2009年4月17日
我々は、修正されたDIGを説明その場でのハイブリダイゼーションプロトコル、。変更されたRNase処理とプロテイナーゼKの濃度を含むだけでいくつかの調整、と、プロトコルは、さまざまな組織や種の研究に使用されることがあります。
欧州トウヒおよび広範な植物種に適用可能な、非放射性in situハイブリダイゼーションプロトコル。Carre Etal. こんにちは、AM GaNです。私たちは、スウェーデンのOBS大学およびスウェーデン農業科学大学で研究を行っています。
私たちは、いくつかの異なる植物種に適用可能な昆虫訪問プロトコルを確立しました。本日は、その中でも特に精緻な操作を要する手順について解説します。このプロトコルでは、包埋、切片作成、および実際の昆虫訪問実験におけるさまざまなステップについて説明します。
それでは、ラボ1の「固定および包埋」のプロトコルにおけるステップ9から11へ進みます。ステップ9、ペトリ皿とモールドを60 °Cで予熱します。ステップ10、ピンセットを加熱し、組織を皿の中に均等に配置します。
組織が完全に浸るまで、組織用パラフィンをさらに追加してください。ステップ11では、パラフィンを室温で凝固させます。プロトコルのステップ12から19までを順に実施してください。
ホットプレートの電源を入れ、溶かした組織用ワックスを用意します。コールドルームからサンプルを取り出します。ステップ13では、メスを使用して組織のワックスブロックを慎重に切り出します。
スライスしやすくするために、サンプルの形状を整えます。ステップ14では、ブロックの底部と踵部分を加熱して融合させます。その後、準備したサンプルを4°Cで硬化させます。
ステップ15では、ワックスブロックを6~8 µmの厚さに薄切します。ミクロトームを用いて、切片を1本の長いリボン状に連結させます。リボンを切り取り、紙の上に移動させます。
この時点で、実体顕微鏡下で個々の切片を観察し、目的の切片を選択することが可能です。組織がエオシンで染色されていれば、観察は容易になります。ステップ17では、スライドにRNaseフリーのMilli Q水を滴下します。
リボンを小さく切り、スライドガラス上に置きます。スライドガラスをホットプレートに移動させます。ステップ17:リボンを42 °Cのプレート上で1〜2分間平坦化させます。
Kimwipeを使用して水分を拭き取ります。ステップ19、組織がスライドに密着するように、スライドを42 °Cで一晩インキュベートします。in situ ハイブリダイゼーション 4.1 in-situ セクション。プロトコルの前処理ステップ36から48に従ってください。
ステップ36では、組織層の切片を脱パラフィンします。スライドは等間隔に配置し、異なる容器間での移動を容易にするためにラックに入れます。切片を脱水します。エタノール系列にて、激しく撹拌しながら無水酢酸を加えます。
ステップ45、無水酢酸処理の準備。4.2 in situ ハイブリダイゼーション。プロトコルにおけるステップ49から52。ステップ51、ProOne Plusスライドのエージング。
溶液は粘性が高いため、気泡が入らないように注意してください。スライドは湿室でインキュベートします。
4.3 初期化。ハイブリダイゼーション後、プロトコルのステップ53から72までを実施する。ステップ62では、スライドをバッファーブロックと共にプラスチック容器に入れてインキュベートする。
ステップ63、スライドがちょうど浸かる程度のブロッキング溶液を加えます。抗体はエイジング法を用いてスライドに添加します。エイジング法はProb Bon Plusスライドでのみ有効です。同様の設計のスライドを使用する場合は、ステップ65、毛細管現象によって抗Dig抗体溶液が吸い上げられるようにしてください。
この手順を繰り返します。ステップ70と同様に、サンドイッチしてWestern blue溶液を吸い上げます。anti-dig抗体溶液のときと同様に、Western blue溶液を2回吸い上げる点に注意してください。
ステップ65およびステップ71において、スライドを暗所で1〜5日間インキュベートします。室温で、実体顕微鏡を用いてハイブリダイゼーション信号のモニタリングを行うことができます。スライドがサンドイッチ状態にある間に、紫色から茶色の染まりが観察できるはずです。
これが実際のCWステーション実験における結果の様子です。ここでは、紫色または茶色の染色としてシグナルを確認できます。
本記事では、欧州トウヒを含むさまざまな植物種に適用可能で効率的な、改良版DIGインサイチューハイブリダイゼーションプロトコルを紹介します。このプロトコルでは、さまざまな組織や種への適用性を高めるため、RNase処理やプロテイナーゼK濃度の変更といった特定の調整が盛り込まれています。
このプロトコルは、植物系における高解像度の空間的遺伝子発現解析を可能にし、組織特異的な発現パターンを確認することで、初期探索におけるターゲットバリデーションを支援します。放射性同位体への依存や広範な種特異的な最適化を軽減し、種間比較研究における再現性とスケーラビリティを向上させます。本手法は、植物ベースのバイオファーマパイプラインにおける表現型スクリーニングおよびトランスレーショナルなバイオマーカー探索に対し、メカニズム的なリスク低減(de-risking)の価値を提供します。
この手法はディスカバリーバイオロジー(探索生物学)フェーズに適合しており、植物ベースの発現系におけるリード化合物のスクリーニングに先立ち、仮説に基づいたターゲット同定を可能にします。