$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
緑膿菌によって産生される保護用エキソ多糖類であるアルギン酸を含むサンプルを含むマイクロプレートを取ります 。
アルギン酸由来の標準試料を連続希釈して、サンプルのアルギン酸濃度を定量します。
コーティングバッファーを加えてインキュベートし、ウェル表面への分子の付着を促進します。
結合していない分子を除去するために洗浄します。
ブロッキング剤と一緒にインキュベートして、非特異的結合部位をマスクします。
洗浄し、アルギン酸に特異的な一次抗体とインキュベートします。
再度洗浄し、一次抗体を標的とする酵素結合二次抗体とインキュベートします。
洗浄してから発色基質でインキュベートし、酵素が酸化して着色された製品を生成します。
反応を止め、色を強調する酸性溶液を加えて比色検出を可能にします。
マイクロプレートリーダーを使用して、色の濃さを測定します。
標準希釈液の強度から標準曲線を作成し、サンプル強度をプロットしてアルギン酸塩濃度を決定します。
マイクロピペットを使用して、収集したサンプルの50マイクロリットルを未処理の96ウェルプレートに加えます。
次に、50マイクロリットルのELISAコーティングバッファーをウェルに加えます。プレートを摂氏37度で2時間インキュベートします。潮吹きボトルを使用して、ウェルを充填し、プレートを裏返して排水することにより、プレートウェルをPBS-Tで2回洗浄します。
マイクロピペットで200マイクロリットルのブロッキングバッファーをウェルに加え、摂氏4度で一晩インキュベートします。翌日、前回と同じようにPBS-Tでプレートを2回洗浄します。次に、100マイクロリットルの希釈一次抗体をウェルに加え、摂氏37度で1〜2時間インキュベートします。
インキュベーション後、プレートウェルを以前と同様にPBS-Tで3回洗浄します。次に、100マイクロリットルの希釈二次抗体をウェルに加え、摂氏37度で1〜2時間インキュベートします。プレートを再度3回洗浄した後、マイクロピペットを使用して100マイクロリットルのTMB ELISA溶液を加えます。
プレートを引き出しに入れるか、ホイルで包んで、暗所で30分間インキュベートします。次に、100マイクロリットルの停止液を追加します。プレートリーダーを使用して、450ナノメートルでODを測定します。
既知の濃度のd-マンヌロン酸の連続希釈液のOD450 を測定することにより、標準曲線を作成します。測定を2回繰り返し、一次方程式を抽出します。標準曲線を使用して各サンプル中のアルギン酸塩の濃度を計算し、線形方程式からアルギン酸塩濃度をOD600 で割って、OD600あたりのアルギン酸塩の総量を求めます。