細胞星状に7つのステップ

C57BL / 6マウスは〜20週齢以上で使用してください。 25〜30グラムの重さ、雄マウスの使用が推奨されています。星状細胞の収量は、細胞の分離を星状に先立って2ヶ月のためにマウスにビタミンAに富む食事を供給することにより増加することができます。 Balb / cマウスからの肝星細胞の収率がかなり高いのに対し、約2 × 10 ⁵肝星細胞は、一つC57BL / 6マウスの肝臓から精製することができる。以下のプロトコルは、5匹のマウスに調整されます。動物のケアと実験が承認された動物実験に基づき行われ、委員会のプロトコルを使用していた。

（1）マウスの肝臓の in situ灌流の消化酵素で

1. 37℃の水浴中でSC1バッファーと酵素の灌流液を温める。
2. 蠕動ポンプのシリコンチューブにセット翼の注入をマウントします。
3. 肝臓の現場灌流のために使用される流量である6.5ml/min、の層流を得るためにPBSでポンプのキャリブレーション。 SC1溶液をシリコンチューブを平衡化する。
4. ケタミン（90 mg / kg体重）及びキシラジン（10 mg / kg）のソリューションと深いnarcotizationを確保するために反射の消失のためのテストの腹腔内注射によってマウスを麻酔。
5. 適当な塩基での仰臥位でマウスを修正。
6. 腹部皮膚に縦切開を行い、腹膜を露出させるハサミとピンセットを使用してください。
7. 慎重に門脈を露出させるために腹膜を開き、腹腔の動物の左側に腸を動かす。
8. 門脈に設定された注入のカニューレを挿入します。このステップでは、実体顕微鏡の使用が推奨されます。
9. 30ミリリットルSC1液と肝臓の灌流を開始します。フローの開始直後に下大静脈を開きます。肝臓の成功したフラッシュは肝臓の組織の色の消失によって示されます。
10. 30ミリリットルプロナーゼE溶液を用いて肝臓を灌流。成功した消化されると、肝臓の葉が膨張します、と小葉は、カプセルを介して異なる表示されます。
11. 30ミリリットルコラゲナーゼP溶液で肝臓を灌流。この時点で肝臓はその形を失い、弛緩と非晶質に見えるしている。
12. 慎重に横隔膜と周囲の臓器から肝臓を分離し、氷上で70ミリリットルSC2ソリューションに格納します。
13. 追加のマウスのための手順を繰り返します。

2。マウスの肝臓の in vitro消化において

それ以後のすべての作業手順は、層流フードで無菌条件下で行う必要があります。

1. 良く切れるはさみを使用して約2x2x2mm ³の部分に肝臓を切り取ります。
2. プロナーゼE -コラゲナーゼP溶液50mlのある肝臓の作品を含む70ミリリットルSC2のサスペンションを組み合わせるとDNase I溶液の1mlを加える。
3. 37℃20分のための肝臓を消化° Cで撹拌しながら。

3。密度勾配遠心

1. 6 50ミリリットルのファルコンチューブに70μmセルストレーナーを通して細胞懸濁液を濾過し、SC2バッファーで50ミリリットルまで追加。 600グラムと4℃で10分間遠心
2. 注意深く上清の40ミリリットルを吸引し、各チューブに150μLDNase I溶液を追加し、細胞を懸濁します。
3. 4 50ミリリットルファルコンチューブにプール細胞懸濁液をし、600グラムと4℃で10分間GBSS - B、遠心機で洗う℃に
4. 慎重にペレットと各チューブへ追加150μLDNase I溶液を乱すことなく、可能な限り上清のを吸引除去する。チューブあたり10ミリリットルGBSS - Bの細胞ペレットを再懸濁します。
5. プールは2 50ミリリットルファルコンチューブに細胞や試験管当たり36ミリリットルの合計体積にGBSS - Bを追加します。各チューブに14ミリリットルナイコデンツのソリューションを加え、よく混ぜる。
6. 合計で10本で、その結果、一12ミリリットル勾配遠心チューブに細胞懸濁液10mlのを転送する。優しくチューブあたり1.5ミリリットルGBSS - Bで細胞懸濁液を重ねます。
7. 1500グラムと4℃で15分のための勾配を遠心° Cブレーキなし。星状細胞は白い輪のような相間で発見されているのに対し、その後、肝細胞がチューブの底にペレット化されます。
8. 慎重に星状細胞を含む中間相を収穫し、GBSS - Bでそれらを洗って、10分間遠心するを600グラムと4℃
9. 上清を吸引除去し、10％熱不活性化FBS、1％ペニシリン/ストレプトマイシン、2mMのL -グルタミン、1mMのピルビン酸ナトリウム、及び10mMのHEPESを添加した20ミリリットルDMEMで細胞を懸濁します。 2 × 10 ⁴細胞/ cm ²の濃度で組織培養フラスコに細胞を移す。 37℃、5％CO ₂で細胞をインキュベートする。
10. とすぐに肝星細胞は死細胞と細胞残渣を洗い流すために（約2時間の準備の後に）接着なので、メディアを変更します。
11. 翌日、星状細胞でsは核周囲ビタミンAを格納する脂質小胞との特徴的な星型の形態を開発する必要があります。
12. その後の実験では、肝星細胞は容易にそのようなAccutase、などなど、軽度の酵素的ソリューションを使用して、非コーティングプラスチック表面から切り離すことができます。

4。代表的な結果：

提供するプロトコルを使用して肝星細胞の調製後、孤立した個体群の純度は、3等星のような形としてこの細胞型の主な特性は、核周囲の脂質滴、およびグリア線維性酸性タンパク質（GFAPの発現を考慮してテストすることができます）。特徴的な細胞分離後の肝星細胞の2Hの外観だけでなく、in vitro培養の1日目及び3のための代表的な写真を図1に示されている。図2は、細胞の単離後3日間培養された肝星細胞におけるGFAPのための代表的な免疫蛍光染色を示す。肝星細胞は、in vitro培養時の筋線維芽細胞へと分化する。それらの活性化星細胞の特徴特徴は、α平滑筋アクチン（αSMA）の式です。図3は、in vitro培養の7日目に活性化星細胞のアスマとミオシンIIAのための免疫蛍光染色を示す。

図1肝星細胞の特徴的な形態。星状細胞は、提供されるプロトコルを使用してマウスの肝臓から単離された。画像は、星状細胞の細胞単離後2H（A、B）、ならびに1日目（C）とin vitro培養の3日目（D）上を表しています。肝星細胞は、核周辺部位での脂質小胞の高い量を示し、in vitro培養の最初の日（倍率200倍）の間に彼らの独特のアストラル様形態を獲得する。

図2肝星細胞は、特に肝臓でのGFAPを発現している。星細胞は、in vitro培養の3日目に単離され、immunofluorescently GFAP（赤）で染色した。細胞核は青色（ヘキスト染色）に示されている。

図3。肝星細胞が筋線維芽細胞に分化する。 C57BL / 6マウスから単離した肝星細胞は7日間培養した。その後、彼らは、チャンバースライドに移し、そしてアスマ（赤で表示）とミオシンIIA（緑で示される）のために染色した。細胞核はヘキスト（青色）で対比染色した。

表1。バッファと肝星細胞を分離するために必要な酵素のソリューション。すべてのバッファのpHは7.3から7.4に調整する必要があります。さらに、すべてのバッファの滅菌濾過することをお勧めします。特定の酵素活性に応じて使用される酵素の量を調整することが重要です。