豚モデルにおける閉胸圧力-容積ループを用いた連続収縮性評価のための固定体積切断アプローチ

サマリー

このプロトコルは、V₀ を固定し単一拍のEesを計算することで、負荷に依存しないLV収縮率を連続的に定量化する実行可能な胸部豚プロトコルを提供し、繰り返しのIVC閉塞を排除して血行動態的に脆弱で急性な実験における安全性と安定性を高めることを目的としています。

要約

収縮末期圧力-体積関係(ESPVR)は、左心室(LV)収縮力のゴールドスタンダードであり、負荷に依存しない記述子として広く認識されています。実際には、ESPVRはその傾斜(収縮末期エラスタンス、収縮状態の直接指標)と、ゼロ圧時の理論的LV容積(V₀)によって定義される直線として近似されることが多いです。 生体内では、ESPVRは古典的に、同時のLV圧-容積(PV)カテーテルモニタリングを伴う連続的な下腔静脈(IVC)閉塞から導出されます。しかし、心原性ショックなどの疾患状態では、必要な前負荷の枯渇が反射性頻拍リズムや一過性または持続的な血行動態の不安定性を引き起こし、実現可能性や解釈性を制限することがあります。したがって、血行動態的に脆弱な状態におけるイノトロピーの in vivo 評価方法が求められます。

このプロトコルは、安定した基線条件下で一度V₀を測定し、その後のLV PVループからの単一拍Ees推定のために固定したままにする実践的な実験モデルを記述することを目的としています。このアプローチは急性大型動物研究向けに詳細に段階的に提供されており、繰り返しのIVC閉塞なしに収縮力の連続的な連続評価を可能にします。豚の心原性ショックモデルでは、負荷に依存しない心筋機能の変化を信頼性高く追跡しつつ、前負荷減少による不整脈や血行動態の不安定性を回避しました。したがって、この手法は心室の形状が変化せず、収縮力が主にESPVRの切片ではなく傾きを調節する急性閉鎖胸部実験に適しています。それにもかかわらず、固定V₀仮定は意図的な系統誤差を導入する方法論的単純化であり、繰り返しのプリロード操作が非現実的または安全でない場合にのみ適用すべきです。構造の再構築、著しい左室拡張、または胸部圧力の顕著な変化が発生した場合は、V₀の再評価が必要です。全体として、このプロトコルは不安定な大型動物モデルにおける連続収縮性評価において、方法論的厳密さと実験の安全性および実用性のバランスを取る、実現可能かつ生理学的に妥当なアプローチを提供します。

概要

左心室収縮率(LV)とは、負荷条件に依存しない心筋が内在的に圧力を発生させる能力のことです。^1,2,3。これは心拍量、心拍出量、血圧の重要な決定要因です。したがって、急性心筋虚血を患うと、心臓は急速に収縮力を失うことがあります⁴。したがって、心筋収縮力の低下は急性心不全や心源性ショック(^{CS)を引き起こす}可能性があります5。心筋収縮力の低下は低血圧と不十分な臓器灌流を引き起こし、積極的な治療にもかかわらず高い死亡率(入院率30%–50%)をもたらします^5,6。一般的な医療療法には、ノルエピネフリン、ドブタミン、ミルリノンなどのイノロピクス系薬が用いられ、収縮力を高める一方で血管張力に直接影響を与えること^{もあります。収}縮力の評価は、新しい薬理学的治療法の調査、疾患の重症度評価、または実験モデルの運用において特に重要です。

LV駆出率やdP/dt(max)などの従来の指標は負荷依存であり、前後負荷の変化時に真の収縮状態を誤って表現することがあります。これは収縮末期弾力(Ees)のような負荷に依存しない収縮率指数の価値を強調しており、これらは心筋のパフォーマンスをより確実に追跡できます^。

したがって、収縮性を評価するin vivo法が開発されており、圧力-体積(PV)解析は^{実験研究で}ゴールドスタンダードとされています。EESを定量化する古典的なin vivoアプローチは、下静脈閉塞(IVC)を行って徐々にかつ一時的に前負荷を減少させることです。この前負荷減少中に同時に収縮末期血圧(ESP)と収縮末期容積(ESV)の点を記録することで、ESPVRの回帰線を適合させ、その傾きEesを決定し、その線のx切片はV₀(ゼロ圧力生成時の理論体積)として定義されます。しかし、割乳のような脆弱な状態では、短い下腔閉塞でも重度の低血圧、不整脈、あるいはすでに極めて低い心拍出量の状態で末端の灌流をさらに損なう可能性があり、実現可能性や解釈性を制限します。

本研究プロトコルでは、急性閉鎖胸部実験における従来のIVC閉塞法の実用的な代替案が提示されており、安定した基線条件下で単一のIVC閉塞を行い、体積軸切片V₀を決定する。この値はその後の単拍Ees推定において一定と仮定される。このアプローチは、急性イノトロピック変化が主にESPVR傾き(Ees)を変化させ、切片は^{ほぼ安定していること}を示す孤立した完全な動物実験の証拠に基づいて^いる。繰り返す閉塞を避けることで、不整脈や血行動態の不安定性を最小限に抑えつつ、LVの収縮率の正確かつ負荷に依存しない評価を維持できる。本プロトコルでは、過去の研究4,8,11,12,13,14,15,16の経験に基づき、入院ベースのPVカテーテルを用いた閉鎖胸部豚モデルのCSにこの戦略を適用しています。この固定切断アプローチは、安定した心室幾何学を持つ急性閉鎖胸部実験を想定していますが、変化するチャンバーサイズ、胸圧の変化、構造再構築の環境では適用が限られています。これらの実用的な制約は、特定の研究における方法の適合性を評価する際に考慮すべきです。従来の単一拍やモデルベースのアプローチとは異なり、このプロトコルは安定したベースライン条件下で経験的にV₀を決定し、実験全体を通じて適用することで、血行力学的に脆弱な大型動物モデルにおける連続的かつ負荷に依存しない収縮性評価において、より安全かつ実現可能な代替手段を提供します。

プロトコル

このプロトコルはデンマーク動物研究検査局(許可番号:2023–15–0201–01466、2023年6月19日発行)によって承認されています。約60kgの雌のデンマークランドレース豚が使用されました。試薬および使用機器は 材料表に記載されています。

1. 麻酔と人工呼吸

1. 豚には、25 mg/mLのチレタミン、25 mg/mLのゾラゼパム、2.5 mLのブトルファノール(10 mg/mL)、1.25 mLの獣医用ケタミノール(100 mg/mL)、6.25 mLの獣医用キシラジン(20 mg/mL)を含む麻酔混合物を筋肉内注射して前麻酔します。
   注:麻酔前の投与は、輸送中のストレス、侵害受容、カテコールアミンの放出を軽減します。
2. 動物を農場施設から研究施設へ輸送します。
3. 18〜20Gの静脈カテーテルを用いて、耳の縁に静脈内(I.V.)アクセスを確立します(図1)。適切なテープまたは石膏で点滴カテーテルを固定します。正しい位置を確保するために10 mLの生理食塩水で洗浄します。
   注意:カテーテルが正しく挿入 されていない 場合、生理食塩水洗浄後に皮下膨隆が現れることがあります。移位の場合に備え、反対側の耳にバックアップの点滴アクセスを設置することも検討してください。
4. 動脈酸素飽和度の早期モニタリングのためにパルス酸素測定センサーを取り付けてください。
   注意:酸素飽和度が90%未満の低酸素症の場合は、ノルキシアが回復するまで、豚の鼻先 にマスクを通して 100%酸素を投与してください。ステップ5に進む前に十分な酸素飽和度を確認してください。
5. 豚を手術台の上で仰向けに置きます。直接喉頭鏡検査を用いて内径7.5〜8.0mmの気管管挿管を行います。人工呼吸器に持続的な呼気性二酸化炭素が流れているのを確認し、正しい管の位置を確認します。気管内チューブのカフを膨らませ、チューブを鼻先に固定します。
6. 人工呼吸器の設定を調整し、以下の設定で陽圧換気を開始します。
   1. 圧力制御、ボリュームゲート式換気設定。
   2. 潮汐量8 mL/kg。
   3. 正の呼気終値5cmH200。
   4. 滴定により酸素のノルヘルオキシア(例:動脈酸素飽和度>94%)が誘導されました。
   5. 呼吸率をノルモカプニア(例:動脈_CO2 分圧4.5–5.5 kPa)に調整します。
7. プロポフォールを3.5〜4.5 mg/kg/h、フェンタニルを12.5〜15.5 μg/kg/hで使用し、点滴アクセスによる全身麻酔を開始し維持します。角膜および毛様体の反射が存在し、有害刺激への反応がないことから麻酔深度を評価します。注意:動物をいかなる場面でも放置しないでください。すべての実験スタッフが適切な教育を受け、麻酔深度の正確なモニタリングが可能であることを確認しましょう。
8. 3リード心電図(右前肢、左前肢、左後肢)を装着します。
9. 尿路カテーテルを膀胱に挿入し、外側の端をサンプリングバッグに接続します。
10. 直腸プローブを使って体温を測定してください。
    注:成体の豚の正常体温は38.5〜39.5°^C17です。低体温症は、低体温による血行動態や不整脈の変化を防ぐため、温め毛布などの能動的な加温装置を用いて修正する必要があります。

2. 超音波ガイドによる血管内アクセス

1. 超音波指導とセルディンガー法を用いて、以下の血管内アクセスを確立します。これらのアクセスにより、単一拍のEes評価が可能になります。
   1. 総頸動脈に8 Fr鞘を挿入します。
      注意:このシースはLVのPVカテーテルを挿入するために使用されます。
   2. 大腿静脈に12 Fr シースを挿入します。
      注意:このシースは下腔閉塞バルーンを導入するために使用されます。
2. 超音波誘導とセルディンガー法を用いて、以下の血管内アクセスを確立します。これらのアクセスにより血行動態モニタリングが可能になります。
   1. 大腿動脈に7 Frシースを挿入します。
      注意:このシースは侵襲的血圧測定に使用されます。侵襲性動脈血圧は四肢動脈など他の部位でも測定されることがあります。
   2. 外頸静脈に8 Fr鞘を挿入します。
      注:このシースは肺動脈カテーテルの挿入および肺動脈圧の評価に使用されます。
3. 望ましい疾患モデルに必要な血管内アクセスを確立します。この場合、以下の血管内アクセスが確立されます。
   1. ステップ1.1と同様に、反対側の総頸動脈に8Frシースを挿入します。このシースは冠動脈カテーテル治療および塞栓術に使用され、CSを誘発します。
      注:研究プロトコルに従って、さらなるアクセスを確立することができます。
4. 血管内鞘の正しい配置を確保するために、10mLの注射器で各鞘から血液を採取します。正しく配置された鞘は、吸引時や生理食塩水で流しても抵抗がありません。
5. すべての鞘を皮膚に縫合し、すべての鞘を関連するモニタリングシステムに接続してください。
   注意:鞘は血液凝固を防ぐために頻繁に洗浄する必要があります。あるいは、研究プロトコルによっては豚をヘパリン化することもあります。
6. メーカーの指示に従って圧力校正を行った後、^前述の 8(図1)通りにLV PVカテーテルを挿入します。

3. 左心室圧容カテーテルおよび下腔静脈バルーン挿入

1. PVカテーテル挿入前に、各動物ごとに血液抵抗率の校正を行います。
   1. 血液を0.5mLの低温バイアルに採取します。採血後すぐに校正プローブを使って血液抵抗率測定を行います。
2. 8フリル頸動脈鞘を通してLV PVカテーテルを挿入します。低線量の透視ガイド中、LV PVカテーテルのピグテールに沿って大動脈弁まで進みます。収縮期に大動脈弁を通過します。
   注意:LV PVカテーテルの進行中、いかなる時点で抵抗はなくなってはならない。
3. LV PVカテーテルの先端はできるだけLVの頂点に近い位置に置いてください。
4. 製造元のプロトコルに従い、記録された位相および大きさ信号に基づいてLV PVカテーテルの位置を最適化するために、適切な記録ボリュームセグメント数を選択してください。
   注意:カテーテルの位置はデータ収集に非常に重要です。位置は透視誘導で確認できます。ただし、位相値を使って正しい位置の確認も可能です。信号は平均値<10°で周期的な形状であるべきです。PVカテーテル挿入時には、正しいセグメントを選択してください。初期構成(セグメント1)では、電極1から4が活性化しています。この位置では、電極が大動脈弁から離れすぎているため、測定された体積が過小評価されることが多いです。セグメント2では電極1、2、4、5がアクティブです。心室の寸法によっては、この構成でも低容量信号を発生させることがあります。セグメント3に進む際には電極1、2、5、6が使用され、成豚では一般的に生理的体積と適切な形状のPVループが得られます。さらにセグメント4(電極1、2、6、7)に進むと、感知フィールドが心室長を超えて拡張され、小さな心臓では不正確な信号が生じる可能性があります。
5. IVCバルーンを12 Fr大腿静脈鞘を通して挿入し、透視で導かれて横隔膜レベルまでバルーンを前進させます。
   注:研究プロトコル開始前にこのレベルで血行動態を安定させるために実験を一時停止できます。異常な血行動態、換気、電解質値はこの段階で修正可能です。安定化期間1〜2時間で十分なことが多い^{です。13、14、15、16}。

4. ベースライン測定とV₀の決定

1. 健康なベースラインで、記載された機器に従い、製造元が説明したLV PVカテーテルを含むすべての機器の校正を行い、^{他の場所で}詳細に説明されています8。
   注意:圧力と容積の両方は、カテーテルがアドミタンス技術かコンダクタンス技術かに応じて校正されるべきです。圧力校正はカテーテル挿入前に行うべきです。要するに、校正は以下のステップから成ります。
   1. LV PVカテーテルの in vivo 挿入前に圧力校正を行います。
   2. 安定した洞調律を確保しましょう。
   3. 入院技術ベースのカテーテルを使用する場合は、肺動脈カテーテルから得られた一拍心量を用いて容積の校正を行います。
      注意:ベースライン体積校正スキャンは一時的な呼気末時無呼吸時に実施すべきです。
2. 基準値を取得するために、10〜15心周期の一時的な呼気末停止呼吸を行います。
   注意:呼気末の息止め後は、心拍数や血圧などの血行動態値や、動脈酸素飽和度や呼気末_CO2などの呼吸値が正常化するまで動物を回復させます。
3. V₀を決定するために、以下の手順を行います。
   1. もう一度呼気末の息止めを行い、数拍待ってからゆっくりとIVCバルーンを膨らませ、LV圧が50mmHg以下になるまで続けます。バルーンを素早く空気を抜き、換気を再開します。
      注意:この手技はLVの前負荷を徐々に減少させ、PVループは前負荷減少^1,2,3の間、進行的な左下シフトを示す必要があります(図2Aおよび図3A)。
   2. 動物が回復するまで、各下腔閉塞後は正常酸素飽和症、常常性炭血症、正常緊張が回復するまで呼吸止めを続けます。通常、この回復には2〜3分かかります。さらに2回の静脈閉塞を行います。洞調律を安定させてください。
      注意:時折、前負荷を減らすためにIVCバルーンを膨らませることで不整脈や心室収縮外が誘発され、血流が乱されてデータ解析が困難になることがあります。この場合は、IVCバルーンの膨張を遅くしてください。不整脈なしに3回の独立した閉塞を行うべきです。
   3. 3回の閉塞後は、追加のIVC閉塞は必要ありません。IVCバルーンカテーテルは抜去可能です。
4. LabChart 8 Proで内蔵のPVループモジュールを開きます。で 分析してみてください。 セレクト 閉塞。 プリロード削減中に逐次ループを手動で選択し、解析します。異所性ビートおよび隣接サイクルを除外します。ドロップダウンメニューから線形または二次適合を適用します。
   注:V₀ ベースライン測定直後、または事後データ解析時に計算されることがあります。プリロード削減中の各保持サイクルごとに、モジュールの標準定義を用いてESPとESVが識別されます。
   1. ソフトウェアの内蔵機能を用いて選択した心周期を解析します。10ループを段階的前負荷減少時に解析します。すべての心拍をスクリーニングし、異所性拍動やアーティファクトを手動で除外し、単調で滑らかに進行するループのみを保持します。希望する場合は、自動データクリーニング^{方法が説明}されています。
      注意:IVC閉塞中は左室が不整脈を起こしやすい。上心室または心室異所性拍動の場合は、これらの拍動を前後の心拍とともに除去すべきである(図2B)。さらに、心拍数に応じて、IVC閉塞はバロレセプター反射を引き起こし、イノトロピーに影響を与える可能性がある。
   2. 心拍が保持されている場合は、ソフトウェアの内蔵機能が収縮末期の圧力と体積を正しく識別しているか手動で確認してください。
   3. ESPVRのラインに当てはまります。
      注意:主に線形フィットしたESPVRラインは^1,2(図2A^{)を使用できます。}ただし、ESPVRのラインは曲線^1,19,20,21(図3)でもあります。ESPVRが目に見える曲線の場合は、ESPVRに認められた非線形フィット(例:^{ドロップダウンメニュー19、21、22})を使った二次回帰を適用します。LabChart 8 Proのような解析ソフトウェアでは複数のオプションが可能です。ESPVRが直線に沿って視覚的に見える場合は、線形最小二乗フィッティングを適用すべきです。曲率性が明らかな場合は二次フィッティングを用いることができます。注意:線形フィッティングと二次フィッティングの選択は、内蔵モジュールの客観的な適合度とESPVR形状の視覚的検査の両方に基づいて判断されるべきです。あらかじめ定められた決定規則を適用すべきであり、例えば、二次モデルが調整後のR²を線形適合と比較して ≥0.05 改善する場合(図4)²³ が好ましい場合があります。しかし、ループの形態や残差パターンの視覚的検査は、生理学的に妥当な曲率を確認するために常に実施されなければなりません。R²の小さな数値的改善が一貫した曲率性の視覚的証拠なしに済むからといって、非線形フィッティングの使用を正当化すべきではありません。
   4. フィッティングされたESPVR線(線形または曲線線)から_V0 をX軸との切片として計算します。
      注意:モデルの形状と適合度は記録されるべきです。ESPVRの凸性が顕著になると、線形フィットは高圧での真の延度を過小評価し、低圧では過大評価することがあります (図4)。このような場合、ステップ4.3で説明されているV₀の決定には二次フィッティングが推奨されます。単一ビートのEes推定は必然的に線形ですが、特に大きな後負荷変化時に非線形挙動が連続測定に影響を与える可能性があるため、ESPVRの曲率を認識することが不可欠です。
   5. このアプローチを3つの独立した閉塞点で繰り返し、3つの_V0 測定値の平均を取ります。
      注:負のV₀ は物理的に意味のある負の心室容積を意味するものではありません。むしろ、線形ESPVRモデルの限界と、特に低体積・低圧時における心室力学の基盤となる非線形性を反映しています。負のV₀ の発生は、収縮率の高い心室でより頻繁に発生し、特に高負荷範囲で線形フィットが適用される場合に顕著です。
5. Eesは、ステップ2の_V0 と平均収縮期末圧および体積点の間の線の傾きとして計算します。
   注:この時点でベースライン測定が完了しており、関連する疾患モデルを適用することができます。このレベルで実験を一時停止して、血行動態、換気パラメータ、電解質が正常であることを確認できます。

5. 虚血性心原性ショックの誘発

注:このプロトコルは、虚血性CSモデル(4,11,12,13,14)において追加のIVC閉塞なしにEESを推定する方法を説明しています。この疾患モデルの詳細なプロトコルは本プロトコルの範囲外であり、^{他の場所で}見つかることがあります。簡単に言えば、CSは以下のように誘導されます。

1. 0.125gのマイクロスフィアに5 mLヨウ素化造影剤および5 mLの0.9%生理食塩水を混ぜて、塞栓粒子のストック懸濁液を生成し、合計体積10 mLを得ます。使用前および使用中に懸濁液を優しく攪拌し、冠動脈ガイドカテーテルを通じて1 mLのアリコートを注入します(図5)。
2. 冠動脈ガイドカテーテル(5–7 Fr、例:JL 3.5)を頸動脈の動脈鞘を通して左冠動脈の口に挿入します(ステップ2参照)。
3. 市販のポリビニルアルコール塞栓粒子を用いた左大冠動脈内微小塞栓術により、心筋虚血およびCSを誘発します。各注射後、血行動態を2〜5分間安定させ、熱希釈心拍出量または混合静脈酸素飽和度のいずれかがベースラインと比較して30%減少するまで繰り返し注射を行います(図6)。
   注:CSの成功誘導は、PVループの狭窄と収縮末期容積の右へのシフトによって確認されており、収^縮性の急激な低下を反映^{しています。}

6. 研究全体を通じてEesの連続単一ビート決定

注意:PVデータは LabChart 8 Pro または専用のPVループ解析モジュールを含む類似ソフトウェアで解析される場合があります。すべての記録は、洞調律の安定と信号ドリフトの有無を確認するために目視で確認してください。個々の心拍周期はソフトウェアによって自動的に区分され、その後手動で確認する必要があります。心室外収縮期および異所性周期直前の拍動は除外すべきで、3回の拍子すべてにまたがる負荷条件が一時的に変化するためです。

1. 基準ラインで被験者特異的なV₀ を定義した後(前節参照)、追加のIVC閉塞なしにEesの単一拍推定を行います。
2. 各時刻で、10〜20周期の心拍周期にわたり3回連続して呼気終息を止め、PVループを記録します。各時刻において、息止め期間に基づいて平均ESPとESVが定義されます。
   注意:一過性無呼吸期間中は安定した洞調律を確保してください。各ループ形態は慎重に検査されるべきです。ループは、安定した負荷条件と現実的な心室圧の発生を示す生理学的に妥当な心室サイクルを表す場合にのみ含めるべきです。異所性拍動、すなわち異位性の直前および直後の拍動は分析に含めるべきではありません(図2)。拍子選択に関する詳細なプロトコルについては、公開された方法論的指針^8,18を参照してください。
   注意:高いPEEPは静脈回流および負荷条件¹²に影響を与える可能性があります。ループが重なって落ちていることを確認し、負荷条件が等しいことを示します。ESPVR解析には一般的に約10ループで十分ですが、圧力が下がり続ける間に収縮末期のポイントが左方向にシフトしないことを確認するために、より長いIVC閉塞記録が必要になることがあります(図2、図3、 図4)。
3. 固定されたV₀と呼吸止めPVループの平均ESP、ESV値を用いて各時刻のEESを計算します。
   注:プロトコルの残りの部分では、V₀ は一定に保たれますが、ESPとESVは研究プロトコルや介入によって時間点ごとに異なる場合があります。したがって、負荷や収縮状態の影響は_V0に影響を与えず、Eesのみが影響します。

結果

上記の指示は、ゼロ圧発生_V0の理論体積を一定に保ち、単一のビートベースでEesを導出するプロトコルを示しています。このセクションでは、当研究室で実施された2つの研究データを示します。第一に、CS誘導後の_V0 とEesの発生を調べる別のパイロット研究が行われました。第二に、既に発表された研究に含まれた30頭の豚の大規模なデータセットにおいて、CSの虚血モデル^{が提示されています}。

研究1
この未発表のパイロットシリーズでは、CSが誘発され、心拍出量が32.5%減少しました。CS誘導後、IVCバルーンとPVカテーテルが挿入されました。IVC閉塞を用いたPV測定を行い、V₀の時間経過による安定性を評価しました。被験者のランダム切片を用いた線形混合効果モデリングでは、V₀に有意な時間的変化は認められず(P=0.61)、これはCS誘導後...

ディスカッション

このプロトコルは、虚血性CSなどの急性心疾患でも有効な、LV収縮率の連続的かつ負荷に依存しない評価のための実用的で再現可能かつ実行可能な戦略を説明しています。プロトコルは固定体積軸切片V₀を用いて単一拍からEesを推定し、繰り返しのIVC閉塞を回避することで、脆弱な心血管疾患における不整脈や低血圧のリスクを低減します。本プロトコルの方法論的新規性は、IVC閉塞から得られる経験的に決定された被験者特異的なV₀ と、その後の連続単一拍Ees推定を明示的に組み合わせている点にあります。既存の単拍エラスタンス手法は数学的にV₀を推定しています。単一ビートのエラスタンス推定を実験的に測定された動物特有のV₀に固定することで、本プロトコルは古典的なマルチビートESPVR導出と純粋にモデルベースのシングルビート手法との実用的な妥協を提供します。

急性実験で_V0が一定であると仮定する根拠は、単離心臓研究と生体観察の両方に由来します。実際、切除された...

材料

この記事で使用された材料の一覧

名前	会社	カタログ番号	コメント
0.9% サリン	Fresenius Kabi, Germany	921046	マイクロ球体サスペンションおよびフラッシュ
10 mL シリンジ	BD, USA	BD Plastipak 302143	マイクロ球体注射
12 Fr 股静脈鞘	Terumo, Japan	Radifocus Introducer II	IVC 閉塞バルーン挿入用
20 G 静脈カテーテル	BD, USA	BD Insyte 381223	耳静脈 IV アクセス
7 Fr 股動脈鞘	Terumo, Japan	Radifocus Introducer II	侵襲的動脈圧モニタリング
8 Fr 頸動脈鞘	Terumo, Japan	Radifocus Introducer II	LV PV カテーテルアクセス用
8 Fr 頸静脈鞘	Terumo, Japan	Radifocus Introducer II	肺動脈カテーテルアクセス用
Contour PVA マイクロ球体	Boston Scientific, USA	Contour 355–500 µm	虚血性心原性ショック誘導
冠動脈ガイドカテーテル	Boston Scientific, USA	JL 3.5 / JR 4.0	マイクロ球体注射用冠動脈アクセス
ECG 電極（3リード）	Ambu, Denmark	BlueSensor P	継続的 ECG モニタリング
気管チューブ 7.5–8.0 mm	Smiths Medical, UK	Portex ETT	気管挿管
フェンタニル（IV）	Hameln Pharma, Germany	Fentanyl Hameln	継続的 IV 鎮痛
蛍光透視システム	-	-	カテーテル誘導
温熱ブランケット	3M, USA	Bair Hugger Warming Unit	正常体温維持
ヘパリン	Leo Pharma, Denmark	Innohep	使用時の抗凝固
Iomeron 造影剤	Bracco Imaging, Italy	Iomeron 350	冠動脈造影およびマイクロ球体サスペンション
IVC 閉塞バルーンカテーテル	Fogarty / Edwards Lifesciences, USA	Fogarty Occlusion Balloon	一時的前負荷低減
LabChart 8 Pro ソフトウェア	ADInstruments, New Zealand	LabChart 8 Pro	PV ループの取得と分析
LV PV カテーテル（アドミッタンス）	Millar Inc., USA	MPVS Ultra PV Loop Catheter	アドミッタンスベースの LV 圧容量測定
人工呼吸器	GE Healthcare, USA	Datex Ohmeda S/5	陽圧換気
MPVS モジュール	ADInstruments, New Zealand	MPVS Ultra/Duo	PV カテーテル用インターフェース
PowerLab データ取得システム	ADInstruments, New Zealand	PowerLab 16/35	信号取得
プロポフォール（IV）	Fresenius Kabi, Germany	Diprivan / Propofol-Lipuro	継続的 IV 麻酔
肺動脈カテーテル 7.5 Fr	Edwards Lifesciences, USA	Swan-Ganz 131HF7	熱希釈法 CO および PA 圧
パルスオキシメータ	-	-	末梢酸素飽和度モニタリング
直腸温度プローブ	-	-	核心体温モニタリング
Seldinger ガイドワイヤー	Terumo, Japan	Radifocus Guide Wire M	血管アクセス
無菌サリンフラッシュ	Fresenius Kabi, Germany	0.9% NaCl	鞘フラッシュ
縫合材料	Ethicon, USA	Vicryl 3-0	鞘固定
シリンジポンプ	Becton Dickinson (BD), USA	BD Alaris	継続的麻酔薬注入
超音波システム	-	-	血管アクセス誘導
尿道カテーテル	Teleflex, USA	Rüsch Foley catheter	膀胱ドレナージ
Zoletil（チレタミン/ゾレタム）	Virbac, France	Zoletil 100	麻酔前薬として使用; プロトコルに従ってブトルファノール、ケタミン、キシラジンと混合