이 콘텐츠를 보려면 JoVE 구독이 필요합니다. 로그인하거나 오늘 무료 평가판을 시작하세요.

방법 논문

Wistar 알비노 쥐에서 대퇴골 절골술 모델을 개발하기 위한 프로토콜

2.9K 조회수

⸱

DOI:

10.3791/63712

⸱

2022년 8월 31일

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Orthopedics, All India Institute of Medical Sciences (AIIMS), 2Department of Biochemistry, All India Institute of Medical Sciences (AIIMS), 3Department of Anaesthesiology Pain Medicine and Critical Care, All India Institute of Medical Sciences (AIIMS), 4Department of Radiodiagnosis, All India Institute of Medical Sciences (AIIMS), 5Department of Pathology, All India Institute of Medical Sciences (AIIMS), 6Central Council for Research in Homoeopathy (CCRH)

이 논문에서

요약

여기에서 우리는 Wistar 흰둥이 쥐의 대퇴골 축을 의원 발생 적으로 파괴하고 굳은 살의 발달에 대한 후속 조치를 취하는 프로토콜을 제시합니다. 이 대퇴골 절골술 모델은 연구자들이 골절 치유 과정을 평가하고 약물이 골절 치유에 어떤 영향을 미칠 수 있는지 연구하는 데 도움이 될 수 있습니다.

초록

골절 치유는 조골 세포와 파골 세포의 조정 된 작용에 의해 뼈 결함을 재생시키는 생리적 과정입니다. 골동화 작용 약물은 골절 복구를 강화할 가능성이 있지만 높은 비용이나 바람직하지 않은 부작용과 같은 제약이 있습니다. 약물의 뼈 치유 잠재력은 처음에는 시험관 내 연구에 의해 결정될 수 있지만 최종 개념 증명을 위해서는 생체 내 연구가 필요합니다. 우리의 목표는 연구자들이 대퇴골 축 골절 후 굳은 살 형성의 발달을 이해하는 데 도움이 될 수 있고 잠재적 약물이 뼈 치유 특성을 가지고 있는지 여부를 확인하는 데 도움이 될 수 있는 대퇴골 절골술 설치류 모델을 개발하는 것이었습니다. 성체 수컷 Wistar 흰둥이 쥐는 기관 동물 윤리위원회 승인 후 사용되었습니다. 설치류는 마취되었고, 무균 조건 하에서, 대퇴골 축의 중간 1/3에서 완전한 횡단 골절이 개방 절골술을 사용하여 생성되었다. 골절은 골수 내 K- 와이어를 사용하여 축소되고 내부적으로 고정되었으며 2 차 골절 치유가 이루어 졌다. 수술 후 복강 내 진통제와 항생제를 5 일 동안 투여했습니다. 매주 순차적으로 엑스레이를 통해 굳은살 형성을 평가했습니다. 쥐를 방사선 학적으로 미리 결정된 시점을 기준으로 희생 시켰고, 골절 캘러스의 발달은 면역 조직 화학을 사용하여 방사선 학적으로 분석되었습니다.

서론

뼈는 뼈 형성 세포, 조골 세포 및 뼈 흡수 세포인 파골 세포로 구성된 조밀한 결합 조직입니다. 골절 치유는 조골 세포와 파골 세포의 조정 된 작용에 의해 뼈 결함을 재생시키는 생리적 과정입니다1. 골절이있을 때, 골절 부위의 조골 세포 및 파골 세포 활성은 뼈 치유를 결정하는 중요한 요소 중 일부입니다2. 골절 치유가 정상적인 과정에서 벗어나면 지연된 결합, 부결합 또는 비유합이 발생합니다. 골절은 9개월 동안 골절의 유합이 실패하고 최근 3개월 동안 수리가 진행되지 않은 경우 비유합 상태라고 합니다3. 모든 골절의 약 10%-15%는 비유합으로 진행될 수 있는 수리 지연을 경험합니다4. 모든 골절에 대한 비유합률은 5%-10%이며 관련된 뼈와 골절 부위5에 따라 다릅니다.

골절 비유합 치료를 위한 현재 요법은 수술 및/또는 의료 양식을 포함합니다. 현재 골절의 지연 또는 비결합은 뼈 이식과 같은 수술 전략으로 극복할 수 있습니다. 그러나 뼈 이식에는 이식 조직의 가용성, 기증자 부위 통증, 이환율 및 감염과 같은 한계와 합병증이 있습니다6. 의학적 치료는 뼈 형태 형성 단백질(BMP) 및 테리파라타이드(파라트호르몬 유사체)와 같은 골동화 약물로 구성됩니다. 현재 사용되는 골동화 작용제는 골절 복구를 증가시킬 가능성이 있지만 과도한 비용이나 바람직하지않은 부작용과 같은 제약이 있습니다7. 따라서 뼈 치유를 위한 비용 효율적인 비수술적 대안을 식별할 수 있는 여지가 있습니다. 약물의 뼈 치유 잠재력은 처음에는 시험관 내 연구에 의해 결정될 수 있지만 최종 개념 증명을 위해서는 생체 내 연구가 필요합니다. 뼈 치유를 향상시키는 것으로 알려진 약물은 시험관 내에서 평가되어야하며, 유망한 것으로 밝혀지면 생체 내 동물 모델 연구에 사용할 수 있습니다. 약물이 생체 내 모델에서 골 형성 및 리모델링을 촉진하는 것으로 입증되면 다음 단계 (즉, 임상 시험)로 진행할 수 있습니다.

동물의 골절 치유를 평가하는 것은 인간 실험을 거치기 전에 뼈 치유를 위해 도입 된 새로운 약제를 평가하기위한 논리적 단계입니다. 골절 치유의 생체내 동물 모델 연구를 위해, 설치류는 점점 더 인기 있는 모델8이 되었다. 설치류 모델은 낮은 운영 비용, 제한된 공간 필요성 및 뼈 치유에 필요한 시간 감소로 인해 관심이 증가하고 있습니다9. 또한 설치류는 광범위한 항체와 유전자 표적을 가지고있어 뼈 치유 및 재생의 분자 메커니즘에 대한 연구를 가능하게합니다10. 합의 회의는 다양한 작은 동물 뼈 치유 모델을 종합적으로 강조하고 뼈 치유에 영향을 미치는 다양한 매개 변수에 초점을 맞추고 몇 가지 작은 동물 골절 모델 및 임플란트를 강조했습니다11.

기본 파괴 모델은 크게 개방 또는 폐쇄 모델로 나눌 수 있습니다. 폐쇄 골절 모델은 뼈에 3점 또는 4점 굽힘력을 사용하며 기존의 외과적 접근이 필요하지 않습니다. 그들은 인간의 긴 뼈 골절과 유사한 비스듬한 또는 나선형 골절로 이어지지 만, 골절 위치 및 치수의 표준화 부족은12에서 교란 요인으로 작용할 수 있습니다. 개방 골절 모델은 뼈의 절골술을 위한 외과적 접근을 필요로 하고, 골절 부위에서 보다 일관된 골절 패턴을 달성하는 데 도움이 되지만, 폐쇄형 모델(13)에 비해 지연된 치유와 관련된다. 골절 치유를 연구하는 데 사용되는 뼈의 선택은 주로 크기와 접근성으로 인해 경골과 대퇴골로 남아 있습니다. 골절 부위의 선택은 일반적으로 골간 또는 골단입니다. 골단 영역은 골다공증 환자에서 골절 치유가 연구되는 경우에 특별히 선택되는데, 이는 골다공증이 골다공증14의 영향을 더 많이 받기 때문입니다. 골수 내 핀 및 외부 고정 장치와 같은 여러 임플란트를 사용하여 골절(11,15)을 안정화시킬 수 있습니다.

이 연구의 목적은 연구자들이 대퇴골 골절 후 굳은 살의 발달을 이해하는 데 도움이 될뿐만 아니라 잠재적 인 약물이 작용하는 메커니즘을 이해함으로써 뼈 치유 특성을 가지고 있는지 여부를 결정하는 데 도움이 될 수있는 간단하고 따라하기 쉬운 설치류 모델을 개발하는 것이 었습니다.

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

프로토콜

동물 실험은 인도 뉴델리에 있는 AIIMS(286/IAEC-1/2021)에 있는 기관 동물 윤리 위원회(IAEC)의 윤리적 승인을 받은 후 수행되었습니다.

1. 수술 전 절차

  1. 집 수컷 Wistar 흰둥이 쥐 6-8 주령, 무게는 각각 150-200g 사이이며 중앙 동물 시설 (CAF)에서 별도의 개별 케이지에 있습니다. 이것은 여러 쥐가 새장을 공유 할 때 수술 / 골절 부위 부상을 보장하지 않습니다.
  2. 상대 습도가 50 % ± 5 % 인 습도가 조절 된 환경에서 쥐를 23 ° C ± 2 ° C의 온도로 유지하고 12 시간의 어둠 / 빛주기에 노출시키고 음식 (표준 반합성 식단) 에 자유롭게 접근 할 수 있도록하십시오 : 펠렛 다이어트 (건조) 및 물. 표준 반합성 식단의 구성은 다음과 같습니다 : 볶은 벵골 그램 가루 (60 %), 밀가루 (22 %), 카제인 (4 %), 탈지유 (5 %), 정제유 (4 %), 전분과의 소금 혼합물 (4.8 %) 및 전분과 비타민 콜린 혼합물 (0.2 %).
  3. 수술 전 최소 48 시간 동안 쥐를 순응시킵니다.
  4. 디지털 저울로 각 쥐의 무게를 측정하고 무게를 기록하십시오.
  5. 수술 시작 15분 전에 쥐에게 세푸록심(100mg/kg 체중), 트라마돌(25mg/kg 체중) 및 케타민(75mg/kg 체중)과 자일라진(10mg/kg 체중)의 조합의 복강(IP) 주사를 투여합니다. 안구 건조증을 예방하기 위해 양쪽 눈에 안과 연고를 바르십시오.
  6. 우측하지에서 옆구리에서 무릎 관절까지 머리카락을 제거하고 제모 크림을 국소 적으로 바르십시오.
    참고: 혈액(0.5mL)은 다양한 매개변수의 기준선 분석을 위해 각 쥐의 꼬리 정맥에서 수집할 수 있습니다. 수술 후 2 주마다 혈액을 다시 채취 할 수 있습니다.

2. 개방 절골술을 통한 완전 횡단 골절 수술

참고: 수술대를 갖추고 최적의 주변 온도(26°C)가 있는 지정된 수술실을 사용하여 절차를 수행하십시오.

  1. 왁스 블록 (알루미늄 트레이 30cm x 30cm x 4cm, 깊이 2.5cm까지 왁스를 담은 4cm)을 수술대에 놓고 멸균 커튼으로 덮으십시오. 왁스 블록은 수술 중 동물의 위치 변화를 방지합니다.
  2. 마취의 시작을 확인하십시오 (발가락 핀치의 손실을 확인하여). 마취 된 쥐를 왼쪽 측면 위치의 멸균 드레이프에 놓습니다. 보조자에게 오른쪽하지(무릎과 엉덩이)를 확장하도록 요청하십시오. 대퇴골을지지하기 위해 오른쪽 다리 아래에 멸균 된 하드 지지대 (대리석 블록)를 유지하십시오. 알코올과 베타 딘으로 수술 부위를 청소하십시오.
  3. 절개 부위 (오른쪽 허벅지의 측면)에 국소 마취 (1 % 리그 노 카인 0.25mL)를 주사하고 다른 멸균 드레이프에 구멍을 뚫고 수술을 위해 쥐의 오른쪽 다리 만 노출시킵니다.
  4. 오른쪽 허벅지 옆쪽에 수직 1cm 피부 절개를 하고 15번 수술용 칼날로 필요에 따라 확장합니다.
  5. Metzenbaum 가위를 사용하여 깊은 근막을 분리하여 광대 한 측면 근육을 노출시킵니다. 대퇴골의 축에 도달 할 때까지 동맥 집게를 사용하여 근육 섬유와 일치하도록 광대 한 외측을 나눕니다.
  6. 골막 엘리베이터를 사용하여 뼈에 부착 된 근육에서 뼈를 제거하십시오.
  7. 혈관 미주신경 반사를 방지하기 위해 골막 안팎에 국소 마취 (1 % 리그 노 카인 0.2mL)를 주사하십시오.
  8. 15번 수술용 칼날을 사용하여 대퇴골 축의 중간 1/3에 움푹 들어간 곳을 만들고, 움푹 들어간 곳에 끌을 놓고(끌이 미끄러지지 않도록) 망치로 끌을 가볍게 두드려 축의 중간 1/3에 있는 뼈를 골절(완전 골절)합니다. 멸균 하드 지지대(대리석 블록)를 사용하여 뼈를 지지하는 동안 뼈를 파쇄하여 깨끗한 파손을 보장합니다.
    알림: 멸균 하드 지지대는 일반적으로 아래 근육에 심각한 부상을 입히지 않습니다.
  9. 배터리로 작동되는 파워 드릴을 사용하여 멸균 된 K- 와이어 (1.0mm)를 사용하여 내부적으로 골절을 고정하십시오. K- 와이어를 골절 부위를 통해 원위 조각의 수질 운하로 통과시킵니다. 그런 다음 배터리로 작동되는 전동 드릴을 사용하여 대퇴골의 말단부를 통해 K-와이어를 뚫습니다.
    알림: 사용하기 전에 전동 드릴 표면을 알코올로 소독하십시오. K-와이어를 고정한 후 장갑을 교체하십시오.
  10. 골절을 줄인 후, K- 와이어를 말단부에서 근위 조각의 운하로 전진시켜 trochanteric 영역에서 구입할 때까지 전진시킵니다. 와이어 커터를 사용하여 피부를 통해 튀어 나온 K- 와이어의 말단 부분을 잘라냅니다.
  11. 플라이어를 사용하여 K-와이어 끝을 약 90°로 구부리고 핀 사이트 드레싱을 위해 베타딘에 적신 거즈 붕대를 사용합니다. K- 와이어는 골절을 감소 된 위치로 유지하기위한 골수 내 부목 역할을합니다.
  12. 3-0 나일론 봉합사를 사용하여 피부를 닫기 전에 완전한 지혈을 확인하십시오. 멸균 거즈 또는 동맥 집게를 사용하여 출혈 부위에 압력을 가하여 출혈을 멈추십시오.
  13. 베타딘으로 상처를 닦고 멸균 거즈와 미세 기공 접착 테이프로 덮으십시오.

3. 수술 후 관리

  1. 쥐를 새장으로 돌려 보내고, 정상적인 보행을 허용하고, 항생제 (주사 세푸 록심 100 mg / kg) 및 진통제 (주사 트라마돌 25 mg / kg / 일)를 희생 할 때까지 표준 반합성 식단을 계속 제공하십시오 시술 후 5 일 동안 복강 내.
    참고: 쥐는 특정 약물을 테스트하기 위해 치료 그룹과 대조군으로 나눌 수 있습니다. 약물이 수용성인 경우 위관영양을 통해 경구 투여할 수 있습니다. 개별 동물의 무게는 사용되는 약물의 투여량을 계산하기 위해 기록될 수 있다. 동물 그룹의 동질성을 보장하기 위해 포함 및 제외 기준을 따를 수 있습니다.
  2. 수술 전 기간과 비슷한 조건에서 개별 케이지에 동물을 수용하십시오. 수술 후 통증, 상처 감염, 봉합사 미끄러짐, 복부 부종이나 불편함의 징후를 찾기 위해 매일 수술 부위를 검사하십시오.
  3. 일주일에 한 번 골절 부위의 X- 레이로 뼈 치유를 평가하십시오.

4. 방사선 절차

  1. X- 레이 전에 케타민 (50mg / kg 체중)과 자일 라진 (5mg / kg 체중)을 복강 주사하여 쥐를 마취시킵니다.
  2. 쥐의 고관절을 구부리고 외전 된 자세로 유지하면서 무릎 관절은 다음과 같은 노출 설정으로 골절 된 사지의 X- 레이를 촬영하기 위해 반 구부러진 상태로 유지합니다 : 참조 kVp ≈ 62; 참조 mAS = 6.4; 및 자동 노출 설정(참조 mA=160).
    참고: X-레이는 기준선(수술 후 1일)에 촬영한 다음 희생될 때까지 또는 5주까지 매주 한 번 촬영했습니다.

5. 동물 안락사 및 굳은 살 회수

  1. 부드럽고 단단한 브리징 굳은 살의 방사선 학적 외관에 따라 이전에 결정된 두 시점에서 이산화탄소 과다 복용 (1 분 동안 7-8 L / min의 유속으로 100 % CO2 투여, 4-5 분의 대기 기간)으로 쥐를 희생하십시오.
  2. 대퇴골과 평행하게 피부를 절개하고 굳은 살이 살의 손상을 피하기 위해 위에 놓인 근육을 조심스럽게 분리하십시오.
  3. 망치와 끌을 사용하여 고관절과 굳은 살 조직 사이의 뼈를 골절시킵니다. 마찬가지로 굳은 살과 무릎 관절 사이의 뼈를 골절시킵니다. K-와이어를 제거하고 뼈 조각을 식염수로 청소하여 혈전과 연조직을 제거합니다.
  4. 캘러스를 즉시 10% 중성 완충 포르말린(샘플당 20mL)이 포함된 라벨이 부착된 용기에 옮기고 실온(RT)에서 3일 동안 보관합니다.

6. 뼈와 굳은 살 조직의 석회질 제거

  1. 포르말린에서 캘러스 조직을 채취하여 뼈 조직의 석회질 제거를 위해 20 % ETDA 용액 (pH 7)에서 RT로 유지하십시오.
  2. 약 3주 동안 2일마다 신선한 EDTA 용액을 교체하고 캘러스 조직을 방해하지 않고 바늘로 뼈를 찔러 뼈 석회질 제거를 확인합니다. 최적의 석회 제거는 뼈 조직의 정상적인 거친 감각의 상실로 표시됩니다.
  3. 석회 제거가 완료되면 캘러스의 시상 부분을 자르고 캘러스 조직의 파라핀 블록을 준비하십시오. 조직 병리학적 16 및 다른 비교 분석17을 위해 캘러스 조직의 4 μm 두께 섹션을 절단합니다.

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

결과

이 연구는 Wistar 알비노 쥐에서 대퇴골 절골술 모델을 개발하기 위해 수행되었습니다. 이 모델은 뼈 치유뿐만 아니라 뼈 치유에서 유망한 골동화 작용의 골 형성 효과를 평가하는 데 사용할 수 있습니다. 표준 수술 예방 조치와 프로토콜을 따랐습니다. 멸균 가운, 커튼 및 수술 장비가 절차에 사용되었습니다(그림 1). 장비(표 1)는 수술 48시간 전에 멸균하였다. 마취제, 진통제 및 항생제는 동물이 항상 통증과 감염이 없도록 유지하기 위해 프로토콜에 따라 사용되었습니다. 혈액 (0.5 mL)은 골절 치유가 발생할 때 기준선 분석 및 다른 매개 변수의 순차적 연대순 비교 후속 조치를 위해 각 쥐의 꼬리 정맥에서 수집 할 수 있습니다. 모발은 제모 크림을 이용하여 옆구리에서 무릎 부위로 제거하였다(도 2). 절골술 절차는 완료하는 데 약 10분이 걸렸습니다(첫 번째 절개에서 봉합까지). 감염과 사...

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

토론

이 방법은 Wistar 알비노 쥐에서 골절 절골술 모델을 개발하는 데 필요한 세부 사항을 명쾌하게 설명합니다. 이 모델은 골절 치유에서 유망한 골동화 작용 약물의 골 형성 효과를 평가하고 뼈 치유의 복잡성을 이해하는 데 사용할 수 있습니다. 이 방법의 두드러진 특징은 간단하고 너무 많은 시간이나 정교한 장비가 필요하지 않다는 것입니다. 이 방법에서는 성체 수컷 Wistar 알비노 랫트를 실험을 위한 설치류 모델로 선정하였다. 성 호르몬과 관련된 뼈 치유에 대한 교란 요인을 제거하기 위해 균일 한 성별이 선택되었습니다.

이 연구는 다른 그룹과 다른 작은 동물 모델11,18,19가 따르는 것과 유사한 개방 절골술 절차를 따랐습니다. 다른 뼈 치유 모델에 비해이 방법에서 따르는 개방 절골술의 장점은 부상 유발 (완전 피...

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

공개 사항

저자 중 누구도 이해 상충이나 기타 재무 공개가 없습니다.

감사의 글

저자는 동종 요법 연구를위한 중앙 협의회 (CCRH), AYUSH 사역, 인도 정부, 연구 자금에 감사드립니다. 저자는 동물 실험에 대한 도움과 지원에 대해 뉴 델리의 AIIMS에있는 Central Animal Facility의 도움과 지원과 지원에 감사하며, 사진 및 비디오 촬영에 대한 도움과 지원에 대해 뉴 델리의 CMET, AIIMS에 감사드립니다.

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

재료

이 논문에 사용된 재료 목록
이름회사카탈로그 번호댓글
알코올라만 & Weil Pvt. Ltd, 뭄바이, 마하라슈트라, 인도MFG/MD/2019/000189Sterillium 손 소독제
동맥 집게 네뷸라 수술, 구자라트, 인도G.105.05S5", 직선
바드-파커 핸들 네뷸라 수술, 구자라트, 인도G.103.03사이즈 번호 3
베타딘 용액윈-메디케어 뉴델리, 인도UP1425000000110% w/v 포비돈 요오드 용액
고양이발 피부 견인기 Nebula surgical, Gujarat, India908.SSmall
EDTASisco research laboratories Pvt. Ltd, Maharashtra, India43272Disodium salt
EosinSigma Aldrich, Merck Life Sciences Pvt Ltd, Mumbai, Maharashtra, India115935염색 용액 제조용 
펜치 (일반)성운 수술, 구자라트, 인도115.066", 일반
펜치 (이빨)네뷸라 수술, 구자라트, 인도117.066", 이빨
포름알데히드Sisco 연구소 Pvt. Ltd, 마하라슈트라, 인도84439중성 완충 포르말린을 준비하기 위해 
HaematoxylinSigma Aldrich, Merck Life Sciences Pvt Ltd, Mumbai, Maharashtra, India104302염색 용액 제조용 
HammerNebula 수술, 구자라트, 인도401.M
주입 CefuroximeAkumentis Healthcare Ltd, Thane, Maharashtra, India48/UA/SC/P-2013Cefuroxime sodium IP, 1.5 g/vial 
주사 케타민Baxter Pharmaceuticals India Private Limited, Gujarat, IndiaG/28-B/6케타민 염산염 IP, 50 mg/mL 
주사 XylazineIndian Immunologicals Limited, 하이데라바드, 텔랑가나, 인도28/RR/AP/2009/F/G자일라진 염산염 USP, 20 mg/mL
주사 LignocaineJackson laboratories Pvt Limited, 펀자브, 인도 1308-B2% 리그노카인 하이드로클로라이드 IP, 21.3 mg/mL
주입 트라마돌 Intas Pharmaceuticals Limited, Ahmedabad, Gujarat, IndiaMB/07/500Tramadol hydrochloride IP, 50 mg/mL
K-wire Nebula 수술, 구자라트, 인도166 (1mm)12",
K-wire&lrm 삽입을 위한 양단 기계식 드릴; 보쉬, 독일 06019F70K4GSR 120-LI 전문
Metzenbaum 절단 가위 성운 수술, 구자라트, 인도G.121.06S6", 직선
바늘 홀더성운 수술, 구자라트, 인도G.108.066", 직선
안과 연고 GlaxoSmithKline Pharmaceutical Limited, Bengaluru, Karnataka, IndiaKTK/28a/467/2001Neomycin, Polymixin B sulfate 및 Bacitracin 아연 안과 연고 USP
Osteotome (chisel)Nebula surgical, Gujarat, India1001.S.1010 mm, 직선
Periosteal 엘리베이터 성운 수술, 구자라트, 인도918.10.S10mm, 스트레이트
플라이어 겸 와이어 커터성운 수술, 구자라트, 인도604.65
Reynold' s 가위성운 수술, 구자라트, 인도G.110.06S6", 직선
표준 반합성 식단 Ashirvad Industries, 찬디가르, 인도카탈로그 번호 없음사용된 재료에 상세한 구성 제공
베타딘을 보관하기 위한 스틸 컵 응용현지 구매카탈로그 번호 없음
오토클레이브 기구용 뚜껑이 있는 스틸 트레이현지 구매번호
멸균 거즈Ideal Healthcare Industries, Delhi, India& 주의;E(0047)/14/MNB/7951멸균, 5cmx5cm, 12 ply
멸균 대리석 블록 지원을 위한현지 구매카탈로그 번호 없음 현지제작
주사기 및 바늘 (1 mL);Becton Dickinson India Pvt. Ltd., Haryana, IndiaREF 3030601 mL 멸균 주사기에는 26 G x 1/2 (0.45 mm x 13 mm) 바늘
주사기 및 바늘 (2 mL)이Becton Dickinson India Pvt. Ltd., Haryana, IndiaREF 30774924 G x 1'' (0.55 mm x 25 mm) 바늘
주사기 및 바늘 (10 mL)힌두스탄 주사기 & Medical Devices Ltd. 인도 파리다바드 334-B(H)10mL 멸균 주사기, 21G x1.5"(0.80mm x 38mm) 바늘
수술용 블레이드(크기 번호 15)Paramount Surgimed Ltd, 뉴델리, 인도 Medline Industries Inc, 일리노이, 미국참조 MDS15115E멸균, 일회용
수술용 블레이드(크기 번호 24)Paramount Surgimed Ltd, 뉴델리, 인도 Medline Industries Inc, IL, USAREF MDS15124E멸균, 일회용
봉합Healthium Medtech Pvt Ltd, 방갈로르, 카르나타카, 인도SN 33184-0, 16 mm, 3/8 원형 절단 바늘, 단섬유 폴리아미드 봉합사 
알루미늄 트레이의 왁스 블록 현지에서 제작된카탈로그 번호 없음30 cm x 30 cm x 4 cm 알루미늄 트레이에는 왁스가 들어 있습니다 (동물이 미끄러지는 것을 방지하기 위해)
X-ray 기계Philips India Ltd, Gurugram, HaryanaSN19861013모델: Philips Digital Diagnost R 4.2 
성 카탈로그 없음 가능 포함되어 있습니다.이 포함된 2 mL 멸균 주사기 사

참고문헌

  1. Wang, T., Zhang, X., Bikle, D. D. Osteogenic differentiation of periosteal cells during fracture healing. Journal of Cellular Physiology. 232 (5), 913-921 (2017).
  2. Fakhry, M., Hamade, E., Badran, B., Buchet, R., Magne, D. Molecular mechanisms of mesenchymal stem cell differentiation towards osteoblasts. World Journal of Stem Cells. 5 (4), 136-148 (2013).
  3. Bishop, J. A., Palanca, A. A., Bellino, M. J., Lowenberg, D. W. Assessment of compromised fracture healing. JAAOS - Journal of the American Academy of Orthopaedic Surgeons. 20 (5), 273-282 (2012).
  4. Fong, K., et al. Predictors of nonunion and reoperation in patients with fractures of the tibia: an observational study. BMC Musculoskeletal Disorders. 14 (1), 103(2013).
  5. Ramoutar, D. N., Rodrigues, J., Quah, C., Boulton, C., Moran, C. G. Judet decortication and compression plate fixation of long bone nonunion: Is bone graft necessary. Injury. 42 (12), 1430-1434 (2011).
  6. Goulet, J. A., Senunas, L. E., DeSilva, G. L., Greenfield, M. L. V. H. Autogenous iliac crest bone graft: Complications and functional assessment. Clinical Orthopaedics and Related Research. 339, 76-81 (1997).
  7. Stevenson, M., et al. A systematic review and economic evaluation of alendronate, etidronate, risedronate, raloxifene and teriparatide for the prevention and treatment of postmenopausal osteoporosis. Health Technology Assessment. 9 (22), 1(2005).
  8. Haffner-Luntzer, M., Kovtun, A., Rapp, A. E., Ignatius, A. Mouse models in bone fracture healing research. Current Molecular Biology Reports. 2 (2), 101-111 (2016).
  9. Mills, L. A., Simpson, A. H. R. W. In vivo models of bone repair. The Journal of Bone and Joint Surgery. British Volume. 94 (7), 865-874 (2012).
  10. Houdebine, L. -M. Transgenic Animal Models in Biomedical Research. Target Discovery and Validation Reviews and Protocols: Volume 1, Emerging Strategies for Targets and Biomarker Discovery. Sioud, M. , Humana Press. Totowa, NJ. (2007).
  11. Histing, T., et al. Small animal bone healing models: Standards, tips and pitfalls results of a consensus meeting. Bone. 49 (4), 591-599 (2011).
  12. Bonnarens, F., Einhorn, T. A. Production of a standard closed fracture in laboratory animal bone. Journal of Orthopaedic Research. 2 (1), 97-101 (1984).
  13. Klein, M., et al. Comparison of healing process in open osteotomy model and open fracture model: delayed healing of osteotomies after intramedullary screw fixation. Journal of Orthopaedic Research. 33 (7), 971-978 (2015).
  14. Kolios, L., et al. Do estrogen and alendronate improve metaphyseal fracture healing when applied as osteoporosis prophylaxis. Calcified Tissue International. 86 (1), 23-32 (2010).
  15. Holstein, J. H., et al. Advances in the establishment of defined mouse models for the study of fracture healing and bone regeneration. Journal of Orthopaedic Trauma. 23, 5 Suppl 31-38 (2009).
  16. Umiatin, U., Dilogo, I. H., Sari, P., Wijaya, S. K. Histological analysis of bone callus in delayed union model fracture healing stimulated with pulsed electromagnetic fields (PEMF). Scientifica. 2021, 4791172(2021).
  17. Han, W., et al. The osteogenic potential of human bone callus. Scientific Reports. 6, 36330(2016).
  18. Haffner-Luntzer, M., et al. A novel mouse model to study fracture healing of the proximal femur. Journal of Orthopaedic Research. 38 (10), 2131-2138 (2020).
  19. Aurégan, J. C., et al. The rat model of femur fracture for bone and mineral research: An improved description of expected comminution, quantity of soft callus and incidence of complications. Bone & Joint Research. 2 (8), 149-154 (2013).
  20. Li, Z., Helms, J. A. Drill hole models to investigate bone repair. Methods in Molecular Biology. 2221, 193-204 (2021).
  21. Handool, K. O., et al. Optimization of a closed rat tibial fracture model. Journal of Experimental Orthopaedics. 5 (1), 13(2018).
  22. Kobata, S. I., et al. Prevention of bone infection after open fracture using a chitosan with ciprofloxacin implant in animal model. Acta Cirurgica Brasileira. 35 (8), 202000803(2020).

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

재인쇄 및 허가

태그

KCT
Wistar 알비노 쥐에서 대퇴골 절골술 모델을 개발하기 위한 프로토콜
문의하기
사서에게 추천하기

개인정보

이용 약관

정책

저작권 © 2026 MyJoVE Corporation. 모든 권리 보유.