Name: 行動神経科学のための齧歯類定位手術と動物福祉のアウトカムの改善 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-01-30T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 1 s
Description: 学ぼう、齧歯類の定位手術における動物福祉を向上させる技術。血液酸素濃度、心拍数、体温のモニタリングにより生存率を高め、術後の回復を促進する方法を解説します。

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著者らは、ビデオで使用されている図面の博士ピーターGerritsに感謝。

注：消毒技術はプロシージャ全体を通して採用する必要があります。手術中に使用されるすべての楽器と材料（綿棒、ガーゼなど）はオートクレーブで滅菌する必要があります。手術用マスク、髪のボンネットと滅菌手袋を着用してください。作業領域と定位固定装置は、徹底的に清掃し、及び70％エタノール溶液で消毒する必要があります。 1。術前の手続き<ol><li>定位固定装置と必要なすべてのマテリアルを設定します。プレ暖かい暖房パッド。 </li><li>そのサポートにカニューレを配置し、それがまっすぐであるかどうか確認して下さい。 </li><li>ガスシステムの電源をONしてください - 周囲の空気と酸素の混合物（総流量の30〜35パーセントは酸素でなければなりません）。 </li><li>ラットを秤量し、麻酔剤を投与する。私たちは、ケタミン（37.5 mg / kg体重）とデクスメデトミジン（0.25 mg / kg）を皮下注射の混合物を使用しています。異なる麻酔プロトコルの場合、Flecknell 4 Hellebrekerを参照してください。S ら。7。 </li><li>ラットが意識を失った後、耳からだけで電気かみそりと目の間にしようと頭の面積を削る。 </li><li>エアチューブの前でその鼻で、加温パッド上にラットを置きます。ラットは、十分な血液の酸素化のレベルを（&lt;90％を削除してはいけません）があることを確認するために酸素濃度計を使用しています。機器の適切な使用については、製造元の指示に従ってください。 </li><li>脱水症状を避けるために、両方の角膜の眼クリーム（Duratears Z、アルコン）を適用します。 </li><li>それは十分に麻酔であることを保証するためにラットの反射神経（尾反射またはつま先-ピンチの反射、などのWalantus ら 8で示した）を確認してください。ラットは強い反射を示すために続ける場合、麻酔の補充が必要になることがあります。 </li><li>動物の前でエアチューブを何つま先-ピンチの反射が表示されていない場合は、定位固定装置にラットを置き、それが両側に同じ読みが表示されるように耳のバーを調整し、再配置鼻のバーでそれを固定すること。ラットが90％以上の血液の酸素化のレベルを示している場合、もう一度確認してください。されていない場合は、鼻に近づけるもたらす、どちらチューブを調整する、または酸素の流量を増加させる。手術中の血液の酸素化レベルと心拍数を監視します。 </li><li>継続的に直腸温度計（優先的に加熱パッドに接続されている）とラットの温度を監視し、手術の最初と最後に値を記録します。加熱パッドを調整するか、38.5に37.5体温を維持するために毛布を使用して℃に</li></ol> 2。手術<ol><li>鎮痛剤を注入する。我々は、カルプロフェンのシングル周術期管理を（4.0〜5.0 mg / kg体重、皮下）を使用している。別の鎮痛剤のプロトコルについては、Hellebrekers ら7を参照してください。 </li><li> tの剃毛面積を清掃彼消毒剤を使って、中心からの髪の周囲に皮膚三回（例えば、クロルヘキシジン0.5％）と局所的に防止するために局所麻酔と血管収縮（のためにリドカイン（20 mg / mlの）とアドレナリン（5 mg / ml）の混合物を注入過度の出血）。 </li><li>耳の裏まで、両眼の間から行く、頭皮の正中線上に約2.5cmの前後切開を加えます。肌をピンチオフすると切開を開いたまま4〜6ブルドッグクランプを使用してください。へらおよび/または綿棒を持つ任意の論理積組織を取り出して、頭蓋骨の表面を露出する面積を掃除。 </li><li>ヘッドが水平になっているかどうかを確認します：まず、ラムダを見つけて、正確にこの場所を介してガイドカニューレを置いて、頭蓋骨に触れる。背腹座標を記録します。次に、頭蓋骨に触れて、正確にブレグマ上のガイドカニューレを挿入して、その背腹座標を記録する。これら2つの座標は同一である必要があります。違いは&gt; 0.3mmである場合、それを修正するために鼻のバーを調整します。 </li><li> M滅菌ハンドドリル（反対側の半球でカニューレの位置の後方半球と他の5 mmのいずれかでカニューレの位置に前方one約5 mm）を使用して頭蓋骨のネジを固定するためのAKE二つの小さな穴。それらがしっかりと固定されるまで完全に頭蓋骨に挿入されることなく、これらの穴に2本の滅菌のネジを置きます。 </li><li>ブレグマで正確に配置されたガイドカニューレで、前後と横方向の座標を記録する。各脳の領域のためのガイドカニューレの配置の正しい場所は、脳地図9-11助けを借りて、ブレグマから加算または減算することによって計算することができます。 </li><li>わずかに頭蓋骨に触れ、その正しい場所にガイドカニューレを置きます。背腹座標を記録します。二国間カニューレを配置するため、他の半球でカニューレの位置次を検索、そして再び背腹座標を記録する。両方の座標は（または&lt;0.3 mmの異なる）同じにする必要があります。 </li><li>手のドリラーで、滅菌鉛筆で頭蓋骨にカニューレの位置をマークすると、ガイドカニューレの助けを借りて、サイズと正しい場所を確認し、バリの穴を作成します。穴が行われると、静かにカニューレの遮るもののない挿入を可能にする髄膜を開ける滅菌針を使用してください。 </li><li>最初の穴にカニューレを配置し、それが最後の腹側の座標に到達するまで、慎重に下ろします。歯科用セメントを準備し、寛大にカニューレを固定するためにカニューレと、1つまたは両方のネジの周りにそれを適用します。セメントが完全に乾くまで待ちます。その後、慎重に背腹バーを上方向に回して、カニューレのサポートを削除します。 </li><li>サポートへの2番目のカニューレを置き、他の半球のカニューレの位置に移動します。穴にカニューレを置き、前の手順を繰り返します。ネジとセメントとカニューレの大きな面を覆う、そしてセメントが乾燥する前に、皮膚からの剰余金を削除する。 </li><li>注入暖かい（〜37 ° C）補水を確保するために滅菌生理食塩水（〜10 ml / kgを、SC）。 </li><li>セメントが完全に乾いた後、カニューレのサポートを削除し、閉塞を防ぐために各カニューレに無菌のピンを配置。 </li><li>滅菌生理食塩水で創傷面積を清掃し、フロントと傷の背中を縫合。 </li><li>その鼻の前にガスチューブを交換し、定位固定装置から動物を取り外します。酸素飽和度のレベルと体温を監視し続ける。 </li><li>デクスメデトミジンと注射麻酔薬が使用されている場合は、その拮抗薬のatipamezoleを注入（0.25 mg / kgの、SC）と動物が目覚める（約5分）まで待ちます。 </li><li>回復のケージにラットを置きます。低体温を避けるために、ビバリウムの部屋にそれを返す前に、少なくとも1時間のために動物を観察できる場所で28℃でまたは加熱パッド上にインキュベーターにケージを置きます。 </li></ol> 3。手術後のケア<ol><li>中手術後の最初の4日間、体重と実験室の日誌や"動物福祉の日記"における動物の状態に関する他の観察の日々の記録を保つことによって、ラットの回復を監視する。 </li><li>病気の明白な徴候を示す動物、傷の感染、体重や福利削減の他の徴候の損失は、特別なケアを受ける必要があります：手術後の痛みを最小限に抑えるために鎮痛薬の余分線量を、例えば、粉の食物と水の混合液を標準固形飼料に加えて、水分補給をサポートするために、ラットの食欲、および/または生理食塩水の皮下注射を刺激する。 </li><li>ラットではこれらの介入後に改善、または体重の損失が表示されない場合は犠牲が麻酔薬の過剰摂取（人道的エンドポイント）を持つ動物、（手術前の体重に比べて）&gt; 15％です。 </li><li>ラットは、通常、行動実験の開始前に少なくとも7日間で回復する必要があります。 </li></ol> 4。代表的な結果jove_content"特に酸素補給と血中酸素濃度、心拍数と体温の継続的なモニタリングに関して、私たちの外科手術への様々な変更かどうかを判断するには&gt;、強化された動物の生存率と手術後に全身状態を改善し、我々は比較我々は標準プロトコルで動作24のコホート（20匹ずつ）の非生存率はこれらの変更を実装した後に手術を受けた動物の20コホートの非生存率（20​​ラットそれぞれで構成される）。図1aに示すように、非生存率が大幅に変更されたプロトコル（P &lt;0.05、Mann - WhitneyのU検定、二つの両側）で運転されたコホートのサンプルで減少した。また、図1b、手術後の体重減少のに表示されている修正されたプロトコルで操作したラットのもかなりのような標準的な手順（術後1日目で運転ラットのそれに比べて減少した：P &lt;0.05、術後2日目：P &lt;0.01、術後3日目：P = 0.17、スチューデントt検定）。 <img alt="図1" src="/files/ftp_upload/3528/3528fig1.jpg" data-altupdatedat="1788238805000" data-alt="図1"> 図1非生存率や手術後の体重減少に対する外科的改変の影響。標準プロトコルで動作ラットのそれと比較して変更されたプロトコルで動作ラットの（A.）非生存率。非生存率は、（中央値±四分位範囲）手術を生存しなかったラット20匹、のコホートごとに、ラットの割合として算出した。 * P &lt;0.05、Mann - WhitneyのU検定両側二つ（変更プロトコルと標準プロトコルのための24のコホートにn = 20のコホート）。最初の（POD1）、秒（POD2）とサード（POD3）術後日中（B.）体重減少（手術前の重量の割合として平均± SEM）。 * P &lt;0.05、** P &lt;0.01、スチューデントt -検定（N = 60あたりのグループ）。

<ol><li>Russell, W. M. S., Burch, R. L. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aRussell%2C+WMS+%22The+Principles+of+Humane+Experimental+Technique%22">The Principles of Humane Experimental Technique</a>. , Methuen, London. (1959).</li>
<li>Richardson, C. A., Flecknell, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anaesthesia+and+post-operative+analgesia+following+experimental+surgery+in+laboratory+rodents%3A+are+we+making+progress%3F%5BTitle%5D)+AND+%22Altern.+Lab+Anim%22%5BJournal%5D)">Anaesthesia and post-operative analgesia following experimental surgery in laboratory rodents: are we making progress?</a> Altern. Lab Anim. 33, 119-127 (2005).</li>
<li>Stokes, E. L., Flecknell, P. A., Richardson, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reported+analgesic+and+anaesthetic+administration+to+rodents+undergoing+experimental+surgical+procedures%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Anim%22%5BJournal%5D)">Reported analgesic and anaesthetic administration to rodents undergoing experimental surgical procedures.</a> Lab Anim. 43, 149-154 (2009).</li>
<li>Flecknell, P. A. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aFlecknell%2C+PA+%22Laboratory+Animal+Anaesthesia+-+A+Practical+Introduction+for+Research+Workers+and+Technicians%22">Laboratory Animal Anaesthesia - A Practical Introduction for Research Workers and Technicians</a>. , Academic Press. (2009).</li>
<li><a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DIRECTIVE+2010%2F63%2FEU+OF+THE+EUROPEAN+PARLIAMENT+AND+OF+THE+COUNCIL+of+22+September+2010+on+the+protection+of+animals+used+for+scientific+purposes%5BTitle%5D)+AND+%22Official+Journal+of+the+European+Union%22%5BJournal%5D)">DIRECTIVE 2010/63/EU OF THE EUROPEAN PARLIAMENT AND OF THE COUNCIL of 22 September 2010 on the protection of animals used for scientific purposes.</a> Official Journal of the European Union. , (2010).</li>
<li>Geiger, B. M., Frank, L. E., Caldera-Siu, A. D., Pothos, E. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Survivable+Stereotaxic+Surgery+in+Rodents%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Survivable Stereotaxic Surgery in Rodents.</a> J. Vis. Exp. (20), e880-e880 (2008).</li>
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<li>Walantus, W., Elias, L., Kriegstein, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+utero+intraventricular+injection+and+electroporation+of+E16+rat+embryos%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">In utero intraventricular injection and electroporation of E16 rat embryos.</a> J. Vis. Exp. (6), e236-e236 (2007).</li>
<li>Paxinos, G., Watson, C. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aPaxinos%2C+G+%22The+Rat+Brain+in+Stereotaxic+Coordinates%22">The Rat Brain in Stereotaxic Coordinates</a>. , Academic Press. (1986).</li>
<li>Paxinos, G., Watson, C. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aPaxinos%2C+G+%22The+Rat+Brain+in+Stereotaxic+Coordinates%22">The Rat Brain in Stereotaxic Coordinates</a>. , Academic Press/Elsevier. (2007).</li>
<li>Swanson, L. W. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aSwanson%2C+LW+%22Brain+Maps%3A+Structure+of+the+Rat+Brain%22">Brain Maps: Structure of the Rat Brain</a>. , Elsevier. (1992).</li>
</ol>

著者らは、開示することは何もない。

このビデオプレゼンテーションの主な目的は、定位手術の基本原則と行動の神経科学を​​理解することです。すでに定位手術を行っている研究者はまた、このビデオの恩恵を受けると、自分の研究室で使用するための手続きの改良のいくつかを検討するかもしれない。手術手技1-3を最適化する方法についてますます知識、人間と獣医学4,12、国民意識に関する動物福祉の問題と厳格な法律（例えば、上の2010年欧州連合（EU）の指令で使用するための新しい麻酔薬や鎮痛薬の開発実験動物の使用5）私たちは酸素の補給、手術時の血液の酸素化および心拍数のレベルの継続的な監視のための新しい手続きを実施するように指示。動物の代表的なサンプル、全体的な生存率の増加率と有意に減少した外科手術後の体重減少のために示されるように我々は、観察。このような縮小手術後の体重減少は小さい動物の外科手術の負担と、その結果、手術の直後でより積極的な動物の結果を反映しているかもしれません。それはまた、長期的な健康に有益な効果を持っているかどうかは明らかではない。しかし、驚くべき観察は、酸素供給を削除すると、一時的に（デモ本契約のためのビデ...

<table border="1"><tbody><tr><td> 試薬の名前 </td><td> 会社 </td></tr><tr><td>アルコール70パーセント</td><td> VWR </td></tr><tr><td> Antisedan（atipamezole） </td><td>オリオン</td></tr><tr><td>硫酸アトロピン0,5 </td><td> Pharmachemie BV </td></tr><tr><td>ブルドッグ止血クランプ</td><td> Aesculap </td></tr><tr><td>カニューレ</td><td>コンポーネントサプライ株式会社</td></tr><tr><td>クロルヘキシジン0.5パーセント</td><td> AppepPharma </td></tr><tr><td>粉体のクリーニング</td><td> Alconox </td></tr><tr><td>コットンスティック</td><td>ハルトマンBV </td></tr><tr><td> Dexdomitor（デクスメデトミジン） </td><td>オリオン</td></tr><tr><td>ドリル</td><td>ドレメル8000 </td></tr><tr><td> Duratears Z </td><td>アルコン</td></tr><tr><td> Durogrip Naaldvoerder逆130ミリメートル</td><td> Aesculap </td></tr><tr><td> Durotip Fijne schaar ret.sp / ST 110ミリメートル</td><td> Aesculap </td></tr><tr><td>ガーゼ</td><td> Medicomp（5x5の） </td></tr><tr><td>暖房パッド</td><td>ハーバード装置</td></tr><tr><td>昆虫ピン（スタイレット） </td><td> Entosphinx（チェコ共和国） </td></tr><tr><td>ケタミン10％（ケタミン） </td><td> Alfasan </td></tr><tr><td>マイクロホールステッドストレート先端</td><td> Aesculap - 獣医</td></tr><tr><td> Molinea </td><td>ハルトマンBV </td></tr><tr><td>塩化ナトリウム0.9％ </td><td>バクスター</td></tr><tr><td>針（25G） </td><td>テルモ</td></tr><tr><td>酸素濃度計</td><td> EDANインスツルメンツ株式会社</td></tr><tr><td>ペントバルビタール</td><td> UMCGの薬局</td></tr><tr><td> Rimadyl </td><td>ファイザー</td></tr><tr><td>手術用メスの刃23号</td><td>スワンモートン</td></tr><tr><td> ScalpelholderのNR。 4 133ミリメートル</td><td> Aesculap </td></tr><tr><td>スクリュードライバー</td><td>従来のハードウェアストア</td></tr><tr><td>迅速なシンプレックス（歯科用セメント） </td><td> Kemdent </td></tr><tr><td>頭蓋骨のネジ</td><td>コンポーネントサプライ株式会社</td></tr><tr><td>へら</td><td> VWR </td></tr><tr><td> Spongestan特別</td><td>ジョンソン＆ジョンソン</td></tr><tr><td> Stereotacts </td><td> Kopfは楽器</td></tr><tr><td>手術用鉗子100ミリメートル</td><td> Aesculap </td></tr><tr><td>縫合糸材料Safil 5 / 0 </td><td> Aesculap </td></tr><tr><td>注射器10ミリリットル</td><td> Omnifix </td></tr><tr><td>注射器1ミリリットル</td><td>テルモ</td></tr><tr><td>シリンジ5ミリリットル</td><td> Omnifix </td></tr><tr><td>キシロカイン（リドカイン/アドレナリン） </td><td>アストラゼネカ</td></tr></tbody></table>

行動神経科学のための齧歯類定位手術と動物福祉のアウトカムの改善

Rodent Stereotaxic Surgery and Animal Welfare Outcome Improvements for Behavioral Neuroscience

特定の脳領域へのカニューレの移植のための定位手術は何十年も目を覚まし、行動を動物に局所的に操作する神経伝達物質やシグナル伝達経路の効果を調べるために非常に成功した実験的な手法となっている。さらに、電気生理学的刺激と記録の研究のための電極の定位注入は、動物の振る舞い​​における神経可塑性と脳のネットワークの私達の現在の理解に役立っている。げっ歯類1-4、動物福祉の問題に関する国民意識と厳格な法律（例えば、実験動物5の使用に関する2010年欧州連合（EU）の指令）の手術手技の最適化について、増え続ける知識は特に関連して、これらの外科的処置を絞り込むために私たちを促しただけでなく、手術中の酸素補給のための新しい手順や血液の酸素と心拍数のレベルの連続監視を実装する手術後のケアのための標準化プロトコルを導入する。我々の観察では、これらの変更が増加生存率と手術後の動物の一般状態（例えば、以下の体重減少とより積極的な動物）の改善をもたらしたことを示している。このビデオプレゼンテーションでは、私たちのいくつかの変更に特別な注意と定位手術のこのタイプに関係する一般的な手順が表示されます。我々は、ラットではこれらの外科的処置を説明しますが、それは定位固定装置6の特別なアダプタを使用して、マウスまたは他の小実験動物に手術のこのタイプを実行することも可能です。

げっ歯類での定位手術は動物の行動を、目を覚ましに薬物の標的投与や電気刺激やレコーディングが可能になります。このビデオプレゼンテーションでは、この長年の手順その成功生存率向上と縮小手術後の体重減少に、最近の手続き型の改良を紹介します。

特定の脳領域へのカニューレ留置のための定位手術は、数十年にわたり、...するための非常に成功した実験手法となってきました。

本プレゼンテーションの目的は、特定の脳領域にKenlyを植え込むための定位手術における一般的な手順を示すことです。長年行われてきたこの手法に対する手技上の改善点に特に注目しており、これらの改善は、手術を通じて心拍数と体温をモニタリングしながら、主に血中酸素レベルのモニタリングと補給を行うことで達成されます。これらの手技上の改善により、生存率が向上し、動物福祉全体が改善されます。標準的な定位手術の手法に対する本技法の主な利点は、我々の修正により、動物の生存率と福祉が大幅に向上することです。一般的に、この方法に不慣れな人は、ラットを定位固定装置にセットし、座標を決定することに苦労します。定位固定装置を十分に滅菌し、オートクレーブ処理した後、作業スペースを整え、ヒートパッドを予熱して手術器具の準備を始めます。定位固定装置のセットアップが完了したら、カニューラを支持台に設置し、真っ直ぐであることを確認します。ガスシステムを起動し、環境空気および30～35%のoxygenを流し始めます。ラットに完全に麻酔をかけた後、耳から両目の間まで頭部を剃毛します。電気シェーバーを使用し、ラットをヒートパッドの上に置き、鼻をエアチューブの前に合わせます。製造元の指示に従ってオキシメーターを使用し、ラットの血中酸素飽和度が90%から99%の間であることを確認してください。酸素チューブを取り外すと、血中酸素飽和度が低下することに留意してください。また、チューブの位置に十分注意してください。脱水を防ぐため、両側の角膜に眼軟膏を塗布し、足趾へのピンチ反射が見られないことを確認して、ラットが十分に麻酔されているかチェックします。その後、ラットをステレオタキシス装置に固定します。耳固定バーを調整し、両側の読み取り値が等しくなるようにします。次に、ノーズバーで固定して、エアチューブを動物の前面に配置します。再度確認してください。ラットの血中酸素飽和度が90から99%の間にあるかを確認します。そうでない場合は、チューブを鼻に近づけるか、酸素流量を増やして調整してください。手術の間、血中酸素飽和度と心拍数をモニタリングします。直腸温度計でラットの体温を継続的にモニタリングし、ヒーティングパッドを調整するか、ブランケットを使用して体温を37.5から38.5°Cに維持してください。鎮痛剤を皮下注射した後、頭部の除毛部位を消毒剤で洗浄します。局所麻酔および過剰な出血を防ぐための血管収縮を目的として、リドカインとアドレナリンの混合液を注入します。両眼の間から耳の後ろに向かって、頭蓋正中線上に約2.5 cmの前後切開を行います。4〜6個のブルドッグクランプを使用して皮膚を挟み込み、切開部を開いたままにします。スパチュラや綿棒を用いて結合組織を除去し、領域を清掃して頭蓋骨表面を露出させます。まずLambda（ラ

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Research

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Neuroscience

神経科学

自由に動物を移動させるの異なる脳領域における細胞外神経伝達物質レベルのモニタリングは、神経伝達物質の放出と行動の間のリンク上の洞察を提供しています。および基底神経伝達を薬理学的または生理学的操作によって変更される方法については、電気化学検出と相まって生体微量透析に優れた解剖学的および化学的分解能を提供します。...

げっ歯類で存続可能な定位手術

定位座標を使用して、興奮性毒を注入することにより、特定の脳領域の対象とアブレーション（s）は記載されています。この手法はまた、ラット脳内に他の化学物質の注入に適応することができます。...

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ラットの複数の部位からの脳活動のin vivo電気生理学的記録

このビデオは、無線双方向マルチチャンネル電極ユニットをラットの脳に埋め込んで、マルチチャンネルニューラルネットワークを記録し、刺激する手順を示しています。...

ラット脳への無線双方向微小電極システムの移植

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定位注入法を適用すると、動物の行動の遺伝的影響を研究するために、

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動機付け行動の分子基質を研究するために齧歯類の脳マイクロインジェクション

我々 はラットの運動皮質の微小電極注入が即時かつ持続的な運動障害を引き起こすことを示しています。方法が提案電極注入手術と罰金または総モーター機能の運動野への注入による損傷のための潜在的な変化を明らかにする 3...

ラット皮質運動野の微小電極注入による機能的障害を評価するためにテスト行動の齧歯動物

ここでは、角度付きコロナアプローチを使用して(空間的な制限のために)困難で到達しにくい脳領域を標的にすることができる定位的手順を説明します。このプロトコルは、マウスおよびラットモデルの両方に適応可能であり、カニューレ移植およびウイルス構築物のマイクロインジェクションを含む多様な神経科学的用途に適用することができる。...

多目的神経科学技術のための適応可能な角度付き定位アプローチ

中枢神経系に作用する薬剤の徹底した前臨床試験は、しばしば特定の投与経路に関連して薬剤の生体内分布を評価し、比較が行われ。ここでは、三、一般的に使用される全身送達の方法（、静脈内、腹腔内、および経口）と同様にローカル配信するための方法（対流強化配信）はマウスで実証されています。...

齧歯類モデルで中枢神経系の疾患を治療するための全身および局所薬物送達

食品または薬剤ペア合図の応答は、禁欲期間の経過とともに増加し、これが再発の行動への感受性の増加に関連する可能性があります。ここでは詳細自己管理スクロースを持つラットではこの"渇望のインキュベーションを"評価するための手順を。...

ラットのショ糖の渇望のインキュベーションを評価するための一般的な方法

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