Summary

לדמיין את חיים תסיסנית גליה-neuromuscular צומת עם צבעי ניאון

Published: May 13, 2009
doi:

Summary

אנו תיאר תכונות מבניות של גליה-neuromuscular הסינפסות הכנה בתוך-out רקמת הרומן של זחלי זבוב חי באמצעות צבעי ניאון עם מיקרוסקופיה confocal. אנחנו שכותרתו מסופי נוירון לחיות עם נוגדנים העיקרי ניאון HRP, וגם דמיינו את החלל perisynaptic עם Dextrans ניאון.

Abstract

הפרויקט שלנו זיהו מבנים GFP גליה שכותרתו בבית סינפסה בפיתוח לטוס הזחל neuromuscular. כדי להסתכל על ההתפתחות של עצב גליה-שרירים וסינפסות לחיות, פיתחנו הכנה רקמות הזחל כי היו תכונות של זחלים חיים שלמים, אך גם תכונות אופטיות טובות. זו הכנה החדשה אפשרה גישה של perfusates כדי הסינפסה. השתמשנו זחלי זבוב, טובל אותם hemolymph מלאכותי, רגוע הצירים הרגילים שלהם על ידי גוף קצבית מצמררת אותם. לאחר מכן ניתחנו את פלחי האחורי של כל חיה עם סיכה חרקים בוטה דחף את חלקי הפה לאחור דרך חלל הגוף. זה everted הקיר גוף הזחל, כמו הפיכת גרב מבפנים החוצה. סיימנו את דיסקציה עם Ultra-בסדר מספריים לנתיחה וחשוף ולכן הצד הקרביים של שרירי הגוף הקיר. המבנים גליה ב NMJ הביע GFP קרום ממוקד בשליטת היזמים ספציפי גליה. הממברנה הפוסט סינפטית, SSR (Reticula Subsynaptic) בשריר הביע ממוקד synaptically dsRed. היינו צריכים בחריפות התווית מסופי הנוירון המוטורי, החלק השלישי של הסינפסה. כדי לעשות זאת אנחנו מוחלים נוגדנים העיקרי HRP, מצומדות כדי flurophore מרחיקות אדום פולטות. כדי לבדוק תכונות דיפוזיה צבע לחלל perisynaptic בין מסופי הנוירון המוטורי ואת SSR, אנו ליישם פתרון של מולקולות גדולות dextran מצומדות כדי flurophore מרחיקות אדום פולטות ותמונות שנאספו.

Protocol

חלק 1: הכנת רקמות המטרה שלנו היא הכנה רקמה של זחלי זבוב שבו מערכת העצבים לא נפגעה, אך את פני השטח הפנימי של שריר קיר הגוף חשוף hemolymph מלאכותי, והוא יכול להיות ממוקם קרוב לחמוק מיקרוסקופ לחפות על אופטיקה טובה. במילים אחרות,…

Discussion

הליך זה מאפשר לטווח ארוך הדמיה של חלבונים שכותרתו לחיות תהליכים בתא. הכנה ברקמות באתרו שתיארנו יש CNS שלם ומתפקד, PNS ומעגלים רפלקס. זו הכנה רקמה יש יתרונות על פני תקן הזחל שריר פרוטוקולים לעוף, שבו השריר הזחל קיר הגוף נמתח (כאשר הוא ניצח בחוץ). מתיחה יכול לעוות מורפו?…

Acknowledgements

פרויקט זה מומן על ידי CIHR ו NSERC. ברצוננו להודות Jusiak ברב לתרום ליצירת זני לטוס להביע SSR שכותרתו dsRed (קו ב"ג), ואת מתקן ביו הדמיה UBC.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
HL-6: Artifical Drosophila hemolymph, with 5 mM L-glutamate added, and 2 mM Calcium. Reagent NA NA 5 mM L-glutamate blocked muscle contractions. We used Molecular grade L-Glutamate (Sigma). 2 mM Calcium is close to physiological Calcium levels in natural larval hemolymph. References: Macleod et al 2002 and Macleod 2004
Dextran, Alex Fluor 680; 10,000 MW, anionic, fixable Reagent Molecular Probes/Invitrogen D34680 Use a small volume perfusion chamber to keep the total volume of dye low
Anti-HRP-CY5 conjugate (goat) Reagent Jackson ImmunoResearc 123-175-021 Dilute 2.0 mg into 1 ml ddH2O; aliquot into 4 microliter aliquots. Freeze at –20C. Dilute one aliquot into 100 microliters of HL-6
Alexa 647 antibody labeling kit Reagent Molecular Probes/Invitrogen A10475 We prepared a total of 80 micro liters of conjugated primary antibody, and stored as 2 microliter aliquots. We diluted each aliquot into 100 microliter of HL-6 for labeling.
Custom Formulated Objective Oil, refractive index 1.3379 Reagent Cargill Labs Custom Formulated  
Ultra Fine Forceps Tool Fine Science Tolls 11252-23 or 11295-20  
Spring scissors Tool Fine Science Tools 91500-09  
Ultra fine clipper scissors Tool Fine Science Tools 15200-00  
Perfusion Chamber RC 20 Series Tool Warner Instruments 64-02222  
Spinning Disc confocal Microscope Quorum Quorum Wave FX Mounted on a Leica DMI6000 Inverted Microscope

References

  1. Macleod, G. T., Marin, L., Charlton, M., Atwood, H. L. Synaptic Vesicles: Test for a role in presynaptic Calcium regulation. J. Neurosci. 24, 2496-2505 (2004).
  2. Macleod, G. T., Hegstro, M., Wojtowicz, M., Charlton, M. P., Atwood, H. L. Fast Calcium signals in Drosophila motor neuron terminals. J. Neurophysiology. 88, 2659-2663 (2002).
  3. Morales, M., Ferrus, A., Martinez-Padron, M. Presynaptic calcium-channel currents in normal and csp mutant Drosophila peptidergic terminals. Eur J Neurosci. 11, 1818-1826 (1999).
  4. Stork, T., Engelen, D., Krudewig, A., Silies, M., Bainton, R. J., Kla¨mbt, C. Organization and Function of the Blood–Brain Barrier in Drosophila. J. Neurosci. 28, 587-597 (2008).

Play Video

Cite This Article
Brink, D., Gilbert, M., Auld, V. Visualizing the Live Drosophila Glial-neuromuscular Junction with Fluorescent Dyes. J. Vis. Exp. (27), e1154, doi:10.3791/1154 (2009).

View Video