2007年11月1日
このビデオでは、プラズマの結合なしニューロンマイクロ流体デバイスを使用する方法を示します。
フォトリソグラフィーやソフトリソグラフィーを日常的に行う研究室には、通常「プラズマクリーナー」と呼ばれる装置が備わっています。プラズマクリーナーには電気コイルが搭載されており、これにより電子、イオン、中性原子、および分子からなる部分的にイオン化されたガスが生成されます。プラズマはガラスとデバイスの表面に反応性種を生成し、それらを接合させることで恒久的な結合が形成されます。
また、プラズマ処理によってデバイスの表面が親水性になり、液体の添加が容易になります。しかし、場合によっては、不可逆的な永久結合が好ましくないこともあります。さらに、多くの研究室ではプラズマクリーナーを利用することができません。
この懸念を解消するため、本日はニューロンデバイスとカバーガラスの可逆的な非プラズマ接合について実演します。PDMSとガラスの間に生じる静電引力によって、細胞培養に適した水密性の高い接合が形成されます。それでは、本日の実演を担当するKiana Leeを紹介します。
Corning社製のNo.1 24 mm × 40 mm カバーガラスを、超音波洗浄機を用いて洗浄します。カバーガラスをステンレス製のラックにセットし、脱イオン水を満たしたガラス容器に入れます。その後、このガラス容器を超音波洗浄機内に設置します。
その後、ガラススライドを30分間超音波洗浄します。超音波洗浄後、ガラス容器から脱イオン水を捨てます。ガラススライドが入ったガラス容器に70% ethanolを注ぎ、無菌状態を維持するために標準的なバイオセーフティキャビネット内に入れます。
70% ethanolで洗浄した後、ステンレス製ラックをガラス容器から取り出し、ガラススライドを数時間または一晩放置して完全に乾燥させます。次に、安全キャビネット内で、PLL溶液を満たした容器にガラススライドを浸し、PLLコーティングを行います。ガラススライドをPLL溶液に最低3時間、または一晩浸漬させます。
PLLコーティング後、ディッシュからPLL溶液を取り除き、ガラススライドを脱イオン水で十分にすすぎます。PLLコーティングしたガラスを数回水ですすいだ後、ディッシュに水を満たし、ガラススライドを数時間水に浸しておきます。脱イオン水に数時間浸した後、ディッシュから水を吸引して取り除きます。
ガラススライドを素早く洗浄した後、ディッシュから取り出してステンレス製のラックに配置し、一晩乾燥させます。バイオセーフティキャビネット内で、Neuronデバイスをキャビネット内に持ち込み、70% ethanolで十分に洗浄して滅菌します。その後、デバイス上の余分なethanolを吸引して除去します。そして、デバイスをバイオセーフティキャビネット内で一晩乾燥させ、翌日に使用します。
この滅菌済みニューロンデバイスを、洗浄・滅菌しPLL処理を施したガラスの上にそのまま配置します。PDMSがガラスとの間で可逆的な結合を形成し、液漏れのない密閉状態になります。緩やかな圧力でデバイスをガラスに接着させるか、あるいは直ちにデバイスに培地を添加します。
組み立て後、デバイスに培地または細胞を添加するまで時間を空けすぎると、液体がデバイス内に導入しにくくなる可能性があります。プラズマ処理されていないデバイスでは、プラズマ処理されたデバイスに比べて液体の導入速度が遅いことに注意してください。プラズマ処理直後のデバイスは親水性であるため、液体が容易に流入しますが、プラズマ接合されていないデバイスでの流れは大幅に遅くなります。
場合によっては、ピペットを使用して液体をデバイス内に強制的に注入する必要があるかもしれません。このビデオでは、ニューロンデバイスをカバーガラスに非プラズマ接合させる方法を示しました。これは、PDMSをガラス表面に可逆的に結合させるための効率的で安価な手法です。
このビデオが有益で役立つものであったことを願っております。John Labからは以上です。ご視聴ありがとうございました。
このビデオでは、プラズマボンディングを必要とせずにニューロン用マイクロ流体デバイスを使用する方法を実演します。この手法により、デバイスとガラスの間で可逆的な接合が可能となり、細胞培養に適した環境が提供されます。
本手法は、神経科学研究におけるマイクロ流体デバイス向けに、コスト効率が高く可逆的な接合アプローチを提供し、プラズマ洗浄装置に依存することなく細胞培養への応用を可能にします。本手法は、神経細胞培養に適した水密シールを提供することで、初期段階のターゲットバリデーションおよびアッセイ開発を支援し、同時にリソースの限られた研究室におけるアクセス上の障壁を解消します。また、培養後にデバイスを取り外して免疫染色や顕微鏡観察などのダウンストリーム解析が行えるため、トランスレーショナルな継続性を向上させます。
本手法は、ニューロン培養用のマイクロ流体デバイスの無菌的かつ可逆的なアセンブリを可能にすることで、標的バリデーションから機能的スクリーニングへの移行を支援し、初期の創薬ワークフローに組み込むことができます。