Name: 酵素の固定化と安定化のための疎水性の塩で修飾ナフィオン (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-07-11T12:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 16 s
Description: 学ぶ疎水性修飾ナフィオンを用いた酵素固定化法。アルキルアンモニウム塩とのイオン交換と適切な乾燥工程により、酵素の安定性と活性を向上させる高分子膜を合成する手法を解説。

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著者らは、米海軍研究、米国大豆ボード、および資金調達のために国立科学財団の事務所を認める。

1。第四級アンモニウム塩とナフィオンの変更<ol><li>約のために精力的に5パーセントw / vのナフィオン懸濁液のボトルを振ります。ナフィオン溶液中で均一にサスペンドされていることを保証するために30秒。 </li><li>ガラスバイアル（バイアル量は2.5 mLから10 mLに含まれている可能性があり）になりました再懸濁したナフィオン2 mLのピペットを。 </li><li>アルキルアンモニウム臭化物塩の3倍モル過剰（ナフィオンポリマーにスルホン酸基からの相対パス）（適切な質量を表1に示す）を測定し、ナフィオンの2 mLを含むバイアルにこれを追加します。 </li><li>渦10〜15分間1500rpmでバイアル。 </li><li>約を測定するプラスチック製秤量トレイに粘性溶液を注ぐ。 3インチ×3、計量トレイにバイアルからの残液を転送するためにピペットを使用しています。 </li><li>溶剤計量トレイの底部（Fiの黄色/茶色、透明フィルムを残して、重船外に蒸発することができますグレ2）。溶媒の蒸発速度は、それが蒸発するすべての溶媒に6時間以上がかかるようにすべきである。溶媒が蒸発が速すぎる場合は、白、無愛想な材料は、ポリマーのミセル構造が破壊されたことを示す透明フィルムの代わりに形成され、このプロシージャを再起動する必要があります。溶媒の蒸発が遅すぎる場合は、蒸発の速度が遅すぎる典型的に粘着性の、オレンジ色のゲルにつながるとは、プロシージャを再起動する必要がありますので、デ加湿器は、必要があるかもしれません。 37℃ - 溶媒蒸発のための典型的な温度範囲は20です。乾燥の実際の条件は、部屋の相対湿度と温度の関数であるが、それはゲル形成を可能にするためにミセル構造を維持するために、低速ではなく、人間が遅すぎて乾燥することが重要です。 </li><li> 18MΩcmで脱イオン水（水の10〜20 mL）で船の重量を量る記入し、カバーし、過剰なアルキルアンモニウム臭化物塩およびHBrを削除するには、12〜24時間浸漬することができます。 </li><lI&gt;水アウト（またはピペット）注ぎ、トレイたびを満たすのに十分なDI水で3回すすいでください。このステップの間にポリマーフィルムのいずれかを紛失しないように注意してください。 </li><li>ポリマーは、この時点で完全に乾燥するまで明らかに座って秤量トレイを許可する、ポリマーは、はっきりとやや脆いプラスチックフィルムでなければなりません。空気が非常に湿度が高い場合は、再度、デ加湿器は、適時に蒸発を完了する必要があるかもしれません。 </li><li>へらを使用して、慎重に計量トレイから乾燥したフィルムを除去してクリーンなガラスバイアルにそれを転送します。 </li><li>エタノール2 mLの3セラミックの混合ビーズ、4時間またはポリマーフィルムが完全に再懸濁されるまでボルテックスする。 </li></ol> 2。活性アッセイのためにTBAB-Modifiedのナフィオンに酵素の固定化<ol><li>乾燥した酵素を、1.5 mlのマイクロ遠心チューブに酵素1-10ミリグラムを量る、1〜10 mg / mLの酵素液を作成するには、100mMのpH7のリン酸緩衝液1 mLを加える。フォーrは溶液中にある酵素は、タンパク質の量を決定するためにビシンコニン酸（BCA）アッセイ13を使用して、1から10 mg / mlにタンパク質濃度をもたらすために、100mMのリン酸緩衝液の適切な量を追加します。 1から10 mg / mLのは、通常、1から50ナノモル/ mLに相当します。 </li><li> 1 mg / mLの酵素溶液120μLに、アルキルアンモニウム修飾ナフィオン溶液と、10秒間ボルテックスを60μLを追加します。 （この混合物を複製し、多数のためにスケールアップすることができます。2:1に酵素·ツー·ポリマー溶液の比率を保持します。） </li><li>ピペット60 3別の1cm 2のキュベットの底に酵素/ポリマー溶液のμL、一晩乾燥させます。 </li></ol> 3。固定化NAD-依存性脱水素酵素のアッセイ<ol><li>キュベットに、50mMのピロリン酸ナトリウム液（pH 8.8）1.3 mLを、15mMのNAD（新たに調製）、0.1 mLの水1.5 mLを加える。 </li><li> UV / VIS分光光度計（すなわちThermoScientific Evolutにキュベットを配置イオン260バイオ·サーモジェネシスSpectronic 20）340 nmの波長に設定されています。 </li><li>分光計をゼロにし、0.1mLのエタノールを加える。穏やかに5回ダウンソリューションをピペッティングにより試薬を混ぜる。空白の場合は、追加の水0.1 mLの代わりにエタノール0.1 mLを使用しています。 </li><li>試薬をキュベットに添加し、20分後にされた後5分で340 nmの吸光度を記録します。アクティビティの計算に使用することができるスロープを得るために2つのデータポイントをプロットします。 </li></ol> 4。固定PQQ依存性脱水素酵素のアッセイ<ol><li>キュベットに、リン酸ナトリウム1.5mLの液（pH7.3）、600μMPMSの200μLを追加します。 </li><li> 600nmの波長に設定UV / VIS分光光度計で、キュベットを配置し、分光計をゼロに。 </li><li> 700μLDCIPの100μLと関心のある基板（エタノール、アセトアルデヒド、グリセロール、グルコース、またはグリセルアルデヒド）の200μLを追加し、優しくsolutをピペッティングにより試薬を混ぜてイオン上下に5回。空白の場合は、200μLの水の代わりに、興味のある基板を使用しています。 </li><li>試薬をキュベットに添加し、20分後にした5分後に600 nmの吸光度を記録します。 </li></ol> 5。固定化グルコースオキシダーゼのアッセイ<ol><li>キュベットに、0.2 M のp-ヒドロキシ安息香酸、0.02％（w / v）のアジ化ナトリウム、128 Uペルオキシダーゼ、0.3mMの4 -アミノアンチピリン、1 Mリン酸カリウム、50 mMグルコースを含む溶液の2.0 mLを加える。 5回上下にピペッティングして溶液を混合。 </li><li> 510 nmの波長に設定UV / VIS分光光度計ではキュベットを配置します。 </li><li>試薬は20分後に再びキュベットに添加した後5分で、510nmで吸光度を記録します。 </li></ol> 6。代表的な結果変更されたナフィオンポリマーのミセル構造は、オリジナルの塩/ポリマーの共キャストフィルムもFasを乾燥させることにより破壊することができるトン。 図2は、正しく、透明淡褐色膜に生じる乾燥させた塩/ポリマー混合物を示しています。乾燥が速すぎて乾燥プロセスはミセル構造を破壊することができるという事実のためにポリマーの不透明な、白色のフレークにつながることができるフィルム。 変更されたナフィオンポリマーと酵素を混合し、キュベットの底面に共存キャストされた後、酵素活性アッセイは、ポリマー膜内の酵素の安定性を評価するために使用することができます。 テーブルは、2つのデヒドロゲナーゼ酵素の2-4はアッセイの結果とグルコースオキシダーゼは、それぞれ、さまざまな変更されたナフィオン膜に固定化した。変更されたナフィオンポリマーが実際に特定の酵素（superactivityと呼ばれる）の活性を高めることができることを示す、緩衝液中の酵素対固定されている酵素の活性が高いことに注意してください。他の酵素は、ポリマーにそれらを固定するときに、その特定の活性を低下させる輸送の制限があります（その基板）非常に大きい巨大分子である、すなわちセルラーゼおよびアミラーゼ、。 <table border="1"><tbody><tr><td> 使用される第四級アンモニウム塩 </td><td> 3倍過剰 </td></tr><tr><td> T3A（テトラブロミド） </td><td> 32.37 mg / mlの</td></tr><tr><td> TBAB（テトラブチルアンモニウムブロマイド） </td><td> 39.19 mg / mlの</td></tr><tr><td> TPAB（テトラペンチブロマイド） </td><td> 46.​​01 mg / mlの</td></tr><tr><td> TEHA（triethylhexylammoniumブロマイド） </td><td> 32.37 mg / mlの</td></tr><tr><td> TMHA（trimethylhexylammoniumブロマイド） </td><td> 27.25 mg / mlの</td></tr><tr><td> TMOA（trimethyloctylammoniumブロマイド） </td><td> 30.66 mg / mlの</td></tr><tr><td> TMDA（trimethyldecylammoniumブロマイド） </td><td> 34.07 mg / mlの</td></tr><tr><td> TMDDA（trimethyldodecylammoniumブロマイド） </td><td> 37.48 mg / mlの</td></tr><tr><td> TMTDA（trimethyltetradecylammoniumブロマイド） </td><tD&gt; 40.89 mg / mlの</td></tr><tr><td> TMHDA（trimethylhexadecylammoniumブロマイド） </td><td> 44.31 mg / mlの</td></tr><tr><td> TMODA（trimethyloctadecylammoniumブロマイド） </td><td> 47.71 mg / mlの</td></tr></tbody></table> 表1。ナフィオンポリマー改質に使用するテトラアルキルアンモニウム塩の量。 <table border="1"><tbody><tr><td> ナフィオンのタイプ </td><td> 酵素活性（U / g）を </td></tr><tr><td>バッファ（NOポリマー） </td><td> 16.63±8.11 </td></tr><tr><td>ナフィオン（un-mod.） </td><td> 9.25±2.21 </td></tr><tr><td> TMTDA </td><td> 3.23±2.92 </td></tr><tr><td> TBAB </td><td> 3.93±3.33 </td></tr><tr><td> TMDDA </td><td> 4.19±1.04 </td></tr><tr><td> TMOA </td><td> 3.51±1.11 </td></tr><tr><td> TMDA </td><td> 8.00±4.53 </td></tr><tr><td> TMHA </td><td> 1.68±1.39 </td></tr><tr><td> TMHDA </td><td> 4.83±0.99 </td></tr><tr><td> TMODA </td><td> 10.45±3.20 </td></tr></tbody></table> 表2選択され変更されたナフィオンポリマー（注：固定化活性は酵素の初期比活性の関数である）に固定化したNAD依存性グルコース脱水素酵素活性。 <table border="1"><tbody><tr><td> ナフィオンのタイプ </td><td> 酵素活性（MU / g）を </td></tr><tr><td>バッファ（NOポリマー） </td><td> 7.18±0.51 </td></tr><tr><td>ナフィオン（un-mod.） </td><td> 70.1±0.5 </td></tr><tr><td> TMTDA </td><td> 133±6 </td></tr><tr><td> TBAB </td><td> 244±4 </td></tr><tr><td> TMDDA </td><td> 221±6 </td></tr><tr><td> TMOA </td><td> 1.78±0.63 </td></tr><tr><td> TMDA </td><td> 206±5 </td></tr><tr><td> TEHA </td><td> 40.1±50.6 </td></tr><tr><td> TMHDA </td><td> 0 </td></tr><tr><td> TMODA </td><td> 1.45±0.06 </td></tr></tbody></table> 表3 PQQ依存性グルコース脱水素酵素活性は、（注：固定化活性は酵素の初期比活性の関数である）を選択して変更されたナフィオンポリマーに固定化した。 <table border="1"><tbody><tr><td> ナフィオンのタイプ </td><td> 酵素活性（U / g）を </td></tr><tr><td>バッファ（NOポリマー） </td><td> 103.61±3.15 </td></tr><tr><td>ナフィオン（un-mod.） </td><td> 19.93±10.10 </td></tr><tr><td> TMTDA </td><td> 247.25±12.49 </td></tr><tr><td> TBAB </td><td> 152.27±5.29 </td></tr><tr><td> TMDDA </td><td> 262.05±6.26 </td></tr><tr><td> TMOA </td><td> 129.18±2.31 </td></TR&gt; <tr><td> TMDA </td><td> 141.23±1.97 </td></tr><tr><td> TMHA </td><td> 131.75±2.89 </td></tr><tr><td> TMHDA </td><td> 132.50±1.18 </td></tr><tr><td> TMODA </td><td> 136.50±0.96 </td></tr></tbody></table> 表4代表的なグルコースオキシダーゼ比活性は、選択され変更されたナフィオンポリマー（：固定化活性が酵素の初期比活性の関数であり、注意してください）に固定することができる。 <img alt="図1" src="/files/ftp_upload/3949/3949fig1.jpg" /> 図1ナフィオンポリマーと酵素の固定化のその後の使用にTBABの取り込みの模式図。 <img alt="図2" src="/files/ftp_upload/3949/3949fig2.jpg" /> 図2ナフィオンとTBABの最初の共同キャストフィルムの光学写真。遅乾収量boを覆う透明な、ライトブラウンフィルム秤量トレイのttom。

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</ol>

利害の衝突が宣言されません。

記載されている手順では、テトラアルキルアンモニウム塩は酵素を固定化と安定化するために使用することができミセルポリマーを作成するために商業的なナフィオンを変更するために使用されています。アッセイは、ポリマーは活性の高い保持と酵素の多種多様を固定するために使用することができる手順番組で説明しています。興味のある酵素が非常に低い活性を有する、または不純であれば、より高い濃度が必要になることがありますおよび10 mg / mL以上の濃度の酵素を固定化しない限り、固定化のプロセスに影響を与えるべきではありません。手続きの簡素化は合成の手順は（このようなポリマー合成や架橋など）を必要としないされているという点で、他の酵素固定化技術からそれを分離します。また、これらの合成の手順では、頻繁にタンパク質を変性または劇的に活性を低下させる。 1mg/mLのタンパク質濃度は、単に高い酵素ローディングのための提案された濃度である。低い酵素濃度は、常に用いることができる、しかし、以下の体積触媒活性になります。理論的には、高い酵素濃度は限り酵素は溶解として使用することができます。 ポリマーは、例えば、メタノー...

<table border="1"><tbody><tr><td> 試薬の名前 </td><td> 会社 </td><td> カタログ番号 </td></tr><tr><td>ナフィオン</td><td> Sigma-Aldrich社</td><td> 70160 </td></tr><tr><td>テトラアルキルアンモニウム臭化物塩</td><td> Sigma-Aldrich社</td><td> N / A </td></tr><tr><td>アルコール脱水素酵素</td><td> Sigma-Aldrich社</td><td> A3263 </td></tr><tr><td>ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド（NAD） </td><td> Simga-Aldrich社</td><td> N7004 </td></tr><tr><td>ピロリン酸ナトリウム</td><td> Sigma-Aldrich社</td><td> P8010 </td></tr><tr><td>フェナジンメトサルフェート（PMS） </td><td> Sigma-Aldrich社</td><td> P9625 </td></tr><tr><td> （DCIP）2,6 - ジクロロ</td><td> SIGMA-Aldrich社</td><td> D1878 </td></tr><tr><td>ブドウ糖酸化酵素</td><td> Sigma-Aldrich社</td><td> G7141 </td></tr><tr><td> 4 - ヒドロキシ安息香酸</td><td> Sigma-Aldrich社</td><td> 240141 </td></tr><tr><td>アジ化ナトリウム</td><td> Sigma-Aldrich社</td><td> S8032 </td></tr><tr><td>ペルオキシダーゼ</td><td> Sigma-Aldrich社</td><td> P8375 </td></tr><tr><td> 4 - アミノアンチピリン</td><td> Sigma-Aldrich社</td><td> 06800 </td></tr><tr><td> UV / VIS分光光度計</td><td>サーモ</td><td>進化260バイオまたはSpectronicジェネシス20 </td></tr><tr><td>渦魔神</td><td></td><td></td></tr><tr><td>化学てんびん</td><td></td><td></td></tr></tbody></taBLE&gt;

酵素の固定化と安定化のための疎水性の塩で修飾ナフィオン

Hydrophobic Salt-modified Nafion for Enzyme Immobilization and Stabilization

過去10年間、生体触媒、バイオセンサー、バイオ燃料細胞を含む固定し、安定した酵素を、アプリケーションの豊富がありました。最もbioelectrochemicalアプリケーションでは1-3、酵素や細胞小器官は、いくつかのタイプのを利用して電極表面に固定化されているポリマーマトリックス。このポリマー足場は、酵素の安定性を維持し、マトリックスの内と外の分子やイオンの容易な拡散を可能にする必要があります。彼らは水素原子またはイオン結合を介して酵素をカプセル化し、安定させることが酵素の自然環境を模倣ポリマー - 固定化のこのタイプに使用されるほとんどのポリマーは、ポリアミンまたはポリアルコールに基づいています。別の安定化酵素の方法酵素をカプセル化し、安定させることができる疎水性領域を含むミセルの使用を含む。特に、4,5、Minteerグループは、市販のナフィオンに基づくミセルポリマーを開発しました。6,7ナフィオン自体は、陽子や他の小さな陽イオンチャネルアシスト拡散することができミセル重合体であるが、ミセルとのチャネルは非常に小さいとポリマーが酵素固定化のために不利であるスルホン酸側鎖のために非常に酸性である。しかしながら、ナフィオンはそのような臭化テトラブチルアンモニウム（TBAB）のような疎水性のアルキルアンモニウム塩の過剰と混合されたときに、第四級アンモニウムカチオンは、プロトンを交換し、ポリマーの側鎖（ 図1）スルホン酸基のカウンターイオンとなる。このようなニコチンアミドアデニンジヌクレオチド（NAD）などの酵素機能するために必要な大型基板とイオンの拡散を可能にするポリマー内でより大きなミセルとチャネルでこの結果。この変更されたナフィオンポリマーは、バイオセンサーやバイオ燃料のセルで使用するために、さまざまな酵素の種類と同様にミトコンドリアを固定するために使用されています。8月12日本論文では、このマイクを行うための新たな手順を説明します酵素を安定させることができるellarポリマーの酵素固定化膜。ミセルの酵素固定化膜の合成、膜内に酵素を固定化するための手順、及び固定化酵素の酵素比活性を研究するためのアッセイは、以下に詳述されています。

この資料では、疎水性修飾ナフィオン酵素固定化膜方法と膜内のタンパク質および/または酵素を固定化とその特異的活性をテストするを合成するための手順を説明します。

過去10年間で、バイオカタリシス（生物学的触媒作用）、バイオセンサー、バイオ燃料など、固定化および安定化された酵素の応用例が数多く報告されています。

この手順の全体的な目的は、細胞内酵素の固定化および安定化のためのポリマーを合成することです。まず、Nafion懸濁液と臭化アンモニウム塩を混合し、ボルテックスミキサーで撹拌して、Nafionのプロトン化形態をアンモニウム塩に交換します。次に、得られた混合液をウェーイングボートに注ぎ、溶媒を蒸発させて、得られたポリマーを乾燥させます。次に、余分な塩を除去するため、ポリマーを脱イオン水に12〜24時間浸します。塩の抽出後、ポリマーを水で洗浄し、蒸発させて完全に乾燥させます。最後のステップとして、ポリマーを清潔なバイアルに移し、酵素固定化に使用するために溶媒で再懸濁させます。最終的に、このマイセル酵素固定化ポリマーは、活性測定における酵素の安定性を向上させるために使用されます。一般的に、この手法に慣れていない方は、手順が非常に単純に見えるため苦労することがありますが、機能性ポリマーの作製において乾燥工程は極めて重要です。本手順のデモンストレーションは、私の研究室の大学院生が行います。Nafionを第4級アンモニウム塩で修飾する手順を開始します。Nafionポリマー上のスルホン酸基に対して3倍モルの過剰量となるアルキルアンモニウムブロミド塩を量り取ってください。アルキルアンモニウムブロミド塩をガラスバイアルに激しく移します。5% (w/v) Nafion懸濁液のボトルを約30秒間振とうし、Nafionが溶液中に均一に懸濁していることを確認します。再懸濁したNafionを2 mLピペットで取り出し、AGUアンモニウムブロミド塩を含むガラスバイアルに加えます。バイアルを900 RPMで10～15分間ボルテックスします。次に、粘性溶液をプラスチック製量り皿に注ぎ、バイアルに残った溶液をピペットで量り皿に移します。この例では、量り皿を部分的に覆い、実験台の上に放置することで、溶媒が完全に蒸発するまで6時間以上かけて蒸発させます。適切な蒸発速度で全ての溶媒を完全に蒸発させると、ここで示されているように、秤量トレイの底に黄色または茶色の透明な膜が残ります。溶媒の蒸発が速すぎると、透明な膜の代わりにかさぶた状または結晶状の物質が形成され、これはポリマーのミセル構造が破壊されたことを示しています。溶媒の蒸発が遅すぎるか、あるいはアンモニウム塩を長時間反応させて水蒸気を吸収させすぎた場合は、粘着性のあるオレンジ色のゲルまたは白い結晶状物質が形成されます。いずれの場合でも、手順を最初からやり直す必要があります。適切な蒸発速度ですべての溶媒が蒸発した後、計量トレイに18 MΩ·cmの脱イオン水を10〜20 mLまで満たし、過剰な臭化アンモニウム塩およびHBrを除去するために12〜24時間浸漬させます。12〜24時間後、水をピペットで吸い出し、トレイがいっぱいになるまで脱イオン水を加えます。ポリマーフィルムを紛失しないよう、常にフィルムから離れた位置から水を吸い出すように注意してください。すすぎの後、合計3回洗浄します。ポリマーが完全に乾燥するまで、計量皿に蓋をせず放置してください。完全に乾燥すると、ポリマーは透明でやや脆いプラスチックフィルム状になります。対照的に、適切に乾燥されていないポリマーは、ここで示されているように、塩抽出後に全く異なる外観になります。スパチュラを使用して、計量皿から乾燥したフィルムを注意深く取り除き、清潔なガラスバイアルに移します。2 mLのエタノールと3個のセラミックミキシングビーズを加え、ポリマーフィルムが完全に再懸濁するまで、または4時間、ボルテックスします。アルキルアンモニウム修飾ナノ粒子溶液が完成し、酵素の固定化に使用できる状態になりました。固定化する酵素が粉末状である場合は、1.5 mLマイクロ遠心チューブに酵素を1 mg量り取り、100 mMのpH 7リン酸緩衝液を1 mL加えて、1 mg/mLの酵素溶液を作成します。この1 mg/mL酵素溶液を120 µL取り、新しいチューブに移します。ALKアンモニウム修飾ナフィオン溶液を60 µL加え、10秒間ボルテックスします。多数のレプリケートを作成するためにこの混合物のスケールアップを行う場合は、酵素とポリマー溶液の比率を2:1に維持する必要があります。最後に、酵素ポリマー溶液60 µLを3つの独立した1 cm²キュベットの底にピペッティングし、一晩乾燥させます。ポリマーフィルム内における酵素の安定性は、実演した酵素活性測定により評価できます。次に、このアッセイを開始するために、修飾NafionポリマーとNAD依存性脱水素酵素を共キャストしたキュベットに、以下の試薬を添加します。50 mM ピロリン酸ナトリウム 1.3 mL、調製直後の 15 mM ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド（NAD） 1.5 mL、および水 0.1 mL です。キュベットを、波長340 nmに設定したUV-Vis分光光度計に設置し、ゼロ点調整を行います。分光光度計を用いて、キュベットに0.1 mLのエタノールを加え、ピペッティングで溶液を5回ゆっくりと吸い上げ、混ぜ合わせます。ブランクには、0.1 mLのエタノールの代わりに、0.1 mLの超純水を使用してください。試薬をキュベットに加えてから5分後に、340 nmにおける吸光度を測定します。試薬をqveに添加してから20分後に、再度吸光度を測定します。これら2つのデータポイントをプロットして得られた傾きを用いて、固定化pqの酵素特異的活性を測定するための活性計算を行います。PQQ依存性脱水素酵素について、これらの試薬を、修飾nafionポリマーとPQQ依存性脱水素酵素と共に共鋳型化したqveにピペッティングします。1.5 millilitersのリン酸ナトリウムと、200 microlitersの600 micromolar pHメチルスルファートまたはPMSを使用します。キュベットを波長 600 nanometers に設定した紫外可視分光光度計に設置し、ゼロ点調整を行います。分光光度計を用いて、700 microliters の 2-クロロ-5,6-ジメチルベンゾチアゾール（CDT）または DCIP と 200 microliters の目的の基質との混合液 100 microliters を添加します。ブランクとして、ピペッティングで溶液を緩やかに5回吸い上げ、混ぜ合わせます。目的の基質の代わりに、200 µLの水を加えます。試薬を添加して5分後、600 nmにおける吸光度を測定します。本アッセイの試薬添加から20分後に、再度吸光度を測定します。改質Nafionポリマーおよびグルコースオキシダーゼと共に共キャストしたQ VETに、以下の成分を含む溶液2 mLを添加します：0.2 M パラヒドロキシ安息香酸、0.02% アジ化ナトリウム、128 units のペルオキシダーゼ、0.3 mM 4-アミノアンチピリン、1 M リン酸カリウム、および 50 mM グルコース。ピペッティングを5回繰り返し、溶液を調製します。Q vetを波長510 nanometersに設定したUV visible spectrophotometerに設置します。試薬をqveに添加してから5分後に測定を行います。510ナノメートルの吸光度を測定します。その後、試薬添加から20分後に再び吸光度を測定します。この表は、固定化されたNAD依存性グルコース脱水素酵素の活性と、選択された修飾ナフィオンポリマーの分析結果を示しています。固定化されたNAD依存性グルコース脱水素酵素は、酵素と緩衝液の溶液よりも比活性が低いことが観察されました。これは、ポリマー膜が大きな分子の輸送を低下させるためであり、アッセイの基質であるグルコースは小さいものの、補酵素であるNADが膜内外を拡散する必要があるためです。NAD依存性脱水素酵素において、ポリマーへの固定化による輸送制限は、観察される酵素活性を低下させます。次の表は、固定化されたPQQ依存性グルコース脱水素酵素の活性および、選択された修飾ナフィオンポリマーのアッセイ結果を示しています。ここで重要なのは、緩衝液中の酵素と比較して、ほとんどのナフィオンフィルム上に固定化された酵素の活性が高いことです。PQQ依存性グルコース脱水素酵素は膜結合性タンパク質であるため、疎水性に修飾されたミセル状のナフィオンは、緩衝液よりも膜に近い環境を提供して活性を持つPQQ依存性グルコース脱水素酵素を安定化させ、その結果、酵素活性を向上させます。最後に、グルコースオキシダーゼ比活性の代表的なアッセイ結果を示します。固定化および選別された修飾ナフィオンポリマーを表にまとめています。3種類の酵素それぞれを用いた各ポリマーの酵素アッセイにより、遊離酵素および溶液と比較した相対比活性の傾向は、酵素系によって異なることが分かります。したがって、各酵素に必要となる正確なポリマーを最適化する必要があります。この手順を行う際は、乾燥ステップがこの特定のプロトコルにおいて極めて重要であることを忘れないでください。

hydrophobic-salt-modified-nafion-for-enzyme-immobilization

Research

JoVE Journal

Bioengineering

バイオエンジニアリング（生体工学）

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