Name: 個々の腎細胞がんの中のタンパク質発現変動を探るために逆相タンパク質アレイ（RPPA）の使用 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-01-22T13:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 22 s
Description: 学ぶ 逆相タンパク質アレイ（RPPA）を用いて腎細胞がんにおけるタンパク質発現変動を解析する方法です。腫瘍の異質性領域をマッピングし、治療前後のタンパク質発現差を評価することで、治療抵抗性のメカニズム解明と新規治療標的の同定に貢献します。

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ETM37と癌研究英国の実験的がん医療センターでサポートされている：チーフサイエンティストオフィス、承認番号によって運営されている上記の作家FCO、DF西澤、DJHとGDSの仕事は言及した。 ALの仕事はエディンバラロバート·トラスト、ケア、がんや医療研究評議会の治療のためのメルヴィル·トラストの外科医のロイヤルカレッジによって賄われています。 IOはマリー·キュリー·アクションと英国医学研究評議会によってcofundedエジンバラスコットランド政府フェローシップの王立協会によってサポートされています。著者らは、この論文に記載された内容の一部に彼らの有益な議論のためにSCOTRRCC共同申請者と協力者に感謝したいと思います。

1。形態学的および分子腫瘍の不均一性の識別<ol><li>腫瘍は、-80℃の冷凍庫から取り出し、ドライアイス上に保持。 </li><li>約1cm 3の部分に腫瘍を分割します。各腫瘍互いに相対セクションとユニークな名前のラベルの元の位置をマップします。ストアサンプル-80個クライオバイアル℃·使用するための準備が整うまで。 </li><li>コー​​トのサンプル10月と-22℃のクライオスタットでカット</li><li>サンプルは、ヘマトキシリン​​およびエオシン対比染色法を用いて染色した。 </li><li>彼らはccRCC自然、生存腫瘍及び格付のための（凍結切片上Fuhrmanグレード1から4を区別するために挑戦低悪性度、高悪性度または混合高/低グレード）があることを確認するように凍結切片の顕微鏡分析図1＆B（H＆E染色高い低いと混合グレード）。 </li><li>タンパク質抽出のために各々の腫瘍内の各形態学的に異なる領域から最大で4つのサンプルを選択します。 </li></ol> 2。腫瘍サンプルからのタンパク質抽出<ol><li> 10月からの腫瘍サンプルをカットします。 </li><li>溶解バッファー990μLで2 mlチューブにティッシュの代わりに50から75ミリグラム[50mMトリス - 塩酸（pH7.5）、5mMのEGTA液（pH8.5）、150mMのNaCl]アプロチニン（シグマA6279）（10ミリグラムを補充/ ml）を、ホスファターゼ阻害剤カクテル2（シグマP5716）、ホスファターゼ阻害剤カクテル3（シグマP0044）およびプロテアーゼ阻害剤カクテル（Roche、11836153001）。 </li><li>各チューブに単5ミリメートルの鋼球を追加し、二回各5分間経過後、TissueLyserを用いた均質化のレベルを確認する5分間50Hzでホモジナイズする。 </li><li>後ろに鋼球を残して、ピペットを用いて新しい2 mlチューブに均質化したサンプルを転送します。 </li><li> 4℃で30分間13000×gで遠心分離する前に、各サンプルにTriton X-100を10μlを追加</li><li>新しいマイクロチューブに上清を移してください。 </li><li> BCAアッセイ（ 図2）を用いてタンパク質濃度を決定します。 </li><li>1 mg / mlとなるようにタンパク質濃度を正常化する。 </li></ol> 3。抗体の検証<ol><li>ウェスタンブロットのために、タンパク質サンプルを（適切な細胞株や組織から抽出）を準備し、10％SDS-PAGEゲル上で実行されます。 </li><li> 4℃で一晩、ニトロセルロース膜上にサンプルを転送℃に</li><li>室温で1時間LI-CORのオデッセイブロッキングバッファー（PBSに50:50に希釈）で膜をブロックします。 </li><li>メーカーでLI-CORのオデッセイブロッキングバッファーで一次抗体（PBS中に50:50に希釈）希釈する希釈は1,000で、典型的には1をお勧めします。 </li><li> 4℃で一晩、一次抗体で膜をインキュベート</li><li> 0.1パーセントのPBS-Tween20にて（; 1ミリリットルツイーン20 / 1L PBS PBS-T）を作る。 </li><li> 5分（×3）室温でPBS-Tで洗浄する。 </li><li> 1:10,000希釈（1.5μl/15ml）でSDS（PBS中で50:50に希釈）を0.01％ブロッキングバッファーオデッセイに蛍光標識二次抗体を希釈します。 </li><li>二次で膜をインキュベート穏やかに振盪しながら45分間室温で抗体 - それが最終的にスキャンされているような時間まで光から膜を保護することが重要です。 </li><li>暗闇の中で膜を保つ5分（×3）、室温でPBS-Tで洗浄する。 </li><li>再び暗闇の中で膜を維持し、残留Tween20を削除するには、5分（×3）室温でPBS中で洗浄する。 </li><li>暗闇の中で濾紙上に平坦な膜を嘘と空気乾燥することができます - メンブレンを乾燥させると、信号を強化し、バックグラウンドを低減するが、ストリッピング、再プロービングするため、それが役に立たなくなる可能性があります。 </li><li> LiCorオデッセイスキャナー上に膜をスキャンします。それをスキャンしたようになるまで、暗闇の中で膜を保つ。 </li><li>唯一の正しい分子量の単一支配的なバンドを生成する抗体を選択する。 図3は RPPAで使用するために許容され、受け入れられない抗体の例を示します。 </li></ol> 4。 RPPAぷりnting <ol><li>タンパク質可溶化液をマイクログリッドIIロボットスポッターを用いてニトロセルロースでコーティングされたガラススライド（Fastslides-Whatman社製）上にスポットした。使用されるスライドは、試料をスポットし、その上に2つのパッドを含んでいた。各パッドは同一のサンプル、この場合は100サンプルで発見された。他の利用可能なフォーマットは、1、8、16パッドのスライドが含まれています。パッドの数字が大きいほど小さく、それぞれにスポットできるサンプル数。 </li><li> 5 2倍希釈系列を、各サンプルから作られた、それぞれがその後（サンプルあたり15箇所の合計になります）三重で発見された。 </li></ol> 5。 RPPAタンパク質検出<ol><li>過剰LiCorブロッキングバッファー（PBSで希釈50:50）でぬれたスライド。ロッキングプラットフォーム上で室温で1時間インキュベートします。 </li><li>所望の濃度のLiCorブロッキングバッファー（PBSに50:50に希釈）で一次抗体800μlのを準備し、氷上で保存する。 </li><li>は、（i）単一のフレーム·チップ·クリップでスライドをマウントタイトなシールがスライドとインキュベーションチャンバーとの間に形成されるように、または（ii） &#39;FastFrame&#39; 4ベイのスライドホルダー。 </li><li>井戸から残った液を取り除き、それぞれのウェルに600μlの一次抗体を加える。 </li><li>一晩4プラットフォームを揺らしに密封されたウェットボックス、インキュベートにスライドとチャンバーを置き℃に</li><li> 0.1パーセントのPBS-Tween20にて（;100μlのツイーン100分の20 mlのPBS PBS-T）を作る。 </li><li>寒い部屋からスライドを取り外し、慎重に各ウェルからの一次抗体を除去します。 </li><li> PBS-Tを600μlを加え、5分間（X3）をRTでプラットフォームを揺らしでスライドを洗浄してください。 </li><li>オデッセイブロッキングバッファー（PBSに50:50に希釈）0.01％第一審の1:2,000希釈（1μL/ 2ミリリットル）のSDSで希釈することにより、蛍光標識二次抗体を準備します。 </li><li>井戸からバッファを削除し、各ウェルに600μlの蛍光標識二次抗体を加える。穏やかに振とうしながら45分間室温で二次抗体をインキュベートする - それをそれが最終的にスキャンされているようになるまで、光から膜を保護することが重要です。 </li><li>室温で600μlのPBS-Tでよく洗浄し、短時間（X3）からの二次抗体を除去する。キャリアからスライドを外し、適当な容器に移し、暗闇の中で膜を維持し、15分間超過PBS-Tで洗浄してください。 </li><li>再び暗闇の中で膜を維持し、残留Tween-20を除去するために、PBS-T、15分間室温でPBSでさらに洗浄膜を取り除きます。 </li><li> 10分間、50℃のオーブンでFastslideを乾燥してから、LI-CORオデッセイのスキャナでスキャンしてください。それがスキャンされるまで、暗闇の中でスライドを保つ。 </li><li>二次抗体/使用する抗体に応じて680 nmおよび/または800 nmでスライドをスキャンします。 2色の検出のために常に交差反応性を最小限にするために高度に架橋吸着した二次抗体を使用しています。一次抗体および二次抗体を慎重に選択するには、2つの色の検出のために必要である。第一に重要での選択である2次抗体に異なるホスト種（ 例えば、ウサギ、マウス）。これは容易に区別できる発光スペクトルと色素で標識された抗ウサギ抗マウス二次抗体による差別ができます。 </li><li>画像ファイルは、。TIFFファイルとして保存されます。 図4（スキャンしたファイルの画像）。 </li></ol> 6。データ解析<ol><li> MicroVigeneソフトウェア（VigeneTech、カーライル、マサチューセッツ州、米国）を起動します。 </li><li> RPPAスライドのスキャンを含む。TIFFの画像ファイルを開きます。 </li><li> RPPAスライドの画像をオーバーレイするグリッドを持って事前に定義されたテンプレートファイルを選択します。 </li><li>クリックしてグリッドを起動するために、 関心領域 （ROI）ボタンの領域を定義します 。 </li><li> RPPAスポット上にグ ​​リッドを配置します。 図6a（画像上にグ ​​リッドの画像）。 </li><li>すべてのROIを強調表示するには、[ すべて選択]ボタンをクリックします。 </li><li> すべて検索]をクリックします。 MicroVigeneはAUTOMますatically ROIを見つけ、スポットを見つける、バックグラウンドを差し引き、ほこりを除去し、スポットを定量化する。 </li><li> RPPAスライド上のすべてのサンプルの結果を表示するために表示希釈曲線]ボタンをクリックします。 </li><li> 希釈のデータを保存]をクリックします 。 </li><li>として各サンプルはエラーのリスクを削減し、カーブフィッティングの質を向上させ、分析する15点が存在する三重に各5希釈ポイントにプリントされています。 MicroVigeneは、抗原抗体結合反応速度のS字曲線を生成するために全てのスポットを組み込んだ4パラメータロジスティックログモデル&quot;Supercurve&quot;アルゴリズム（ 図6b）を生産しています。前提は同じ抗体-抗原結合反応速度は、一般的な応答曲線に合わせてアレイ上のすべてのスポットを取ることによって、このようにしても、別のサンプルでは、各試料スポットで行われていると、カーブフィッティング10,11の自信を高めることができるということです Y = A +（（BA）/（1 + E（C * D-LN（X））） ここで、xはdilutioですnの係数とYは信号強度である。 サンプルは比較的我々の分析でsupercurveへそれらをマッピングした後のxの値の中間点でyの値に対応したY0値を用いて解析することができます。 </li><li> 図7のように、Microsoft ExcelとプロットY0でデータをエクスポートします。 </li><li>腫瘍内タンパク質変動をANOVAの枠組みの中で未処理と処理治療を受けた患者のために別々に計算された。分析されたすべてのタンパク質からのデータを組み合わせる分散分布は、Mann-Whitney検定（MWT）に比較した。個々のタンパク質の腫瘍内分散はLillefoursとFlignerテストを用いて評価し、それぞれ正常と等分散性の仮定が開催されたF検定により比較した、偽の発見率（FDR）の補正が12を適用した。未処理および処理された患者のサンプル間の差動タンパク質発現は、スチューデントのt検定を用いて、各タンパク質について試験したところ正常と等分散性の仮定sがそうでなければ、MWTを行ったところ、満たされた、ルーズベルトは、結合されたt-検定とMWT値12の上に塗布した。タンパク質のタンパク質発現と分散ピアソン相関の有意性は、[R参照]とFDR応用12の標準的なアプローチを用いて推定された。 </li></ol>

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</ol>

特別な利害関係は宣言されません。

ここで紹介するRPPA法はタンパク質解析の広く使​​われているが、比較的低いスループットウエスタンブロット法に高スループットの代替を表しています。この方法は、サンプルの数は半定量的に解析し、細胞株や組織サンプルの幅広い選択を越えて重要なタンパク質の直接比較を可能にし同時に比較することができます。異なる抗体種と多重化はさらに複数の抗体を同時に使用することができるようにする技術の電力を増加させる。ここで紹介する例では、腫瘍の不均一性と異質性についての標的療法の効果の研究でRPPAの能力を強調しています。 手法としてRPPAは、抗体の選択が非常に重要となっている重要なステップの数を持っています。技術の抗体特異性のドットブロットの性質のため、分析中に確認することができませんし、使用前に確認しておく必要があり。現在の研究では83抗体が有効であった唯一の58（〜30％の割合に失敗）に合格しているのウエスタンブロットにated。 RPPA（95％の成功率）の分析。その他の重要なステップはRPPAでサンプルを発見する濃度の選択にスライドだけでなく、スポッティングの均一性が含まれている場合に、これら...

<table border="1"><tbody><tr><td> 試薬の名称 </td><td> 会社 </td><td> カタログ番号 </td></tr><tr><td>アプロチニン</td><td>シグマ</td><td> A6279 </td></tr><tr><td>ホスファターゼ阻害剤カクテル2 </td><td>シグマ</td><td> P5726 </td></tr><tr><td>ホスファターゼ阻害剤カクテル3 </td><td>シグマ</td><td> P0044 </td></tr><tr><td>プロテアーゼ阻害剤カクテル</td><td>ロッシュ</td><td> 11836153001 </td></tr><tr><td>トリトンX-100 </td><td>トリトン-X </td><td> T8787 </td></tr><tr><td>ブロッキングバッファーLI-CORのオデッセイ</td><td> LI-COR </td><td> 927から40000 </td></tr><tr><td> TissueLyserを</td><td>キアゲン</td><td> 85600 </td></tr><tr><td>マイクログリッドIIロボットスポッター</td><td> Biorobotics </td><td></td></tr><tr><td> FastFrame &#39;4ベイのスライドホルダー</td><td>ワットマン</td><td> 10486001 </td></tr><tr><td> FASTスライド - 2 - パッド</td><td>ワットマン</td><td> 10485317 </td></tr><tr><td> IRDye 680LTヤギ抗マウスIgG </td><td> Licor </td><td> 926から68020 </td></tr><tr><td> IRDye 800CWヤギ抗ウサギIgG </td><td> Licor </td><td> 926から32211 </td></tr></tbody></table>

個々の腎細胞がんの中のタンパク質発現変動を探るために逆相タンパク質アレイ（rppa）の使用

The Use of Reverse Phase Protein Arrays (RPPA) to Explore Protein Expression Variation within Individual Renal Cell Cancers

現在、転移性明細胞腎細胞癌に対する根治的治療法、病気の最も一般的な変形はありません。この治療抵抗性の重要な要因は、病気の1の分子複雑であると考えられている。例えば、チロシンキナーゼ阻害剤（TKI）スニチニブとして標的療法が利用されてきたが、患者のわずか40％は1年以内に2回再発、これらの患者の圧倒的多数で、対応させていただきます。腎細胞癌患者における内因性および獲得耐性のような質問のように、関連性の高い3です。 効果的な、パーソナライズされた治療法の開発を最終目標として、TKIsに対する抵抗性を研究するために、標的療法の具体的な期間の後、順次組織は、慢性骨髄性白血病4で成功した証明したアプローチが必要になります。しかし腎細胞癌におけるそのような戦略のアプリケーションは、bの高レベルによって複雑になる腎細胞癌5,6だけでなく、他の固形腫瘍7の特徴であるOTH間および腫瘍内不均一性。トランスクリプトームとの遺伝的差異に起因Intertumoral異質性は十分にあっても同様のプレゼンテーション、ステージと腫瘍の悪性度の患者では確立されています。それに加えて、さらに大きな分子多様性を表現する可能性がある、RCCに大きな形態学（腫瘍）異質性が、そこにあることは明らかである。結合された形態素解析とFuhrmanグレーディングによってRCC腫瘍の詳細なマッピングや分類は、プロテオーム解析のための代表的な領域を選択することができます。 RCC 8のタンパク質ベースの分析では、原因病理研究室でその広範な可用性に魅力的ですが、そのアプリケーションは、特異的抗体9の限られた有用性のために問題になることがあります。逆相タンパク質アレイのドットブロット性質（RPPA）、抗体の特異性がなければなりませんbに起因電子事前検証、使用する抗体のような厳密な品質管理としては極めて重要である。この制限にもかかわらず、ドットブロット形式は、単一のニトロセルローススライド上にサンプルの数の印刷が可能になり、アッセイの小型化が許可されています。印刷されたスライドは、その後、多重化を可能にする、標的特異的一次抗体と蛍光標識二次抗体を用いてウエスタン分析と同様の方法で分析することができます。スライド上のすべてのサンプル間の差動タンパク質の発現は、その後、より費用対効果の高い、高スループットの方法で蛍光の相対的なレベルを比較することによって、同時に解析することができます。

スキャンRPPAスライドの例が示されて680と800nm ​​の両方のチャネルを図4（i）で見ることができます。波長は、 図4（ii）で画像を分離することにより、解析対象とするRPPAスライドや図4（iii）を決定し、個々のタンパク質の発現に各パッドを有効にします。 図4に見られるように、（iii）のサンプル間の個々のタンパク質の発現がゲルゾリンははるかに低いタンパク質の発現を持っCMYCに比べてスライドを越え高レベルの発現を備えた一意のですが、それでも普遍的にすべてのサンプルを横切っ表明テストされています。これとは対照的に、CD10は、特定のサンプルがほとんど、あるいは全く発現が検出持つ他の試料にもかかわらず、高レベルの発現を与えると、変数式を行いました。最後pJAK2はバックグラウンドレベルより上の任意の検出可能なタンパク質発現を生み出すことができなかった。品質管理の観点からpJAK2の結果は、それらのに対し、容認できないでしょうCD10は、スライド上のサンプル数の...

RPPAは、蛍光標識抗体を用いて、同時に尋問するニトロセルローススライド上に印刷されたサンプルの何百ものタンパク質の発現を可能にします。このテクニックは、明細胞腎癌内薬物治療の異質の効果を研究するために適用されています。

個々の腎細胞がんの中のタンパク質発現変動を探るために逆相タンパク質アレイ（RPPA）の使用

Currently there is no curative treatment for metastatic clear cell renal cell cancer, the commonest variant of the disease. A key factor in this treatment ...

この手順の目的は、逆相タンパク質アレイまたはRPPAを使用して、腎細胞がんのプロテオミクス発現変動を研究することです。これは、最初に個々の腫瘍の不均一な領域をマッピングして選択することによって達成されます。2番目のステップは、サンプルからタンパク質を抽出することです。次に、タンパク質を正規化し、RPPAスライドに印刷します。最後のステップは、目的のタンパク質に対する抗体を使用してスライドを分析することです。最終的に、RPPAは、腎細胞がんの2つの治療群におけるプロテオミクス発現の変動差を示すために使用されます。この方法は、腎細胞がんの分野におけるいくつかの重要な質問に答えるのに役立ちます。優れたタンパク質の不均一性が存在します。この技術の意味するところは、標的療法で治療されている腎細胞がん患者の治療にプラスの影響を与える可能性があるということです。これは、組織サンプルの治療前と治療後の両方の不均一性を調査できるため、これらの治療に対して獲得した耐性を発現する患者のための新しい創薬可能な標的を特定できると期待できるためです。クライオスタットとH膝の手順のデモンストレーションは、研究所マネージャーのHelen Caldwellが、タンパク質抽出技術のデモンストレーションは、私たちのグループの研究技術者であるJo Nandaが行います。OR PPA印刷のデモンストレーションは、セントアンドリュースの同僚であるピーター・ミューレンです。この手順を開始するには、マイナス80°Cの冷凍庫から腫瘍を取り出し、ドライアイスの上に置いておきます。腫瘍を約1センチメートルの立方体のセクションに分割します。各腫瘍切片の元の位置を互いにマッピングし、一意の名前でラベルを付けます。OCTでサンプルをコーティングし、サンプルを染色した後、摂氏マイナス22度のクライオスタットで切断します。ヘマット、トイン、DSNカウンター染色法を用いて、凍結切片を顕微鏡で分析します。切片が明細胞腎細胞癌の生存可能な腫瘍であることを確認し、それらを高悪性度、低悪性度、または低悪性度と高悪性度の混合として等級付けします。タンパク質抽出のために、各腫瘍内の形態学的に異なる各領域から最大4つのサンプルを選択します。これは、腫瘍サンプルからのタンパク質抽出の次に示されます。50〜75ミリグラムのティッシュを置きます。CTから2ミリリットルのチューブにカットします。990マイクロリットルの溶解バッファーを添加し、タンパク質インとホスファターゼおよびプロテアーゼ阻害剤を添加します。各チューブに5mmの鋼球を1つ加え、50ヘルツで5分間均質化します。ティッシュレーザーを使用します。均質化のレベルを確認してから、さらに 5 分間均質化します。ピペットを使用して、均質化されたサンプルを新しい2ミリリットルのチューブに移し、鋼球を各サンプルに10マイクロリットルのTriton X 100を残し、その後、摂氏4度で30分間Gの13,000倍で遠心分離します。S上清を新鮮なマイクロ遠心チューブに移し、BCAアッセイを使用してタンパク質濃度を測定します。PPA印刷前にタンパク質濃度を1ミリグラム/ミリリットルに正規化しました。各サンプルから、5つの2倍希釈液を連続して作製します。この手順の最も時間のかかる側面の1つは、スライドを印刷する前にダブルチェックを行うことで、何百もの希釈を成功させることです。次に、マイクログリッド2ロボットスポッターを使用して、ニトロセルロースコーティングされたスライドガラス上のタンパク質溶解物を見つけます。各サンプルはトリプリケートでスポットされ、サンプルあたり合計15のスポットが得られます。この実験で使用されたスライドには、サンプルを見つけるための2つのパッドが含まれていました。各パッドには同一のサンプル(この場合は100個のサンプル)が見つかりました。その他の利用可能な形式には、1つの8および16パッドスライドが含まれます。パッドの数が多いほど、各パッドに配置できるサンプルの数は少なくなります。タンパク質検出の手順を開始するには ウェットスライド、過剰なブロッキングバッファー、インキュベート室温 ロッキングプラットフォームで1時間、ブロッキングバッファーに800マイクロリットルの一次抗体を所望の濃度で調製し、氷上に保ちます。1時間のインキュベーション後。ブロッキングバッファーでは、シングルフレームのチップクリップまたはファストフレームの4ベーススライドホルダーのいずれかにスライドを取り付け、スライドとインキュベーションチャンバーとの間にしっかりとしたシールが形成されます。ウェルから残留バッファーを取り出し、600 マイクロリットルの一次抗体をそれぞれのウェルに加えます。スライドとチャンバーを密閉されたウェットボックスに入れ、翌朝、ロッキングプラットフォームの上で摂氏4度で一晩インキュベートします。冷蔵室からスライドを取り出します。それぞれから一次抗体を慎重に取り除きます。よく20またはPBSTの間に0.1%PBSの600マイクロリリースを追加し、室温で5分間ロッキングプラットフォーム上でスライドを洗浄します。この方法で、PBST を新しい PBST に交換します。スライドを合計3回洗います。ウェルからバッファーを取り出し、600マイクロリットルの蛍光標識二次抗体を適切な希釈でそれぞれのウェルに加えます。二次抗体と室温で45分間、穏やかに振とうしながらインキュベートし、スキャンするまでメンブレンを光から保護することが重要です。45分後、ウェルから二次抗体を取り出し、室温で600マイクロリットルのPBSTで3回短時間洗浄します。スライドをキャリアから取り出し、適切な容器に移し、余分なPBSTを15分間洗います。メンブレンを暗闇に保ちます。PBSTを除去し、メンブレンをPBSで室温で15分間洗浄して、メンブレンを暗所に保ちながら、残留tween 20を再度除去します。摂氏50度のオーブンで10分間高速スライドを試してみてください。最後に、使用する二次抗体に応じて、スライドを680ナノメートルまたは800ナノメートルとしてスキャンします。スライドをスキャンするまで、スライドを暗くしてください。画像をTファイルとして保存します。スキャンされたRPPAスライドの例は、680ナノメートルと800ナノメートルの両方のチャネルが示されているこの図に見られます。画像を波長ごとに分離することで、ここに示すように、RPPAスライド上の各パッドを分析し、個々のタンパク質発現を決定することができます。サンプル全体での個々のタンパク質の発現は独特で、ゲルソインはスライド全体で高いレベルの発現を示し、cmicはタンパク質発現がはるかに低いにもかかわらず、テストされたすべてのサンプルで普遍的に発現しています。対照的に、CD 10は可変発現を示し、特定のサンプルは高いレベルの発現を示しましたが、他のサンプルは発現がほとんどまたはまったく検出されませんでした。最後に、p JK 2は、バックグラウンドレベルを超える検出可能なタンパク質発現を産生することができませんでした。次の図は、二次抗体と他の分子種の一次抗体との間に交差反応性がないことを示しています。左下の画像は、正しい波長680ナノメートルでスキャンした二次抗体を用いたタンパク質発現の検出を示しています。右側の画像では、800ナノメートルの誤った波長でスキャンされたタンパク質の発現は検出されません。RPPAスライド上のすべてのサンプルの比較分析に使用されるスーパーカーブの例を次に示します。緑のスポットは許容可能なスポットを表し、赤のスポットは分析ソフトウェアの事前定義された制限に基づく外れ値を表します。スーパーカーブは、相対的なタンパク質ベースの発現データを生成するために使用されます。この図は、3枚のRPPAスライドにおける代表的なタンパク質mlh 1の発現レベルを示しており、RPPAが処理済みサンプルと未処理サンプルの違いをどのように検出できるかを強調しています。ここでの各サンプルは、腫瘍のサブリージョンに対応しています。次の図は、サンプルを処理に基づいてグループ化した後の mlh のタンパク質発現差を示しています。治療前と治療後のサンプル間の mlh 1 発現の腫瘍内分散を計算すると、治療前群で MLH 1 発現が高値であることがわかった。処理に基づいてサンプルをグループ化した後、処理後のサンプルでより高い分散が観察されました。このビデオを見た後、タンパク質の不均一性の研究にPPAをどのように利用するかについて十分に理解しているはずです。

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