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방법 논문

성체 제브라피시의 복강 내 주사 기법으로 신체 손상 및 관련 폐사율을 최소화합니다.

3.9K 조회수

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DOI:

10.3791/66500

⸱

2024년 3월 29일

 ,  ,  ,  , 

교신 저자: Hong Zhang <xyzhanghong@hotmail.com>, Xiaolei Xu <xu.xiaolei@mayo.edu>

* These authors contributed equally

이 논문에서

요약

성체 제브라피시에서 새로운 복강내(IP) 주사 방법에 대해 설명합니다. 독소루비신(doxorubicin)과 같은 독성 화합물을 취급할 때 이 절차는 이전에 보고된 두 가지 IP 방법보다 더 효과적입니다. 이 기술은 제브라피시 모델에 대한 경험이 제한된 연구원들이 쉽게 채택할 수 있도록 설계되었습니다.

초록

유전적으로 접근할 수 있는 성체 제브라피시(Danio rerio)는 심근병증과 같은 인간 질환을 연구하는 데 귀중한 척추동물 모델로 활용되고 있습니다. 복강내 (IP) 주사는 치료 효과를 테스트하거나 독소루비신 유발 심근병증(DIC)과 같은 질병 모델을 생성하기 위해 화합물을 신체에 전달하는 중요한 방법입니다. 현재 IP 주입에는 두 가지 방법이 있습니다. 두 방법 모두 독소루비신과 같은 독성 화합물을 다룰 때 한계가 있으며, 이로 인해 신체 형태에 심각한 손상이 발생하고 물고기가 폐사하는 부작용이 나타납니다. 이러한 단점은 광범위한 연구자 교육으로 극복할 수 있지만 부작용이 최소화된 새로운 IP 주입 방법이 바람직합니다. 여기에서는 독성 화합물을 처리할 수 있는 고유한 IP 주입 방법이 보고됩니다. 심장 기능이 지속적으로 저하되면 심각한 물고기 폐사로 이어지지 않을 수 있습니다. 이 기술은 성인 제브라피쉬에 대한 경험이 거의 없는 연구원이 쉽게 마스터할 수 있습니다.

서론

제브라피시(Danio rerio)는 인간에 대한 높은 유전자 및 장기 상동성, 외부 수정, 유전자 조작의 용이성, 조기 성숙에 대한 신체 투명성을 포함하기 때문에 인간의 질병을 연구하기 위한 실험 모델로 주목받고 있습니다1. 제브라피시 배아와 유충을 위해 약물을 직접 물에 전달하는 간단한 과정과 달리, 성체 제브라피시에게 약물을 투여하는 것은 더 복잡하고 도전적인 노력을 제시한다2.

성체 물고기에서 화합물은 물에 직접 투여하는 것과 같은 수동적 약물 전달 기술 또는 gavaging과 같은 경구 약물 전달 방법을 통해 전달될 수 있습니다2. 다른 접근법으로는 어류에 화합물을 코팅한 후 물고기에게 먹이를 주는 방법3, 후안와 주사 또는 복강내 주사를 포함하여 미리 결정된 농도로 수불용성 약물을 직접 투여하는 방법이 있다 4,5. 복강내 투여는 뚜렷한 약동학적 이점으로 인해 질병 모델의 생체 내 연구에서 선호됩니다6. 이 방법은 복막강 내에서 높은 약물 농도와 연장된 반감기를 제공하여 약물 전달을 위한 효과적인 경로를 제공합니다 7,8. 이 접근법은 최적의 약물 흡수 및 분포를 보장하기 위해 연구 환경에서 일반적으로 사용됩니다 9. 주사 기반 방법은 단일 분만에 효과적인 것으로 입증되었지만, 장기간 반복적인 주사는 종종 신체 손상과 만성 감염을 유발합니다2.

현재 성체 zerbafish 4,10에서 IP 주입에는 두 가지 방법이 있습니다. 그러나 두 방법 모두 독소루비신과 같은 독성 화합물을 전달할 때 한계가 있어 체형에 심각한 손상을 입히고 물고기를 폐사하게 합니다. 부작용으로 인해 데이터 해석이 크게 복잡해질 수 있습니다. 이러한 문제들은 광범위한 교육10을 통해 해결될 수 있지만, 부작용을 최소화하는 새로운 IP 주입 방법에 대한 필요성이 분명히 존재한다.

여기서 우리의 목표는 독소루비신을 성인 제브라피쉬에 효과적으로 전달하는 데 최적화된 새로운 IP 주입 방법을 개발하여 신체 손상 및 관련 사망률을 최소화한 신뢰할 수 있는 독소루비신 유발 심근병증(DIC) 모델의 생성을 촉진하는 것입니다.

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프로토콜

수행된 모든 절차는 Mayo Clinic Institutional Animal Care and Use Committee의 승인을 받았으며 'Guide for the Care and Use of Laboratory Animals'(National Academies Press, 2011)에 설명된 표준을 준수했습니다. 연구에 참여한 모든 제브라피쉬는 WIK(Wild Indian Karyotype) 균주에 속합니다. 연구에 사용된 시약 및 장비의 세부 사항은 재료 표에 나열되어 있습니다.

1. 독소루비신 원액의 준비 및 보관

  1. 상업적인 출처에서 독소루비신 주식을 얻으십시오.
    참고: 독소루비신은 빛에 민감하므로 빛에 노출되지 않도록 분말 형태로 구입하여 불투명한 용기에 보관하십시오. 화학 후드 내에서 Dox 분말 준비를 위한 모든 단계를 수행합니다.
  2. Dox 분말을 증류수에 완전히 용해시키고 최종 농도가 5mg/mL인 원액을 준비합니다.
  3. 스톡을 1.5mL 튜브로 나누어 분취합니다.
  4. 튜브를 알루미늄 호일로 싸서 빛에 노출되지 않도록 보호합니다.
  5. 분취액 Dox 용액을 단기 보관(<1개월)의 경우 4°C, 장기 보관의 경우 -20°C에서 보관하십시오10.

2. 체중에 따라 물고기 그룹화

  1. 후속 주입을 위해 BW 차이가 10% 미만인 물고기를 함께 그룹화합니다.
    참고: 이 단계에서 노력을 줄이기 위해 BW 분산이 10% 미만인 물고기는 동일한 크기로 분류됩니다.
  2. 주입하기 전에 물고기가 24시간 동안 금식하도록 하십시오.
  3. 0.16mg/mL 트리카인이 함유된 배아 물을 사용하여 1분 동안 물고기를 마취합니다.
  4. 트리케인으로 물고기를 물에서 꺼내고 깨끗한 여과지로 물고기 몸의 양쪽을 두드려 과도한 물을 제거합니다.
  5. 각 물고기의 BW를 측정하고 기록한 다음 물고기를 신선한 시스템 물로 채워진 회수 탱크로 즉시 되돌려 놓습니다.
    참고: Dox 주입은 생후 3개월이 된 물고기에게 수행되었습니다. 이 연구에서 연구원들은 3개월에서 10개월 된 물고기를 활용했습니다. 성숙한 WIK 균주 제브라피쉬의 BW는 0.2g에서 0.5g까지 다양할 수 있습니다. 5분 이상 지속된 장시간 마취 후 독스(Dox) 주사를 놓으면 물고기 폐사율이 높았습니다.

3. 주입을 위한 바늘 및 스테이션의 준비

  1. 목표 용량인 20μg/g을 달성하기 위해 평균 체중을 기준으로 각 물고기에 필요한 Dox 원액 5mg/mL의 주입량을 결정합니다.
  2. 다음 공식을 사용하여 사출 부피를 계산하십시오.
    주입량 계산식, 생선 복용량, 농도, 과학 다이어그램.
  3. 주입을 위해 1단계에서 계산한 Dox 용액을 희석하기 위해 1x Hank's Balanced Salt Solution(HBSS)을 추가하여 총 부피가 5μL에 도달합니다.
    알림: BW를 기준으로 각 물고기 그룹에 대해 벌크 용액을 사용하고 실험 과정에서 주입할 용액이 부족하지 않도록 각 그룹에 3마리의 물고기를 추가로 포함합니다.
  4. 튜브를 부드럽게 두드린 다음 최고 속도로 잠시 미세 원심분리기를 사용하여 실온에서 10초 동안 용액을 수집합니다.
  5. 준비된 용액을 얼음 위에 놓고 빛에 노출되지 않도록 보호하십시오.
  6. 해부 현미경 아래에 스폰지로 깨끗한 100mm 페트리 접시를 놓고 초점을 조정합니다.
    알림: 스펀지에는 4cm 길이의 홈이 있습니다. 스펀지의 탄성 수축은 물고기를 지지하고 물고기 몸을 제자리에 유지합니다. 스폰지는 재사용할 수 있습니다.
  7. 10μL 마이크로 주사기에 34G 베벨 니들을 장착합니다.
  8. 1x HBSS 버퍼로 바늘을 세척하여 기포를 제거하고 주사기에서 잠재적인 막힘을 제거합니다.
  9. 주입을 위해 4단계에서 준비한 용액 5μL를 측정합니다.

4. IP Dox 주입 절차

  1. 다 자란 물고기를 0.16mg/mL의 트리케인이 든 물에 1분 동안 넣어 의식을 잃게 합니다.
  2. 복부가 위를 향하도록 하여 내장된 스폰지의 홈에 물고기를 놓습니다(그림 1A).
  3. 가슴 지느러미의 중간점에서 시작하여 심강의 뒤쪽을 향해 0°에 가까운 각도로 바늘을 삽입합니다(그림 1B).
    알림: 시술 중 심장에 닿지 않도록 하십시오.
  4. 바늘을 꼬리 쪽으로 향하게 하고 은색 피부 아래로 이동합니다.
    알림: 바늘을 은색 피부에 가깝게 배치하고 긁히거나 뚫리지 않도록 주의하십시오.
  5. 전체 수술 동안 복강 내의 바늘 끝을 모니터링합니다(그림 1C).
    알림: 간, 장, 수영하는 방광 및 기타 장기를 손상시키지 마십시오. 바늘이 배설물 구멍 근처의 장 끝에 도달하는지 확인하십시오.
  6. 5μL Dox 용액을 점차적으로 균일하게 분배한 다음 누출을 방지하기 위해 원래 경로를 따라 바늘을 천천히 빼냅니다(그림 1D).
  7. Dox 용액의 붉은 색을 관찰하여 Dox의 존재 여부를 복강을 모니터링합니다(그림 1E).
  8. 주입된 물고기를 신선한 시스템 물로 채워진 깨끗한 교차 탱크로 신속하게 옮겨 물고기가 회복할 수 있도록 합니다.
    참고: 주사 사이에 1x HBSS 완충액으로 바늘을 한 번 씻어냅니다.

5. 주입 후 물고기 관리

  1. 주입 후 순환을 통해 물고기를 시스템으로 되돌려 놓습니다.
  2. 주입된 모든 물고기를 회복을 용이하게 하기 위해 추가로 24시간 동안 단식시킵니다.
  3. 첫 주에는 물고기를 주의 깊게 관찰하십시오. 다른 물고기가 감염되지 않도록 가능한 한 빨리 죽은 물고기를 제거하십시오.
    참고: 초기 24시간 이내의 물고기 사망은 주사 또는 장기간의 마취로 인한 신체적 부상 때문일 수 있습니다. 물고기 수를 기록하여 생존 곡선을 생성합니다.
  4. 주입 후 56일째에 Dox-주입된 물고기를 표현형으로 표현하기 위해 심장 초음파를 수행합니다11.
    참고: HBSS 용액이 주입된 해당 대조군에 대한 조건 및 절차의 균일성을 확인하십시오.

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결과

이전에는 성인 제브라피시에서 독소루비신을 투여하기 위해 두 가지 복강내(IP) 방법이 사용되었습니다 4,10. Kinkel et al.4에 의해 설명된 Classic IP 주입 방법으로도 알려진 방법 I에서 바늘은 복부가 위쪽을 향하도록 하여 골반 지느러미 사이의 정중선에 대해 45° 각도로 삽입되었습니다. 방법 II 또는 Ma et al.10에 의해 설명된 대체 IP 주입 방법에서, 바늘은 물고기의 등쪽을 통해 삽입되었습니다(그림 2A(i,ii)). 반면, 방법 III에는 두 가지 주요 변경 사항이 있습니다. 먼저 복부가 위를 향하고 바늘이 가슴 지느러미의 중간 지점에서 복부 쪽으로 향하도록 주사 위치를 변경합니다. 침투 부위는 이 영역의 자연 구멍에 의해...

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토론

기존의 두 가지 IP 주입 방법 4,10과 달리 새로운 IP 주입 방법은 다음과 같은 뚜렷한 특징이 있습니다. 첫째, 고유한 바늘 침투 각도가 사용됩니다(0에 가까움). 둘째, 바늘은 독특한 위치, 즉 물고기의 복부 표면에 있는 자연적인 구멍을 통해 물고기를 관통하여 주입을 용이하게 합니다. 마지막으로 바늘의 움직임은 앞쪽에서 뒤쪽으로 이루어집니다. 이러한 조정은 삽입 과정에서 Dox의 누출을 최소화하여 발생하는 장기 손상을 효과적으로 줄입니다. 바늘의 경로는 은색 피부 바로 아래에 있으며 조사관이 지속적으로 모니터링할 수 있습니다. 따라서 바늘 끝과 내부 장기 사이의 직접적인 접촉을 효과적으로 피할 수 있습니다. 주입 후 주입된 모든 Dox는 복강에 머물며 물고기가 깨어 있고 앞으로 헤엄치기 시작할 때 유일한 출구(구멍 지점)가 닫힐 수 있습니다.

기존의 두...

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감사의 글

이 연구는 NIH (HL107304 및 HL081753)와 Mayo Foundation (Center for Biomedical Discovery and Cardiovascular Research Center)의 지원을 받았으며 X.X. J.L.은 Central South University, No. 56021702의 Fundamental Research Funds에서 자금을 지원받았습니다. 베니니오 고어(Beninio Gore)와 쿠엔틴 스티븐스(Quentin Stevens)가 제브라피시 시설을 관리해 주셔서 감사합니다.

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재료

이 논문에 사용된 재료 목록
이름회사카탈로그 번호댓글
10 &뮤; L NanoFil-syringeWorld Precision Instruments, IncNANOFIL주입 도구
34 G 바늘World Precision Instruments, IncNI34BV-2주입 도구
60 mm 페트리 접시피셔 과학적/피셔브랜드FB0875713A스폰지 배치 
DIC 모델 생성을 위한Doxorubicin 염산염SigmaD1515-10MG
해부 현미경NikonSMZ800
초음파 심VISUAL SONICSVevo 3100측정 심장 기능
폼 스폰지Jaece IndustriesL800-D물고기 배치
Hank's Balanced Salt Solution (HBBS)Thermo Fisher14025076Vehicle for Dox
Microcentrifuge southernlabwareMyFuge/C1012는 Dox 솔루션을 수집합니다 
정밀 저울저울 토르발AD60디지털 저울
TricaineArgentMS-222마취 물고기
튜브Eppendorf1.5 mL저장 
vevo LAB  소프트웨어FUJIFILM VISUAL SONICS 5.6.0심장의 정량화
Dox 약물;전도

참고문헌

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  3. Sciarra, J. B., Tyler, A., Kolb, A. A gelatin-based diet for oral dosing juvenile to adult zebrafish (Danio rerio). Lab Animal Sci Prof. , https://api.semanticscholar.org/CorpusID:85611302 32-35 (2014).
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  5. Pugach, E. K., Li, P., White, R., Zon, L. Retro-orbital injection in adult zebrafish. J Vis Exp. (34), e1645(2009).
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  13. Zhu, W., Shou, W., Payne, R. M., Caldwell, R., Field, L. J. A mouse model for juvenile doxorubicin-induced cardiac dysfunction. Pediatric Res. 64 (5), 488-494 (2008).
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  15. Chaoul, V., et al. Assessing drug administration techniques in zebrafish models of neurological disease. Int J Mol Sci. 24 (19), 14898(2023).
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