ここでは、ゼブラフィッシュの性分化とメンテナンスの調査を容易にするであろう幼虫のゼブラフィッシュの生殖腺組織を単離するためのプロトコルを提示します。
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ここでは、ゼブラフィッシュの性分化とメンテナンスの調査を容易にするであろう幼虫のゼブラフィッシュの生殖腺組織を単離するためのプロトコルを提示します。
野生のゼブラフィッシュは、ZZ / ZWセックス決意システムを有するが、飼いならされたゼブラフィッシュは、性染色体を失っています。彼らは、ゲノム全体に分布するいくつかの遺伝子は、まとめて、個々の魚の性同一性を決定多遺伝子性別決意システムを利用します。現在、生殖腺の発達の調節に関与する遺伝子とその仕組みは、とらえどころのないまま。通常、生殖腺組織を分離することは、セックスの発生過程を調べるための最初のステップです。ここでは、ゼブラフィッシュの幼虫DPF 17 DPF(日受精後)と25からの性腺組織を分離するための手順を提示します。単離された生殖腺組織は、その後、形態学および遺伝子発現プロファイリングによって調べることができます。
野生のゼブラフィッシュ4染色体の主要な女性セックス行列は、1( すなわち 、共通の実験室株)を紛失したり、飼いならされたゼブラフィッシュに変更されます。代わりに、彼らは、温度、低酸素症、食品の可用性と人口密度などの環境要因を伴う多遺伝子のセックス決意システムを持っています。ゼブラフィッシュのセックス開発の詳細なメカニズムは完全には理解されていません。プライマリ性別決意信号(単数または複数)/何であるか、そのようなゼブラフィッシュ性別決意が発生した場合のように基本的な質問は、であり、遺伝子は、生殖腺の変換の最初のステップは、3 2 に答えされずに残って調節います。
ゼブラフィッシュのセックス、開発の過程では、いくつかの重要な段階では認識されています。開発の初期段階では、4 HPF(時間後に受精)始原生殖細胞(始原生殖細胞)仕様を受け、から出発して生殖隆起に移動および増殖。 PGC番号と生殖細胞と体細胞間の相互の相互作用は、生殖腺の分化4のために重要です。 13 DPF(日受精後)では、生殖腺は、未分化段階にあります。 17のDPFすることにより、生殖腺は、将来、女性と男性の両方における双方向性卵巣へと発....
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ゼブラフィッシュ実験は、復旦大学施設内動物管理使用委員会によって承認されました。ゼブラフィッシュは、標準的な手順20に従って上昇させて飼育しました。
1.準備
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生殖腺の解剖は、アブ・ストレイン幼虫のゼブラフィッシュで行われました。 図1は、17 DPF、25 DPFにおける幼虫のゼブラフィッシュの典型的な性腺組織を示しています。まず、皮膚や腹部の片側の筋肉は内臓を露出するように切断されます。臓器の質量を除去した後、一緒に生殖腺を有する水泳膀胱トランクに残ります。生殖腺は、水泳膀胱( 図1B 'の矢印)の腹側に取り付けました。 17のDPFでは、生殖腺は、双方向性卵巣段階にありました。単離された生殖腺は、左右の生殖腺を含有し( 図1C)、半透明でした。ほとんどの場合、それは、上皮組織とprotonephridium( 図1Cの矢印)に囲まれました。性腺DPF 25でしばしば脂肪組織( 図1D)で.......
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ゼブラフィッシュは、強力なモデルとなっており、広範囲の開発と疾患関連研究に使用されています。例えば、脳、心臓、生殖腺、腎臓などのアダルトゼブラフィッシュにおける臓器の単離のための方法は、ウェル23、24、25を文書化されています。小型及び幼虫のゼブラフィッシュにおける生殖組織の動的再造形に、生殖腺組織の単離は困難な作業です。幼虫の生殖腺26を検査するためにEGFPベースの細胞選別とレーザーマイクロダイセクション:これまでの研究では、全体の解剖トランク組織またはトランスジェニック脈を使用します。栽培中の第4染色体の改変は、家畜ゼブラフィッシュにおける性別決意謎を行います。ここで説明する私たちの方法は、性決定メカを探索するために役立つことができ、さらに形態学的および分子検査のために、比較的きれいで、早期の生殖腺の製剤を提供することができますanisms。
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著者は、彼らが競合する金融利害関係を持たないことを宣言します。
私たちは、魚のケアのためのCチャンに感謝します。この作品は、中国の国家自然科学基金(GPへ31171074、31371099と31571067)によって及び浦江タレントプロジェクト(GPへ09PJ1401900)によってサポートされていました。
....アクセスが制限されています。このコンテンツを表示するにはログインするか、トライアルを開始してください。
| 名前 | 会社 | カタログ番号 | コメント |
|---|---|---|---|
| 細胞培養皿 100 mm | コーニング | 430167 | 胚インキュベーション用 |
| 20x EM | 必要な1 Lの場合:17.5 g NaCl、0.75 g KCl、2.9 g CaCl·2H<サブ>2O;次に、0.41 gのKH2PO4、0.412 gのNa2HPO4無水および4.9 gのMgSO4·を追加します。7H2O. | ||
| 1x EM | 蒸留水で20x EMを希釈 | ||
| AGAROSE G-10 | 遺伝子 | 121985 | 2%寒天プレートの調製用 |
| Trizol 試薬 | Invitrogen | 15596-026 | RNA単離 |
| 用 メーターガラス | シェンボー | 250 ml | 2%寒天プレートの調製用 |
| 電子レンジ | Midea | M1-211A | AGAR |
| の加熱用ピンセット デュモン#5INOX | ワールド精密機器 | 解剖用 | |
| 500341 実体顕微鏡 | Motic | SMZ168 | 解剖用 |
| 純水装置 | ミリポア | ||
| リンガー' | Lの溶液が必要な場合:6.78 g NaCl、0.22 g KCl、0.26 g CaCl2、および1.19 gのHepesを追加します。pHを7.2に調整します。ろ過により滅菌し、オートクレーブ滅菌した透明なポリカーボネート容器に保管してください。 | ||
| トランスファーピペット | Samco | 202, 204 | |
| Metal bath | QiLinbeier | Model GL-150 | |
| Microscope | Leica | M205 FA | 顕微鏡写真用 |
| 遠心分離機 | Eppendorf | 5417R | |
| マイクロスケール RNA 単離キット | Ambion | AM1931 | 生殖腺組織からのRNA単離用 |
| Dnase I | Sigma | AMPD1-1KT | RNA溶液中のDNA消化用 |
| RevertAid First Strand cDNA Synthesis Kit | Thermo Scientific | #K1631 | First-strand cDNA合成用 |
| Rnase H | Thermo Scientific | #EN0202 | cDNA溶液中の残留RNAを消化します。 |
| SYBR Green Realtime PCR Master Mix | TOYOBO | QPK-201 | 本製品は、Taq DNAポリメラーゼベースのリアルタイムPCR用2倍マスターミックスで、SYBR Green Iとのインターカレーションアッセイに適用できます。 |
| 分光光度計 | Ne Drop | OD-2000+ | 全RNAの濃度の測定 |
| Mastercycler | Eppendorf | AG 22331 ハンブルク | 遺伝子発現プロファイリング |
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