terapeutica nel cancro della vescica

Dictyostelium discoideum è un organismo modello popolare per studiare i complessi processi cellulari come la migrazione cellulare, endocitosi e sviluppo. L'utilità dell'organismo è dipenda sulla fattibilità di manipolazione genetica. Qui, presentiamo metodi per transfect Dictyostelium discoideum cellule che superare i limiti esistenti delle cellule di coltura in terreno liquido.

Ingegneria genetica di Dictyostelium discoideum cellule basata sulla selezione e crescita sui batteri

Questo articolo presenta un protocollo di isolamento della membrana plasmatica su piccola scala per la caratterizzazione della proteina Cdr1 della Candida albicans ABC (ATP-binding cassette), sovraespressa in Saccharomyces cerevisiae. Un doppio tag mGFPHis C-terminale scisso con un linker a 16 residui tra Cdr1 e il tag è stato progettato per facilitare la purificazione e lo screening detergente di Cdr1.

Preparazione della membrana plasmatica su piccola scala per l'analisi di Candida albicans Cdr1-mGFPHis

Descriviamo un approccio per rilevare e catturare sottopopolazioni cellulari invasive in tempo reale. Il progetto sperimentale utilizza l'analisi cellulare in tempo reale monitorando i cambiamenti nell'impedenza elettrica delle cellule. Il cancro invasivo, le cellule immunitarie, endoteliali o stromali nei tessuti complessi possono essere catturati e l'impatto delle co-colture può essere valutato.

Rilevamento e acquisizione in tempo reale di sottopopolazioni cellulari invasive da co-colture

Impara a generare e purificare aggresomi di proteina DISC1 per studiare l'invasione cellulare in colture di neuroblastoma umano. Questi metodi permettono di analizzare il ruolo di DISC1 nei disturbi da conformazione proteica.

Generazione, purificazione e caratterizzazione di specie DISC1 Cell-invasive Protein

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