Name: 망막 신경절 세포의 생존을 공부 시신경의 호감 상해 Murine 모델 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-04-25T15:30:00.000+00:00
Duration: 9 min 7 s
Description: 배우세요 마우스 모델에서 망막 신경절 세포의 생존을 분석하는 시신경 압상 손상 기법을. 형광 염료 역행성 표지와 형광 현미경을 활용하여 세포 사멸 메커니즘을 연구하고 녹내장 등 시신경 병증 치료 개발에 기여하는 방법입니다.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

우리의 연구는 NIH, 국립 안과 연구소의 교내 연구 프로그램에 의해 지원됩니다.

사용된 모든 장비와 시약이 멸균됩니다. 모든 동물 실험은 동물 케어 승인 및 (동물 연구 프로토콜 네이 - 570) 네이 / NIH에서위원회 (ACUC)를 사용하고, NIH의 지침과 규정에 따라 수행 하였다. 1. 1 일에서 망막 신경절 세포의 퇴행성 기준 라벨링 (RGCs) 이 절차의 목적은 삼일 시신경의 호감 부상하기 전에 생쥐의 우수한 colliculus에 신경 추적 염료를 주입하여 망막 신경절 retrogradely 세포 레이블을하는 것입니다. 염료 retrogradely 망막 신경절 세포에 의해 촬영과 생활 RGCs (그림 1)에 대한 마커를 제공하는 것입니다. 이 방법은 약간의 변화 1-5로 가능한 RGCs의 재현성 라벨을 산출. <ol><li> 깊이 마우스를 마취. 머리 위에 머리를 청소합니다. 작은 stereotaxic 장치에서 마우스를 놓습니다. 보호 oinment는 두 눈을에 적용됩니다. 머리 피부를 소독 세 번 iodophor과 70 % 알코올 스크럽을 사용하여 각. </li><li> 두개골을 노출하기 위해 피부에 절개를하고, 3 % 과산화수소를 사용하여 그것이 건조하고 깨끗하게 유지. </li><li> 식별 및 bregma을 표시합니다. bregma 뒤에 2.9 mm 각 반구 7 정중선을 가로 0.5 mm에서 우수한 colliculus 위에 구멍을 드릴. 드릴링하는 동안 구멍이 보조 열 부상을 방지하기 곤란있는 사이트로 살린 적용됩니다. </li><li> stereotaxic 측정 장치와 해밀턴 주사기를 사용하여 두뇌의 골질 표면으로부터 1.6 mm의 깊이 각 반구의 우수한 colliculus로 매우 느리게 FluoroGold 신경 추적 염료 (3 % 1 μl 호수에서 Fluorochrome)을 주입. </li><li> 절개 사이트를 봉합해. 진통제에 대한 buprenorphine의 피하 주사를 제공합니다. </li><li> 따뜻하고 건조한 지역에 마우스를 이동하고 똑바로 자세를 유지하며, 홈 케이지로 돌아갈 수 때까지 그것을 모니터합니다. 라벨 절차 후 3 일 동안, 체계 진통제 (예, buprenorphine) 및 국소 항생 연고는 회 부여되고 마우스가 밀접하게 모니터합니다. </li></ol> 2. 일 4 시신경의 호감 상해 이 절차에서는, 우리는 망막 신경절 세포의 점진적인 죽음에 이르게됩니다 axons에 대한 기본 손상 (그림 2)을 일으킬 수있는 시신경에 호감 부상을 적용합니다. <ol><li> 추적 염료 신청 후 3 일, 마우스 깊이 anesthetized입니다. 해부 현미경을 사용 한 눈 결막은 봄 가위를 사용하여 4시 입장에 대한에 베인 수 있습니다. </li><li> 부드럽게 궤도 근육 비켜 그들을 제쳐두기. 눈 세계로부터 출구에서 흰색 시신경을 폭로. 모든 혈관을 손상하지 않도록 아주 조심 해요. </li><li> 크로스 액션 포셉 한 켤레의 도움으로 약 3 초 동안 안구에서 약 2 mm에서 시신경에 호감 부상을 적용합니다. 출혈을 일으킬 수있는 안과 동맥을 손상하지 않도록 아주 조심 해요. </li><li> 호감 부상의 완료 후, 절개는 봉합합니다. </li><li> 마우스가 마취에서 회복하기 전에 진통제에 대한 buprenorphine의 피하 주사를 제공합니다. </li><li> 그것이 똑바로 자세를 유지하고 홈 케이지로 돌아갈 수 때까지 따뜻하고 건조한 지역에 마우스를 이동하고 모니터링합니다. 호감 부상 절차 후 3 일 동안, 체계 진통제 (예, buprenorphine) 및 국소 항생 연고는 회 부여되고 마우스가 밀접하게 모니터합니다. </li></ol> 3. Retinae를 수확하고 일 11시 RGC 서바이벌 분석 이 절차의 목적은 retinaeto가 망막 신경절 세포의 생존을 분석 수확하는 것입니다. <ol><li> 11 (ONC 매일 7) 하루, 마우스는 CO 2 주입 및 경추 전위에 의해 euthanized있다. </li><li> 눈은 궤도에 압력을 적용하여 포셉 한 켤레의 도움으로 enucleated 있습니다. </li><li> 눈은 두 시간 동안 4 % paraformaldehyde 용액에 고정하고 PBS로 세 번 씻어 있습니다. 망막을 해부하다. 망막의 해부의 과정은 이미 6. Gustmann, S. 외 의해 2010 년 정돈 이전에 출판되어 있으며, 따라서 여기서 설명되지 않습니다. </li><li> 살아 망막 신경절 세포의 이미지는 망막의 정의 지역에서 형광 현미경을 사용하여 촬영하고, 망막 신경절 세포 밀도가 계산하실 수 있습니다. 시신경의 호감 부상 여부에 상관없이 형광 - 표시 망막 신경절 세포의 대표적인 결과는 그림 3에 표시됩니다. </li></ol> 4. 대표 결과 : 망막 신경절 세포의 생존, 시신경의 호감 부상 후 7 일 분석하려면 retinae는 고정, 수확 평평하고 장착했습니다. 망막 이미지는 형광 현미경을 사용하여 촬영되었다. 손상되지 않은 정상적인 R과 비교etina은 (일반, 왼쪽), 실용적 RGCs의 번호는 (retrogradely 우수한 colliculus로 주입 FluoroGold 신경 추적 염료로 표시된 녹색) 시신경의 호감 부상 (오른쪽, ONC) (그림 3)과 retinae 크게 낮은 . <img src="/files/ftp_upload/2685/2685fig1.jpg" alt="그림 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="그림 1"> 그림 1. 망막 신경절 세포의베이스 라인 후퇴 라벨링 시신경의 호감 부상 후 다른 시간 지점에서 가능한 망막 신경절 세포를 계산하기 위해 망막 신경절 세포는 (시신경 전에 뇌 사흘 만에 우수한 colliculus에 신경 추적 염료 (녹색 색상)을 주사하여 retrogradely 레이블 아르 적색) 호감 부상. 망막 신경절 세포의 axons이 우수한 colliculus에 거주하고 있으므로, 추적 염료 retrogradely RGCs 의해 촬영과 생활 RGCs에 대한 마커를 제공하는 것입니다. <img src="/files/ftp_upload/2685/2685fig2.jpg" alt="그림 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="그림 2"> 그림 2. 시신경의 호감 부상 망막 신경절 세포의 생존의 상태를 분석하기 위해서는, 호감 부상은 axons에 기본 피해를 입을 수있는 시신경 (적색)에 적용됩니다. 이것은 망막 신경절 세포의 점진적인 죽음을 초래합니다. 추적기 색소 (녹색) 분사 후 3 일, 마우스 anesthetized입니다. 눈 하나의 결막이 베인입니다. 궤도 근육 비켜 그들을 제쳐두기. 눈 세계로부터 출구에서 시신경을 쉽게받을 수 있습니다. 크로스 액션 포셉 한 쌍의를 사용하여 약 3 초 동안 안구에서 약 2 mm에서 시신경에 호감 부상을 적용합니다. <img src="/files/ftp_upload/2685/2685fig3.jpg" alt="그림 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="그림 3"> 그림 3. 형광 - 표시 시신경의 호감 부상 여부와 상관없이 망막 신경절 세포 망막 신경절 세포의 생존, 시신경의 호감 부상 후 7 일 분석하려면 retinae는 고정, 수확 평평하고 장착했습니다. 망막 이미지는 형광 현미경을 사용하여 촬영되었다. 손상되지 않은 정상적인 망막 (일반, 왼쪽)와 비교할 때, 가능한 RGCs의 숫자 (녹색, retrogradely 우수한 colliculus로 주입 FluoroGold 신경 추적 염료로 표시)은 시신경의 호감 부상 (오른쪽, ONC와 retinae 크게 낮은 ) (그림 3). 스케일 바 : 50 μm의

<ol><li>Yoles, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((GM1+reduces+injury-induced+metabolic+deficits+and+degeneration+in+the+rat+optic+nerve%5BTitle%5D)+AND+%22Investigative+ophthalmology+%26+visual+science%22%5BJournal%5D)">GM1 reduces injury-induced metabolic deficits and degeneration in the rat optic nerve.</a> Investigative ophthalmology & visual science. 33, 3586-3591 (1992).</li>
<li>Fisher, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vaccination+for+neuroprotection+in+the+mouse+optic+nerve%3A+implications+for+optic+neuropathies%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Vaccination for neuroprotection in the mouse optic nerve: implications for optic neuropathies.</a> J Neurosci. 21, 136-142 (2001).</li>
<li>Levkovitch-Verbin, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RGC+death+in+mice+after+optic+nerve+crush+injury%3A+oxidative+stress+and+neuroprotection%5BTitle%5D)+AND+%22Investigative+ophthalmology+%26+visual+science%22%5BJournal%5D)">RGC death in mice after optic nerve crush injury: oxidative stress and neuroprotection.</a> Investigative ophthalmology & visual science. 41, 4169-4174 (2000).</li>
<li>Li, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((VEGF-B+inhibits+apoptosis+via+VEGFR-1-mediated+suppression+of+the+expression+of+BH3-only+protein+genes+in+mice+and+rats%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+clinical+investigation%22%5BJournal%5D)">VEGF-B inhibits apoptosis via VEGFR-1-mediated suppression of the expression of BH3-only protein genes in mice and rats.</a> The Journal of clinical investigation. 118, 913-923 (2008).</li>
<li>Tang, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Survival+effect+of+PDGF-CC+rescues+neurons+from+apoptosis+in+both+brain+and+retina+by+regulating+GSK3beta+phosphorylation%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+experimental+medicine%22%5BJournal%5D)">Survival effect of PDGF-CC rescues neurons from apoptosis in both brain and retina by regulating GSK3beta phosphorylation.</a> The Journal of experimental medicine. 207, 867-880 (2010).</li>
<li>Gustmann, S., Dunker, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo-like+organotypic+murine+retinal+wholemount+culture%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">In vivo-like organotypic murine retinal wholemount culture.</a> J Vis Exp. , (2010).</li>
<li>Franklin, K., Paxinos, G. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aFranklin%2C+K+%22The+Mouse+Brain+in+Stereotaxic+Coordinates%22">The Mouse Brain in Stereotaxic Coordinates</a>. , Academic Press. San Diego. (1997).</li>
</ol>

관심 없음 충돌 선언하지 않습니다.

시신경의 호감 부상 murine 모델 RGC 죽음과 생존의 과정을 연구하는 데 유용합니다. 이 모델은 또한 종종 RGC apoptosis과 생존에 다른 시약과 유전자의 효과를 조사하는 데 사용됩니다. 이 모델의 장점은 최소한의 변화와 재현성의 높은 수준을 가지고있다는 사실이다. 그러나, 특별한주의가이 모델의 몇 가지 단계가 필요합니다. 첫째, 시신경의 호감 부상을 만들 때, 그것은 그들이 안과 동맥 따라서 이후 망막 국소 빈혈에 손상을 초래할 수 있기 때문에, 너무 무력을 사용하지 않으며 너무 오랫동안 호감하지 필수적입니다. 또한 시신경을 폭로하려고 할 때, 하나는 마우스 눈 주위의 다른 혈관을 손상하지 않도록 큰주의를 기울여야한다.

<table><tbody><tr><td>정위 고정 장치</td><td>ASI Instruments</td><td>SAS-4100</td><td></td></tr><tr><td>해부 현미경</td><td>World Precision Instruments, Inc.</td><td>PZMIV-BS</td><td></td></tr><tr><td>메스 핸들</td><td>Fine Science Tools</td><td>10003-12</td><td></td></tr><tr><td>메스 날 #15</td><td>Fine Science Tools</td><td>10015-00</td><td></td></tr><tr><td>마이크로 드릴</td><td>Fine Science Tools</td><td>18000-17</td><td></td></tr><tr><td>봉합 바늘</td><td>Fine Science Tools</td><td>12050-03</td><td></td></tr><tr><td>스프링 가위</td><td>Fine Science Tools</td><td>16144-13</td><td></td></tr><tr><td>Dumont #5 포셉</td><td>Fine Science Tools</td><td>11252-50</td><td></td></tr><tr><td>Hamilton 시린지</td><td>Hamilton Co</td><td>88400</td><td></td></tr><tr><td>거즈 스펀지</td><td>Office Depot</td><td>674889</td><td></td></tr><tr><td>형광색소</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>39286</td><td></td></tr><tr><td>알코올</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>459844</td><td>70%</td></tr><tr><td>H&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;O&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>H3410</td><td>3%</td></tr></tbody></table>

망막 신경절 세포의 생존을 공부 시신경의 호감 상해 murine 모델

An Optic Nerve Crush Injury Murine Model to Study Retinal Ganglion Cell Survival

시신경 손상은 돌이킬 수없는 시력 상실 결과 망막 신경절 세포 (RGCs)의 점진적 죽음 뒤에, axonal 퇴보를 가져올 수 있습니다. 인간의 이러한 질병의 예는 외상 시신경 신경 장해 및 녹내장에서 시신경의 퇴행을 포함합니다. 이것은 시력 손실과 실명으로 이어지는 시신경의 머리에 전형적인 변화, 진보적인 시신경의 퇴행 및 망막 신경절 세포의 손실, 통제하는 경우,이 특징입니다. 시신경의 호감 (ONC) 부상 마우스 모델은 외상성 시신경 신경 장해에 대한 중요한 실험 질병 모델,이 모델에서는 녹내장 등 시신경 점차 망막 신경절 세포의 apoptosis에 이르게하는 호감의 부상이다. 이 질병 모델의 연결을 죽음과 치료 대책의 발전을 위해 필수적이며, 생존의 일반적인 프로세스와 메커니즘을 연구하는 데 사용할 수 있습니다. 또한, 약리 및 분자 방법은 광학 신경 장해 다양한 유형의 치료에 잠재적인 치료 시약을 파악하고 테스트하는이 모델에 사용할 수 있습니다. 여기, 우리는 일 1 망막 신경절 세포의베이스 라인 역행 라벨 (RGCs), 하루 4 (II) 광학 신경 호감 부상, (III) retinae를 수확하고 하루 RGC 생존 분석 (I)의 단계 시범에 의해 단계를 제공합니다 11과 (IV) 대표 결과.

이 프로토콜은 망막 신경절 retrogradely 세포, 및 이후 망막 신경절 세포 생존과 apoptosis를 분석하기 위해서는 시신경의 호감 부상을하기 위해 레이블을하는 방법을 보여줍니다. 그것은 녹내장을 포함하여 시신경 신경 장해의 종류에 대한 실험 질병 모델입니다.

망막 신경절 세포의 생존을 공부 시신경의 호감 상해 Murine 모델

시신경 손상은 축삭 변성을 유발할 수 있으며, 이는 망막 신경절 세포(RGCs)의 점진적인 사멸로 이어져 결국 가역적이지 않은...

본 절차는 마우스 모델에서 시신경 압착 손상 유도 및 그에 따른 망막 신경절 세포 생존 분석 방법을 보여줍니다. 이는 상구에 형광 염료를 주입함으로써 수행됩니다. 첫 번째 단계로, DI는 역행성으로 운송되어 망막 신경절 세포에 도달함으로써 해당 세포군을 표지하게 됩니다.시신경 퇴행을 유도하여 망막 신경절 세포의 점진적인 사멸을 일으키기 위해 4일 차에 시신경 압착 손상을 가합니다. 11일 차에는 망막 신경절 세포의 생존 여부를 조사하기 위해 망막을 박리합니다. 이 절차의 결과는 형광 현미경을 사용하여 수행한 Fluoro-Gold 표지 망막 신경절 세포 계수를 통해 남아 있는 생존 망막 신경절 세포의 수를 보여줍니다.안녕하세요, 저는 NIH 국립안과연구소(National Eye Institute)의 Dr.Lab 소속입니다. 지금부터 마우스 시신경 압착 손상 모델의 수행 방법을 보여드리겠습니다. 이 기술의 주요 장점은 망막 신경절 세포를 표지하고, 시신경 압착 손상 후의 생존 또는 퇴행을 조사할 수 있는 단순하고 안정적이며 효율적인 방법을 제공한다는 점입니다.이 측정법은 녹내장과 같은 시신경 분야의 핵심적인 질문들에 답하는 데 도움이 될 수 있습니다. 시신경 손상 전이나 동시에 성장 인자 또는 일부 수용체 작용제나 억제제와 같은 치료를 적용한다면, 이 기술의 영향은 치료 영역까지 확장될 수 있습니다. 일반적으로 이 방법에 익숙하지 않은 연구자는 어려움을 겪을 수 있으며, 시신경에는 혈관이 분포하고 있어 초기에는 출혈이 자주 발생합니다.따라서 시신경 가라지(optic nerve garage) 부분을 익히기가 어렵기 때문에 이 방법의 시각적 시연이 매우 중요합니다. 하지만 승인된 마취제로 마우스를 깊게 마취시킨 후 연습하면 더 수월해질 것입니다. 절개 부위 주변의 머리 털을 깎아냅니다.마우스를 정위 고정 장치에 조심스럽게 배치하고 머리가 안정적으로 고정되었는지 확인합니다. 요오드와 70% 알코올 용액을 교대로 사용하여 두피를 각각 3회씩 소독합니다. 멸균 메스를 사용하여 두피에 시상 절개를 가해 두개골을 노출시킵니다.3% 과산화수소로 두개골을 세척합니다. 그다음 두개골에서 시상봉합이 관상봉합과 교차하는 지점인 bgma를 확인합니다. brema로부터 후방으로 2.9 millimeters, 외측으로 0.5 millimeters 지점을 측정합니다.이 지점을 주의 깊게 표시하고, 두 번째 표시 지점에 작은 구멍을 뚫습니다.

an-optic-nerve-crush-injury-murine-model-to-study-retinal-ganglion

Research

연구

JoVE Journal

Neuroscience

신경과학

시신경의 절개면은 성인 CNS 손상의 널리 사용되는 모델입니다. 망막 신경절 세포의 90 퍼센트 (RGCs)은 누구의 axons 완전히 axotomy 후 14 일 이내에 죽는 (axotomy) 그었 있습니​​다. 이 모델은 실험 조작을 쉽게받을 수있는 고도 재현할 수 있습니다.

시신경의 절개 : 중추 신경계에서 신경 세포의 Apoptosis 성인의 모델

시신경의 절개면은 성인 CNS 손상의 널리 사용되는 모델입니다. 이 모델은 전 세계적으로 망막을 대상에 직접 망막 신경절 세포의 부상의 연결 인구를 대상으로 실험 조작의 번호를 수행하는 데 이상적입니다.

포유류의 CNS에서 시신경의 절개 후 실험에 대한 노는 방법

이 동영상은 순진 마우스 시각 투사의 조영 증강 자기 공명 영상과 급성 시신경 압박 손상 및 만성 시신경 변성과 관련된 시신경 변성의 반복 및 종 생체 내 연구에, 임상 3 T 스캐너를 사용하는 방법을 보여줍니다 녹아웃 마우스 (P50 KO).

마우스의 조영 증강 MRI에 의한 시신경 섬유 무결성의 생체 내 이미징

이 프로토콜의 목적은 화학적 랫트 후부 시신경에 허혈 손상을 유도하는 것이다. 이 모델은 후방 허혈성 시신경 병증의 병태 생리에 대한 연구 및이를위한 치료 적 접근 방법과 다른 광섬유에 중요한 신경 병증,뿐만 아니라 다른 CNS 허혈성 질환이다.

광 화학적으로 유도 된 후방 허혈성 시신경 병증의 쥐 모델

녹내장은 망막 신경절 세포의 손상이 특징입니다. 동물 모델에서 녹내장을 유도하면 이 질병에 대한 연구에 대한 통찰력을 제공할 수 있습니다. 여기에서는 생체 내 쥐 모델에서 망막 신경절 세포의 소실을 유도하고 분석을 위한 전체 마운트 망막의 준비를 보여주는 절차를 간략하게 설명합니다.

녹내장 유도 절차<em&gt; 생체</em&gt; 쥐 모델 및 전체 마운트 망막 준비

이 문서에서는 마우스에서 안압 상승으로 망막 허혈 - 재관류 손상을 유도하는 절차를 설명합니다. 안압 상승으로 망막 허혈 - 재관류 손상은 망막 신경 혈관 기기의 인간 질병에 대한 잠재적 인 세포 메커니즘과 치료를 조사하는 연구를 가능하게 망막에 손상 산소와 영양 공급에 의해 특징 인간의 병리를 모델링하는 역할을한다.

안압 상승을 통해 망막 허혈 - 재관류 손상의 마우스 모델

망막 신경 절 세포 (RGCs)의 2 차 변성 녹 내장에서 일반적으로 발생합니다. 이 연구 부분 시 신경 transection 위한 혁신적인 수술 접근 방법을 설명합니다. 이 공간 절약 요원 접근의 사용 모델의 응용 범위를 확장 하며 보조 부상 메커니즘의 탐사 RGCs에 새로운...

쥐에 있는 부분 시 신경 Transection: 망막 신경 절 세포의 2 차 변성을 평가 하기 위해 새로운 수술 방식으로 설립 모델

이 논문은 표준 안과 수술 기법을 사용하여 토끼 모델에서 시신경 압착을 수행하기 위한 자세한 지침을 제시합니다.

토끼 모델에서 시신경 파쇄를 위한 외과적 접근 방식

이 문서는 해부하다와 마우스에서 분리된 망막 준비에서 기록하는 방법에 대한 설명을 제공합니다. 특히, 우리는 찬란 표시 신경절 세포 인구의 빛을 반응을 기록하고 이후 식별하고 그 형태를 분석하는 방법에 대해 설명합니다.

유전적으로 망막 신경절 라벨 셀에서 라이트 응답을 기록하기 위해 절연 망막 준비

쥐의 시신경에 직접 주입하는 것은 재생 연구에 유용합니다. 우리는 두개골을 열지 않는 쥐의 시신경에 직접 주입하는 최소 침습적 기술을 보여줍니다. 이 방법을 사용하면 수술 합병증을 최소화하고 회복 속도가 빨라집니다.

쥐 시신경에 주입을위한 최소 침습 기술

배우세요 마우스 모델에서 망막 신경절 세포의 생존을 분석하는 시신경 압상 손상 기법을. 형광 염료 역행성 표지와 형광 현미경을 활용하여 세포 사멸 메커니즘을 연구하고 녹내장 등 시신경 병증 치료 개발에 기여하는 방법입니다.

망막 신경절 세포의 생존을 공부 시신경의 호감 상해 Murine 모델

더 많은 동영상 탐색