October 1st, 2007
이 비디오에서는 E18 두피 랫 뉴런의 준비를 보여줍니다.
안녕하세요, Dr.Newly John의 연구실에 오신 것을 환영합니다. 이전 비디오에서 우리는 연구원이 순수한 축삭 분획에서 뉴런의 세포체를 분리할 수 있는 플랫폼인 뉴런 장치를 제조하는 방법을 시연했습니다. 소프트 리소그래피는 장치를 만드는 데 사용되는 기술이며, 이는 이전에 포토리소그래피를 사용하여 제조된 장치 설계를 포함하는 실리콘 웨이퍼 상에 PDMS를 주조 및 경화하는 것으로 구성됩니다.
이 비디오에서는 spro dolly E 18 피질 쥐 뉴런의 준비와 뉴런을 뉴런 장치에 로드하는 방법을 보여줍니다. 키아나 리를 소개해드리죠. 그녀는 오늘 시연을 할 것입니다.
시작하기 전에 필요한 모든 매체와 시약을 수조에서 37도까지 예열하는 것이 중요합니다. 신경 기저 매체 0.25%트립신과 10%FBS를 함유한 DMEM을 볼 수 있습니다. 세포를 수리하는 데 사용되는 후드에 놓인 모든 것을 살균하고 70% 에탄올로 닦아내는 것이 중요합니다.
먼저 조직 배양 후드를 70% 에탄올로 닦아냅니다. 다음으로, 튜브를 고정하는 데 사용되는 플라스틱 랙에 에탄올이 분사됩니다. 다음으로, 트라이 스트라이션 공정에 사용되는 고무 볼은 에탄올로 청소하고 있습니다.
건조할 수 있는충분한 시간을 확보하기 위해 초기에 이 작업을 수행하는 것이 중요합니다. 다음으로, 필요한 시약을 에탄올로 닦아내고 후드로 옮깁니다. 이전에 해부 된 하나의 뇌를 나타내는 E 18 태아 쥐 피질의 두 조각은 1 ml, 얼음 차가운, 칼슘 무료, 마그네슘 무료 해부 완충액을 포함하는 15 ml 튜브에 배치되며, 0.25 % tripsin EDTA 1 ml는 해부 완충액의 피질에 추가되어 최종 부피를 두 개의 밀과 최종 tryin 농도를 0.125 %로 가져옵니다.트립신이 지금 추가 된 피질을 포함하는 15 ml 튜브는 다음 배치됩니다 37도의 수조에서 8분 동안 태아 피질이 트립신에서 37도에서 잠복하는 동안.
3개의 페이스트 피펫이 화염 광택 처리됩니다. 유리 피펫의 끝은 화염의 파란색 부분 근처에서 화염과 접촉하도록 배치하고 개구부만 주황색으로 바뀔 때까지 천천히 회전합니다. 주황색으로 변했습니다.
유리 피펫이 무너지지 않도록 계속 회전하는 것이 중요합니다. 유리 피펫의 개구부가 연속적으로 더 작아집니다. 피질이 37도에서 8분 동안 배양된 후 10%FBS를 함유한 DMEM의 트립신 10ml를 피질에 첨가하여 트립신 반응을 막는 데 도움이 되도록 피질에 첨가한 후 개구부를 너무 작게 만들고 싶지 않다는 점에 유의하는 것도 중요합니다.
외피와 DMEM 10%FBS를 포함하는 15ml 튜브는 2, 2분 동안 500RPM으로 원심분리됩니다. 생물 안전 캐비닛에서 유리 피펫에 부착된 진공 흡입은 피질에서 상층액을 제거하는 데 사용됩니다. 펠릿을 방해하거나 빼내지 않도록 주의하십시오.
B 27과 글루타메이트를 함유한 신경 기저 배지 1ml를 피질 펠릿에 첨가하고 위아래로 부드럽게 피펫으로 만듭니다. 기포는 산화로 인해 세포를 손상시킬 수 있으므로 위아래로 피펫팅하는 동안 기포를 생성하지 않는 것이 매우 중요합니다. 다음으로, 멸균 고무 전구를 피펫 끝에 부착하고 약 5회 위아래로 피펫팅하여 피질을 트라이앵글하는 데 사용되는 가장 넓은 개구부를 가진 화재 광택 후방 피펫
.기포가 유입되지 않도록 주의하세요. 그래. 이 과정은 다른 두 개의 유리 피펫으로 계속되었으며 각각 개구부 크기가 감소했습니다. 앞서 언급했듯이 트라이 줄무늬 프로세스 중에 기포가 유입되지 않도록 하는 것이 중요합니다.
또한 더 이상 보이는 청크가 표시되지 않는다는 것을 알아차려야 합니다. 미디어에서 피질의 어떤 덩어리도 더 이상 볼 수 없을 때까지 트라이 등급을 유지하는 것이 중요합니다. ation 후, 세포는 2 분 동안 2, 500 RPM에서 다시 중심 융합됩니다.
이것은 두 조각의 피질에서 기대할 수 있는 펠릿의 대략적인 크기와 비슷합니다. 원심분리 후, sup natin은 세포 펠릿에서 다시 한 번 제거됩니다. 슈퍼 나틴이 제거된 후, B 27과 글루타메이트를 함유한 신경 기저 매체 1ml를 피질에 첨가하여 피질을 현탁시키는 데 사용합니다.
세포 펠릿을 다시 한 번 조심스럽게 위아래로 피펫으로 씌워 기포가 추가되지 않도록 하고 세포 펠릿이 고르게 분포되고 분해되도록 합니다. 신경 기저 배지를 1mil 더 세포 현탁액에 추가하여 최종 부피를 2mil로 만듭니다. 다음으로, 재현탁 세포 용액을 BD biosciences 40 미크론 세포 스트레이너를 통해 여과하여 세포를 계수하고 생존력을 평가합니다.
60마이크로리터의 새로운 신경 기저 배지를 멸균 마이크로 퍼지 튜브에 넣습니다.그런 다음 20마이크로리터의 세포를 60마이크로리터의 신경 기저 배지에 첨가하고, 마지막으로 20마이크로리터의 트리안 블루를 신경 기저 배지의 세포에 추가합니다. 트리안 블루는 세포가 트리안 블루로 염색된 후 더 이상 살아 있지 않은 세포를 염색합니다.
20마이크로리터를 혈구분석기에 피펫팅하여 현미경으로 확인합니다. 생존 가능한 세포는 투명하고 반투명하게 보이지만 막에 구멍이 뚫린 세포는 트리안 블루로 인해 파란색으로 염색됩니다. 일반적으로 우리는 대뇌피질당 약 250만 개의 세포와 800만 개의 세포를 얻습니다.
우리는 일반적으로 하나의 뇌에서 두 개의 피질 조각을 얻고, 세포는 2mils의 최종 부피로 다시 부유합니다. 따라서 세포의 최종 농도는 일반적으로 mil당 250만 개의 세포에서 mil당 800만 개의 세포 사이입니다. 일반적으로 장치당 약 20마이크로리터의 셀을 로드합니다.
이것은 저희에게 50, 000의 세포와 160, 000의 세포 사이 장치 당 세포의 범위를 준다. 세포 밀도는 응용 분야에 따라 달라질 수 있습니다. 그러나 너무 낮은 밀도에서 일차 뉴런을 파종하면 일반적으로 세포 사멸로 이어집니다.신경 기저 매체를 포함하는 이전에 준비된 장치는 무균 상태를 유지하기 위해 생물 안전 캐비닛으로 가져옵니다.
웰에서 과도한 매체는 진공 섹션에 의해 제거됩니다. 그러나 모든 미디어를 제거하지 않도록 주의해야 합니다. 메인 채널에는 일부 미디어가 있어야 하며 저장소의 미디어만 흡인해야 합니다.
20마이크로리터의 셀만 장치의 왼쪽 상단 저장소에 적용됩니다. 세포는 장치로 흘러 들어가 PLL 처리된 표면에 부착됩니다. 여기에서 세포가 주 채널을 통해 아래로 흐르는 것을 볼 수 있으며 그 중 일부가 실제로 유리에 부착되어 있는 것을 보기 시작할 것입니다.
로딩 후, 세포가 포함된 장치를 약 10분 동안 인큐베이터에 다시 넣어 세포가 부착될 수 있도록 합니다. 인큐베이터에서 10분 후, 장치를 다시 생물 안전 캐비닛으로 가져오고 저장소는 미디어로 채운 다음 장치를 인큐베이터에 다시 넣습니다. 인큐베이터와 미디어에 필요한 습도 수준에 따라 몇 가지 중요한 사항은 2-3일마다 장치에서 교체해야 할 수도 있습니다.
상단 웰에 새 매체를 배치하고 모든 저장소를 채우기 전에 일부 새 매체가 장치를 통해 주 채널로 흐르도록 하는 것이 좋습니다. 뉴런은 여기에서 살아있는 세포를 염색하는 세포 투과 염료인 칼슘으로 시각화됩니다. 여기에서 세포체, 축삭돌기 및 수상돌기를 포함하는 장치의 구획 또는 세포 측면을 볼 수 있습니다.
장치를 가로질러 이동하면 축삭이 자라서 장치의 다른 쪽, 즉 순수한 축삭 분획을 포함하는 축삭 쪽에 도달하는 미세 홈을 볼 수 있습니다. 데모용입니다. 이러한 형광 표지된 세포는 도끼 이절개 절차를 설명하는 데 사용됩니다.
뉴런 장치의 특성 중 하나는 연구자가 장치의 순수한 축삭 분획에서 축삭을 절단하는 이토미를 수행할 수 있다는 것입니다. 축삭 재생 연구와 같은 연구를 수행하기 위해. Keano는 이제 뉴런 장치에서 이삭 절개술을 수행하는 것을 시연할 예정이며, 이이토미는 진공에 의해 수행됩니다.
멸균 유리 피펫은 축삭 쪽의 우물 하단 개구부에 배치되고 매체는 진공으로 흡입됩니다. 메인 채널의 미디어를 포함하여 모든 미디어가 장치의 축삭 쪽에서 완전히 제거됩니다. 매체를 제거한 후 이 과정을 반복하기 위해 150마이크로리터의 매체를 주 채널의 입구에 피펫 끝을 놓고 피펫을 힘으로 눌러 메인 채널로 밀어 넣습니다.
다음으로, 진공은 장치의 축삭 측의 메인 채널의 개구부와 상단 웰에 적용됩니다. 진공은 다시 한 번 주 채널을 포함하여 축삭 측에서 모든 매체를 제거하는 데 사용됩니다. 다시 한 번, 150마이크로리터의 매체는 피펫 끝을 주 채널의 입구에 놓고 피펫을 힘으로 눌러 메인 채널로 밀어 넣습니다.
이 시점에서 연구원은 현미경으로 장치를 보고 축삭 절단의 효율성을 확인할 수 있습니다. 축삭돌기가 충분히 절단되지 않으면 필요에 따라 이 과정을 다시 반복할 수 있습니다. 이 비디오에서는 E 18 태아 랙 피질 뉴런을 준비하고 뉴런 장치에 로드하는 방법을 보여주었습니다.
이러한 장치의 주요 장점은 장치의 한쪽 면에 있는 뉴런 세포체의 배양을 장치의 다른 쪽에 있는 순수한 축삭 분획과 분리하고 구획화할 수 있다는 것입니다. 이 비디오가 유익하고 도움이 되었기를 바랍니다. 존 랩(John Lab)의 말입니다.
시청해 주셔서 감사합니다.
이 비디오는 E18 피질 쥐 뉴런의 준비를 시연하며, 성공적인 뉴런 분리 및 뉴런 장치에 로딩을 보장하는 데 필요한 단계를 상세히 설명합니다.
Preparing primary cortical neurons for microfluidic compartmentalization enables precise separation of somatodendritic and axonal compartments, supporting mechanistic studies of axonal transport, degeneration, and regeneration. This approach enhances predictive confidence in target validation by isolating axon-specific responses from somatic influences, reducing confounding variables in early discovery. The method supports de-risking of neurodegenerative and neurodevelopmental targets through reproducible, quantitative axonal readouts.
The neuron preparation workflow fits within early discovery to enable axon-focused assay development prior to lead optimization, providing mechanistic de-risking for targets implicated in axonal transport or structural integrity.