May 14th, 2014
このビデオでは、マウスの動脈の内膜のプラークの開発の2つのモデルを示し、筋内膜増殖症およびアテローム性動脈硬化症の違いを強調している。
次の実験の全体的な目標は、異なるメカニズムを介して大動脈の狭窄につながる 2 つの有効な動物モデルを導入することです。最初のモデルは、筋内膜過形成の発症を作成するための大動脈のバルーンカテーテル法です。まず、腎下腹部大動脈が露出し、固定されます。
次に、横切開で大動脈を開き、バルーンカテーテルを導入します。その後、膨らませたカテーテルで大動脈の内皮をむき出しにし、手術を完了します。2番目のモデルは、トランスジェニックAPOE欠損マウスの食事操作によるアテローム性動脈硬化性プラークの作成です。
これらのマウスは標準的な条件下で飼育され、高脂質の西洋型食餌を4〜6か月間与えられます。最終的に、外科的に誘発された筋膜過形成と食事制限モデルの組織学的分析は、それらが異なる管腔狭窄をもたらすことを示しています。今日は、血管狭窄を誘発するマウスモデル、バルーンカテーテルを使用して血管損傷を誘発するマウスモデル、および動脈硬化モデルを2つの異なるモデルで紹介します。
トランスジェニックマウスを西洋型食生活に取り入れることで、バルーンカテーテルモデルは狭窄領域における重要な疑問に答えることができます。トランスジェニックホモ接合体上部E変異マウスモデルは、アテローム性動脈硬化症の病態生理学を研究するために使用されます。内膜過形成モデルでは、体重約 25 グラムの C 57 ブラック シックス J マウスを入手します。
通常の食事で通常の条件下でそれらを維持します。マウスに2%isofのフッ素で麻酔をかけた後、腹部の毛をトリミングし、鎮痛のための皮下注射でカルプロフェンを提供します。次に、あるいは、プロボヨウ素と80%エタノールで2サイクルで皮膚を消毒します。
次に、つま先をつまんで反射神経がないかどうかを確認します。直線状のアルバに沿って皮膚と筋肉を分離することから手術を開始します。次に、生理食塩水で湿らせた手袋で腸を包み、次に注意深く脂肪組織を取り除き、腹部大動脈をシート状にします。
次に、腎下大動脈をその分岐部に露出させます。支船を傷つけないように注意してください。次に、大動脈をクランプします。
まず、近位腎下大動脈に顕微手術用クランプを留置して、血流を遮断します。次に、大動脈分岐部の隣に2番目の遠位クランプを適用します。血流が途切れたら、近位クランプに近い大動脈に小さな切開をします。
カテーテルを大動脈の遠位クランプに向かって挿入し、内皮損傷を負わせます。カテーテルバルーンを膨らませ、カテーテルを近位クランプの方向にゆっくりと引っ張って、大動脈を切除します。これを繰り返し、2回操作して合計3回の大動脈膨張を行います。
次に、カテーテルを取り外し、10 au prolineランニング縫合糸を使用して大動脈切開を閉じます。縫合糸を所定の位置に置き、AOR自切体部位に出血がある場合は、遠位クランプを慎重に開きます。clを閉じますamp 再度、出血を見つけて、追加の中断されたステッチでそれを止めます。
出血がない場合は、近位クランプをゆっくりと開きます。大動脈の脈拍は、切開部の遠位に見える必要があります。次に、腸をC2に配置します。
次に、6つのOTTプロリンランニング縫合糸を使用して、筋肉層から腹壁を閉じます。次に、5つのOTT縫合糸で皮膚を閉じ、マウスをケージに戻します。術後最初の 3 日間は、疼痛管理のために飲料水にメタゾールを提供します。
約28日かかる回復全体を通して動物を監視します。アテローム性動脈硬化症モデルの場合、4週齢のA POE欠損マウスを入手します。これらのマウスを標準的な条件下で、高脂質の西洋型食餌で4〜6か月間飼育します。
実験中もこの食事を維持します。大動脈を収穫する6時間前に、食べ物へのアクセスを取り除いてください。次に、前のセクションで説明したように、マウスを手術用に準備します。
胸を開くことから手術を開始します。次に、心臓の頂点を切り取り、大動脈基部を通じて3ミリリットルの4%パラホルムアルデヒドを穏やかな圧力で灌流して大動脈を固定します。次に、大動脈を根元からその分岐部まで解放します。
脂肪組織をできるだけ多く取り除くようにしてください。次に、大動脈弓を切り取り、4%パラホルムアルデヒドで保存します。次に、心臓と大動脈の木を、皿にPBSを入れたシリコンラインディッシュに移します。
大動脈木の一端を切り取り、細いピンでシリコン層に固定します。大動脈を縦方向に開き、大動脈組織を室温でPBSに数分間置くようにします。次に、ティッシュを50%エタノールで一度すすぎ、スーダンのお風呂に浸します。
3、約15分間染色溶液。染色後、組織を50%エタノールで数秒間すばやくすすぎ、余分なスーダンだけを取り除きます。3回以上のすすぎで汚れが取り過ぎると、すぐに蒸留水で組織をすすぎ、イメージングを進めます 筋内膜過形成モデルの場合、むき出しのマウス大動脈を採取し、パラフィンを埋め込み、クロムで染色した Im比は、内膜と培地の厚さを測定することにより、トリクロム染色切片から計算されました。
コンピュータ解析とそれに続く比率の計算を用いて、最大プラーク厚さをコンピュータモルフォツリーによる内腔の最大内膜厚さとして測定した。管腔の抹消の割合は、以前の内腔からの新しい内腔の比率として計算されました。プラーク面積は、以前の内腔から新しい内腔を差し引くことによって計算されました。
同じ分析を、アテローム性動脈硬化症モデルの大動脈弁、大動脈弓、およびアテローム性動脈硬化症モデルのみの下行大動脈のトリクローム染色断面に対して実行しました。下行大動脈は縦方向に開き、スーダンレッドで染色されました。プラーク面積と総大動脈面積は、両方のモデルの分析のためにコンピューターの助けを借りて測定されました。
組織病理学や共焦点免疫蛍光顕微鏡などの他の方法を使用して、管腔オブレーション、形態、細胞性などの質問に答えることができます。ご覧いただきありがとうございます、そしてあなたの実験に頑張ってください。
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このビデオは、マウスの動脈における内膜プラーク発達の2つのモデルを紹介し、筋内膜過形成と動脈硬化のメカニズムに焦点を当てています。
Understanding distinct mechanisms of arterial stenosis is critical for target validation in cardiovascular drug discovery. These complementary mouse models enable mechanistic de-risking by differentiating myointimal hyperplasia from atherosclerosis pathways. Selecting the appropriate model improves predictive confidence in preclinical evaluation of therapeutic interventions.
The models integrate across the discovery continuum from target validation through preclinical efficacy testing, enabling stage-appropriate readouts for go/no-go decisions.