Name: 기본 인간 T 세포 piggyBac Transposon 시스템 변경 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-11-05T12:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 2 s
Description: 학습하세요 piggyBac 트랜스포존 시스템을 이용한 기본 인간 T 세포의 안정적인 유전자 수정 방법입니다. 비바이럴 방식으로 장기간 유전자 발현이 가능하며, 면역치료 연구에 활용됩니다.

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SS는 TBMM 프로그램을 통해 그라드 교육 교부금에 HHMI 메드에 의해 부분적으로 지원됩니다. MHW는 재향 군인의 담당 부서에서 경력 개발 상 박사 부부 해롤드 M. Selzman의 관대 한 지원에 의해 부분적으로 지원됩니다. 이 작품은 NIH 림프종 포자 부여 P50CA126752와 NIH R01 DK093660에 의해 부분적으로 지원되었다.

일 0 1. 인간의 피에서 PBMCs의 절연 <ol><li> 오세영 - 헤파린 vacutainer 튜브에 venipuncture를 사용하여 신선한 인간의 피 20 ML를 수집합니다. </li><li> 믹스의 피와 1시 1분의 고급 RPMI 1640 (V / V) 비율입니다. </li><li> 50 ML의 원심 분리기 튜브 (25 ° C) 20 ML lymphoprep 매체를 추가 할 수 있습니다. lymphoprep 상단에 혈액 RPMI 1640 믹스 천천히 층 25-30 ML. </li><li> 브레이크없이 40 분 400 XG에 원심 분리기. </li><li> 1X PBS (25 ° C)의 10 ML에 일회용 피펫을 사용하여 독특하고 퍼지 레이어를 모두 수집하고 1X PBS있는 50 ML에 볼륨을 가져. </li><li> 10 분에 450 XG에 원심 분리기. </li><li> 완전히 표면에 뜨는을 대기음 및 고급 RPMI 1640의 20 ML를 추가합니다. </li><li> 5 분 400 XG에 원심 분리기. </li><li> 표면에 뜨는을 대기음. 5 NG / ML rhIL-15과 보충 완전한 T 세포 미디어 10 ML를 추가 37 ° C.에 prewarmed </li><li> 24 잘 조직 문화 코트에서 세포와 판의 수를 카운트/ 잘 완전한 T 세포 미디어 2 X 10 6 세포에서 에드 판은 5 NG / ML rhIL-15는 주변 우물에 멸균 물을 추가로 보충. 37 humidified 인큐베이터에서 하루 아침에 길러 ° C, 5 % CO 2. </li></ol> 1 일 2. T 세포를 자극을위한 안티 CD28 및 안티 3 번 CD 항체로 코팅 플레이트 <ol><li> 1 μg / ML 각각의 농도에서 살균 물에 안티 CD28 및 안티 3 번 CD 항체를 희석. </li><li> 비 코팅 조직 문화 24 잘 플레이트의 5 표시 우물 500 μl 각 항체 솔루션을 추가합니다. </li><li> 우물의 휴식 멸균 물을 추가합니다. 4 ° C 냉장고에서 수축 랩과 장소에 판을 넣어. </li></ol> 3. Unstimulated T 세포의 Nucleofection <ol><li> 37 번 Prewarm T 세포 미디어 ° C와 rhIL-15 5 NG / ML로 보충. Nucleofector 솔루션의 2.25 ML에 Nucleofector 보충 한 500 μl를 추가하여 완벽한 nucleofector 솔루션을 준비합니다. </li><li>liquot 5 μg transposon (Zeo-PT-CMV-eGFP)와 1.5 ML의 microfuge 관 transposase (pCMV-piggyBac)의 각. 참고 :이 최적의 유전자 전달을위한 transposase와 transposon의 DNA 금액을 최적화하고 최소화하기 위해 필요할 수 있습니다 세포 독성. plasmids 요청에 의해 저자에서 얻을 수 있습니다. </li><li> 50 ML 튜브에 24 잘 조직 배양 플레이트에서 수확 PBMCs. 셀의 개수를 계산합니다. 유동 세포 계측법 동안 제어 등의 사용이 X 10 6 세포를 저장합니다. </li><li> 400 XG, 5 분에서 15 ML 튜브와 원심 분리기에 7-10 X 10 6 세포를 추가 표면에 뜨는 및 손가락 제스처 펠릿 대기음. </li><li> 느슨하게 세포 펠렛에 대한 T 세포 완벽한 nucleofection 솔루션 100 μl를 추가합니다. </li><li> plasmids를 포함하는 관에 솔루션 세포 혼합물을 추가합니다. </li><li> nucleofection 큐벳의 맨 아래에 솔루션 휴대 플라스미드 혼합물을 추가합니다. 모든 거품을 소개하지 않도록주의하십시오. </li><li> 프로를 사용하여 셀을 Nucleofectg U-014 (Unstimulated T 세포, 인간, <a href="http://bio.lonza.com/resources/product-instructions/protocols/" target="_blank">http://bio.lonza.com/resources/product-instructions/protocols/</a> ). </li><li> 즉시 큐벳에 rhIL-15 prewarmed 미디어 500 μl를 추가합니다. rhIL15과 prewarmed 미디어의 1.5 ML과 24 잘 접시의 우물에 세포를 전송합니다. </li><li> 37 humidified 인큐베이터에서 하루 아침에 길러 ° C, 5 % CO 2. </li></ol> 2 일 4. T 세포의 특이 현상 자극 <ol><li> 수확 셀 및 셀 번호를 결정합니다. GFP 양성 세포의 빈도를 결정하는 유동 세포 계측법 0.5 X 10 6 세포를 따로 설정합니다. 컨트롤로 비 transfected PBMCs을 사용합니다. </li><li> 비 조직 배양 코팅 플레이트에서 CD3/28 항체 솔루션을 기음과 T 세포 미디어와 각 잘 씻어. </li><li> 전체 CTL 미디어 ML 당 0.5 X 10 6 세포에서 nucleofected 세포를 Resuspend5 NG / ML rhIL-15 보충. 2.0 ML 이외의 조직 문화 판의 4 우물에 nucleofected 셀의 각을 추가합니다. 잘 5 일에 0.5 X 10 6 비 nucleofected 셀을 추가합니다. </li><li> 37 humidified 인큐베이터에서 3 일 동안 배양 ° C, 5 % CO 2. </li></ol> 5 일 <ol><li> 비 코팅 조직 문화 판에서 자극 T 세포를 수확. </li><li> 0.7에서 24도 코팅 조직 배양 판에있는 셀을 카운트하고 replate X 10 5 NG / ML IL-15 6 세포 / T 세포 미디어 ML.주세요 </li></ol> 7 일 7. 유전자 발현 분석 <ol><li> 수확 세포와 반 인간 CD8 항체와 얼룩은 (또한 반에는 3 번 CD 및 안티 CD4를 사용할 수)와 %의 GFP 발현을위한 유동 세포 계측법을 분석합니다. </li></ol> 일 8 (선택 사항) 8. T 세포의 확장 <ol><li> transfection 후 일 8 일, T 세포는 T에 replated 할 수 있습니다더 확장 16도 당 0.7 X 10 6 세포 밀도에 IL-15과 셀은 미디어. </li></ol>

<ol><li>Cary, L. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transposon+mutagenesis+of+baculoviruses%3A+analysis+of+Trichoplusia+ni+transposon+IFP2+insertions+within+the+FP-locus+of+nuclear+polyhedrosis+viruses%5BTitle%5D)+AND+%22Virology%22%5BJournal%5D)">Transposon mutagenesis of baculoviruses: analysis of Trichoplusia ni transposon IFP2 insertions within the FP-locus of nuclear polyhedrosis viruses.</a> Virology. 172 (1), 156(1989).</li>
<li>Fraser, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assay+for+movement+of+Lepidopteran+transposon+IFP2+in+insect+cells+using+a+baculovirus+genome+as+a+target+DNA%5BTitle%5D)+AND+%22Virology%22%5BJournal%5D)">Assay for movement of Lepidopteran transposon IFP2 in insect cells using a baculovirus genome as a target DNA.</a> Virology. 211 (2), 397(1995).</li>
<li>Ding, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficient+transposition+of+the+piggyBac+%28PB%29+transposon+in+mammalian+cells+and+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Efficient transposition of the piggyBac (PB) transposon in mammalian cells and mice.</a> Cell. 122 (3), 473(2005).</li>
<li>Saridey, S. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((PiggyBac+transposon-based+inducible+gene+expression+in+vivo+after+somatic+cell+gene+transfer%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Ther%22%5BJournal%5D)">PiggyBac transposon-based inducible gene expression in vivo after somatic cell gene transfer.</a> Mol. Ther. 17 (12), 2115(2009).</li>
<li>Nakanishi, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((piggyBac+transposon-mediated+long-term+gene+expression+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Ther%22%5BJournal%5D)">piggyBac transposon-mediated long-term gene expression in mice.</a> Mol. Ther. 18 (4), 707(2010).</li>
<li>Wilson, M. H., Coates, C. J., George, A. L. Jr <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((PiggyBac+Transposon-mediated+Gene+Transfer+in+Human+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Ther%22%5BJournal%5D)">PiggyBac Transposon-mediated Gene Transfer in Human Cells.</a> Mol. Ther. 15 (1), 139(2007).</li>
<li>Nakazawa, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optimization+of+the+PiggyBac+transposon+system+for+the+sustained+genetic+modification+of+human+T+lymphocytes%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunother%22%5BJournal%5D)">Optimization of the PiggyBac transposon system for the sustained genetic modification of human T lymphocytes.</a> J. Immunother. 32 (8), 826(2009).</li>
<li>Raja Manuri, P. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((piggyBac+transposon%2Ftransposase+system+to+generate+CD19-specific+T+cells+for+treatment+of+B-lineage+malignancies%5BTitle%5D)+AND+%22Hum.+Gene+Ther%22%5BJournal%5D)">piggyBac transposon/transposase system to generate CD19-specific T cells for treatment of B-lineage malignancies.</a> Hum. Gene Ther. 21 (4), 427(2010).</li>
<li>Doherty, J. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hyperactive+piggyBac+gene+transfer+in+human+cells+and+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Hum.+Gene+Ther%22%5BJournal%5D)">Hyperactive piggyBac gene transfer in human cells and in vivo.</a> Hum. Gene Ther. , In Press (2011).</li>
<li>Yusa, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+hyperactive+piggyBac+transposase+for+mammalian+applications%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">A hyperactive piggyBac transposase for mammalian applications.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 108 (4), 1531(2011).</li>
<li>Bonini, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+modification+of+T+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Biol.+Blood+Marrow+Transplant%22%5BJournal%5D)">Genetic modification of T cells.</a> Biol. Blood Marrow Transplant. 17, Suppl 1. S15-S20 (2011).</li>
<li>Hackett, P. B., Largaespada, D. A., Cooper, L. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+transposon+and+transposase+system+for+human+application%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Ther%22%5BJournal%5D)">A transposon and transposase system for human application.</a> Mol. Ther. 18 (4), 1531(2010).</li>
<li>Galvan, D. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genome-wide+mapping+of+PiggyBac+transposon+integrations+in+primary+human+T+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunother%22%5BJournal%5D)">Genome-wide mapping of PiggyBac transposon integrations in primary human T cells.</a> J. Immunother. 32 (8), 837(2009).</li>
<li>Nakazawa, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((PiggyBac-Mediated+Cancer+Immunotherapy+Using+EBV-Specific+Cytotoxic+T-Cells+Expressing+HER2-Specific+Chimeric+Antigen+Receptor%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Ther%22%5BJournal%5D)">PiggyBac-Mediated Cancer Immunotherapy Using EBV-Specific Cytotoxic T-Cells Expressing HER2-Specific Chimeric Antigen Receptor.</a> Mol. Ther. 19 (12), 2133(2011).</li>
<li>Huye, L. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Combining+mTor+Inhibitors+With+Rapamycin-resistant+T+Cells%3A+A+Two-pronged+Approach+to+Tumor+Elimination%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Ther%22%5BJournal%5D)">Combining mTor Inhibitors With Rapamycin-resistant T Cells: A Two-pronged Approach to Tumor Elimination.</a> Mol. Ther. 19 (12), 2239(2011).</li>
<li>Vera, J. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Accelerated+production+of+antigen-specific+T+cells+for+preclinical+and+clinical+applications+using+gas-permeable+rapid+expansion+cultureware+%28G-Rex%29%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunother%22%5BJournal%5D)">Accelerated production of antigen-specific T cells for preclinical and clinical applications using gas-permeable rapid expansion cultureware (G-Rex).</a> J. Immunother. 33 (3), 305(2010).</li>
<li>Kahlig, K. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multiplexed+transposon-mediated+stable+gene+transfer+in+human+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Multiplexed transposon-mediated stable gene transfer in human cells.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 107 (4), 1343(2010).</li>
</ol>

관심 없음 충돌이 선언 없습니다.

여기에 설명 된 방법은 기본 인간 T 림프구의 안정적인 transgene의 수정이 가능합니다. 우리는 이전에 리포터 유전자 (4 개 이상의 주), 비 immunogenic 자살 유전자 입양 immunotherapy에 대한 키메라 항원 수용체를 (100 개 이상의 일), 표현하는 T 세포를 수정하는 piggyBac transposon 시스템의 사용을 테스트 한 그리고 면역 억제 약물 7,13-15에 대한 내성을 처리합니다. 입양 immunotherapy 및 기타 응용 프로그램을위한 T 세포의 비 바이러스 성 수정은 retroviral 전달보다 훨씬 저렴하기 때문에 더 많은 활용해야합니다. 새로운 활동적인 piggyBac 요소의 사용은 인간의 T 세포에게 9 수정 안정적인 transgene의 제조의 가능성이 높아집니다. 여기에 설명되지 않았지만, 하나는 잠재적 인 임상 응용 프로그램에 대한 안정적 transfected T 세포의 필요한 숫자를 얻을 수 있습니다...

<table border="1"><tbody><tr><td> 시약의 이름 </td><td> 회사 </td><td> 카탈로그 번호 </td><td> 코멘트 (선택 사항) </td></tr><tr><td> Lympholyte </td><td> Cedarlane </td><td> CL5015 </td><td></td></tr><tr><td> 고급 RPMI 1640 </td><td> LifeTechnologies </td><td> 12633020 </td><td></td></tr><tr><td> Hyclone 태아 소 혈청 </td><td> 피셔 과학 </td><td> SH3008803 </td><td></td></tr><tr><td> GlutaMAX-I의 보충 </td><td> LifeTechnologies </td><td> 35050-061 </td><td></td></tr><tr><td> 인간 IL-15 재조합 단백질 </td><td> eBioscience </td><td> 14-8159 </td><td></td></tr><tr><td> EndoFree 플라스미드 맥시 키트 </td><td> Qiagen </td><td> 12,362 </td><td></td></tr><tr><td> Amaxa Nucleofector </td><td> Lonza </td><td> AAD-1001S </td><td> &amp; NBSP; </td></tr><tr><td> 인간 T 세포 Nucleofector 키트 </td><td> Lonza </td><td> VPA-1002 </td><td></td></tr><tr><td> CD8-APC </td><td> 남부 생명 공학 </td><td> 9536-11 </td><td></td></tr><tr><td> 안티 - 인간 3 번 CD </td><td> eBioscience </td><td> 16-0037-81 </td><td></td></tr><tr><td> 안티 - 인간 CD28 </td><td> BD Pharmingen </td><td> 555725 </td><td></td></tr><tr><td> 24 잘 조직 문화 치료 플레이트 </td><td> BD 팔콘 </td><td> 353047 </td><td></td></tr><tr><td> 24 자 비 조직 문화 판을 치료 </td><td> BD 팔콘 </td><td> 351147 </td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> 전체 T 세포 미디어 구성 1X 고급 RPMI 1640 5 %의 열 Inactivated 태아 소 혈청 이 MM GlutamaxIM-I </td></tr></tbody></table>

기본 인간 t 세포 piggybac transposon 시스템 변경

piggyBac Transposon System Modification of Primary Human T Cells

piggyBac transposon 시스템은 원래 양배추 자벌레 나방의 1,2에서 파생, 자연적으로 활성화됩니다. 이 비 바이러스 시스템은 가장 일반적으로 하나가 piggyBac transposase 효소 및 유전자 전달 활동에 필요한 역 반복 요소 사이에 관심의 유전자를 (들) 숨겨 플라스미드 transposon을 표현으로 두 plasmids을 활용, 기반 플라스미드입니다. PiggyBac의 mediates 유전자 전송을 통해 transposase 관심의 대상 셀 (들)의 게놈에 transposon 세그먼트를 통합된다 &quot;잘라 내기 및 붙여 넣기&quot;메커니즘이 있습니다. PiggyBac 3-5 포유류의 곤충 1,2의 다양한 효율적인 유전자 전달 활동을 시연하고있다 7,8 차 인간의 T 세포를 포함 cells6 인간. 최근 활동적인 piggyBac의 transposase는 유전자 전달 효율을 향상 9,10 생성되었습니다. 인간 T 림프구는 임상 intere의 역할암 (11)의 입양 immunotherapy에 대한 ST. 참고 중, 잠자는 숲속의 미녀의 transposon 시스템을 사용하여 인간의 T 세포의 transposon 수정을 포함한 첫 번째 임상 실험은 12을 승인했습니다. 우리는 이전에 인간의 T 세포의 유전자 변형에 대한 비 바이러스 성 방법으로 piggyBac의 유틸리티를 평가하고 있습니다. 우리는 리포터 유전자와 비 immunogenic inducible 자살 유전자 7 인간의 T 세포의 유전자 변형에 효율이 piggyBac 발견했다. 게놈 통합 사이트의 분석은 13로 또는 알려진 proto-oncogenes 근처 통합 환경의 부족을 공개했다. 우리는 종양 항원 HER2에 대한 감독 키메라 항원 수용체를 수행하는 유전자 - 수정 세포 독성 T 림프구에 piggyBac 사용하고, 유전자 수정 된 T 세포가 orthotopic 마우스 모델에서 체외 및 생체 내 HER2-양성 종양 세포의 살인을 대상으로 중재 것을 발견 14. 우리는 또한 piggyBac을 사용한rapamycin은 15 활용 암 치료에 도움이 될 것 rapamycin에 강한 인간의 T 세포를 생성 할 수 있습니다. 여기, 우리는 유 전적으로 인간의 기본 T 세포를 수정 piggyBac을 사용하는 방법을 설명합니다. 이 문화, 유전자 수정, 및 T 세포의 활성화에 이어 인간의 피에서 말초 혈 mononuclear 세포 (PBMCs)의 절연을 포함하고 있습니다. 이 보고서의 목적을 위해, T 세포는 유동 세포 계측법에 의한 유전자 발현의 분석 및 정량화를위한​​ 리포터 유전자 (eGFP)로 수정되었습니다. PiggyBac는 관심 유전자의 다양한 인간의 T 세포를 수정하는 데 사용할 수 있습니다. 우리가 종양 항원 14 T 세포를 직접 할 수 piggyBac 사용했지만, 우리는 또한 7 필요한 경우 유전자 변형 세포를 제거하기 위해 inducible 안전 스위치를 추가 할 수 piggyBac 사용했습니다. piggyBac의 대형화물 용량은 유전자 전송을 사용하고 있습니다큰 rapamycin의 방지를 mTOR 분자 (15 KB) 15. 따라서, 우리는 목적으로 다양한 종류의에 대한 일차적 인간의 T 세포의 안정적인 유전자 변형에 대한 비 바이러스 방법론을 제시한다.

유전자 리포터 유전자 (eGFP)와 인간의 T 림프구를 수정의 단계를 보여주는 도식은 그림 1에 표시됩니다. 이러한 plasmids은 작성자의 요청시 이용 가능합니다. 리포터 유전자 (eGFP)와 유전자 변형 인간 T 림프구의 단계를 보여주는 schemtic은도 2의 바바리 수 있습니다. 그것은 그들에게, 분할 확장하고 문화에 전파하게하기 위해 T 세포를 활성화 할 필요가 있습니다. 수정 인간의 T 세포는 이후 배양 및 일 1 일 7 일 유전자 발현에 대한 유동 세포 계측법을 사용하여 분석 하였다. 표시는 그림 3에서 한 기증자의 결과입니다. 셀 셀 퀘스트 소프트웨어를 사용하여 allophycocyanin (APC) 복합 항 CD8, 4 형광 신호에 대한 필터 세트가 마련되어 FACSCalibur에 의해 eGFP (transgene)와 APC 형광에 대한 분석 물들되었습니다 (...

우리는 유전자 비 바이러스를 사용하여 transgene과 기본 인간의 T 세포를 수정하는 방법을 설명<em&gt; piggyBac</em&gt; transposon 시스템입니다. T 세포는를 사용하여 수정<em&gt; piggyBac</em&gt; transposon 시스템 전시 안정적인 transgene 표현.

기본 인간 T 세포 piggyBac Transposon 시스템 변경

piggyBac 트랜스포존 시스템은 배추흰나비(cabbage looper moth)에서 유래한 천연 활성 시스템입니다. 이 비바이러스성 시스템은 플라스미드 기반으로, 대부분...

본 실험 절차의 전반적인 목표는 비바이러스성 트랜스포존 시스템을 사용하여 일차 인간 T 세포에 유전자를 안정적으로 도입하고 수정하는 것입니다. 먼저, 인간의 혈액을 채취한 후 말초혈액 단핵세포(PBMC)를 분리합니다. 이어서 piggyBac 트랜스포존 시스템과 EGFP와 같은 목적 외래 유전자로 PBMC를 형질전환합니다. 그 다음, 배양액 내에서 T 세포가 증식하도록 자극합니다.그 다음 T 세포의 외래유전자 발현 여부를 분석합니다. 최종적으로, flow cytometry 분석을 통해 piggyback 트랜스포존 시스템으로 변형된 T 세포에서 외래유전자가 안정적으로 발현됨을 확인합니다. 인간 T 세포의 플라스미드 형질전환과 달리, 트랜스포존은 외래유전자를 안정적으로 통합시켜 장기적인 발현을 가능하게 한다는 장점이 있습니다.핵심은 분리 과정 중 및 핵산 도입 후 P BMC를 처리할 때 매우 구체적인 프로토콜을 따르는 것입니다. 당사는 먼저 다양한 유전자를 발현시키기 위한 배양된 인간 안정 세포주를 만들기 위해 이 방법을 구현했습니다. 이러한 접근 방식은 T세포를 어떻게 수정하여 기능을 향상시킬 수 있는지와 같은 면역학 분야의 핵심 질문들에 답하는 데 도움이 됩니다. 정맥 천자를 이용한 이 절차는 본 연구실의 대학원생인 sunon과 saha가 시연할 것입니다.신선한 사람 혈액 20 milliliters를 소듐 헤파린 vacutainer 튜브에 수집합니다. 혈액과 advanced RPMI 1640 배지를 1:1 비율로 혼합합니다. 그 다음 50 milliliter 원심분리 튜브에 lympho prep 배지 20 milliliters를 넣습니다.희석된 혈액 25 ~ 30 milliliters를 lympho prep 위에 천천히 층을 이루도록 붓고, 브레이크 없이 400 times G에서 40분 동안 원심분리합니다. 뚜렷한 층과 흐릿한 층을 모두 실온의 PBS 10 milliliters에 옮깁니다. PPBS를 사용하여 총 부피를 50 milliliters로 맞춥니다.그 다음 450 ×g에서 10분 동안 원심분리하여 세포를 회수하고 상층액을 완전히 흡입해 제거한 후, 원심분리 후 20 mL의 advanced RPMI로 세포를 1회 세척합니다. 세포 펠렛을 5 ng/mL의 재조합 인간 IL-15가 첨가된 10 mL의 완전 T-세포 배지에 현탁합니다. 이제 세포 수를 측정한 후, 24웰 조직 배양 코팅 플레이트에 웰당 2 ×

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Research

연구

JoVE Journal

Immunology and Infection

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우리는 세포 효능의 주입 연구를 위한 충분한 수에 있는 관심 있는 유전자의 우수한 공동 발현을 가진 세포를 산출하는 rhesus macaque 말초 혈액 단핵 세포의 transduction 그리고 확장을 위한 9 일 프로토콜을 개략적으로 설명합니다.

중앙 메모리 표현형의 유지 보수와 함께 9 일 만에 1 차 T 세포의 전환 및 확장

여기에서는 piggyBac계 공여 플라스미드와 Cas9 nickase 돌연변이체를 이용한 인간 만능줄기세포에서 원활한 유전자 편집을 위한 상세한 방법을 설명한다. 인간 배아 줄기 세포 (hESCs)에서 간세포 핵 인자 4 알파 (HNF4α) 유전자좌의 엑손 8에 2 점 돌연변이가 도입되었다.

원활한 게놈 편집을 사용하여 인간 만능 줄기 세포에 점 돌연변이 도입

우리는 잠자는 숲속의 미녀 (SB) 트랜스포존 시스템을 사용하여 색소 상피 유래 인자 (PEDF)를 코딩하는 유전자로 전기 천공함으로써 1 차 인간 색소 상피 세포를 형질 감염시키는 프로토콜을 개발했습니다. 성공적인 형질감염은 정량적 중합효소연쇄반응(qPCR), 면역블로팅 및 효소-결합 면역흡착 분석(ELISA)에 의해 입증되었다.

잠자는 숲속의 미녀 트랜스포존 시스템을 이용한 1차 인간 색소 상피 세포의 전기천공 기반 유전자 변형

여기서, 다양한 포유류(마우스, 쥐, 토끼, 돼지 및 소)로부터 일차 홍채 및 망막 색소 상피 세포를 분리하고 변형시키는 프로토콜이 제시된다. 이 방법은 전 생체 분석 및 인간에게 양도 할 수있는 생체 내 연구를위한 다양한 셋업에서 안구 유전자 치료 접근 방식을 연구하는 데 이상적입니다.

비 바이러스 유전자 치료를 위한 포유류 1차 안료 상피 세포의 격리, 배양 및 유전 공학

가을 군벌레, 스포드옵테라 검거르다에서성공적인 생식선 변환은, 활동적인 돼지박 트랜스포사제의 mRNA를 사용하여 달성되었다.

가을 육군벌레, 스포드옵테라 검소한에서 활동적인 피기박 트랜스포사스 중재 된 세균라인 변환

CRISPR/Cas9 기술을 사용하여 homology-mediated end joining (HMEJ) DNA repair pathway를 통해 1차 인간 T 세포에서 큰 multicistronic 구조체의 고효율 표적 knock-in을 달성하기 위한 자세한 프로토콜이 제공됩니다. 이 cGMP 적응 프로토콜로 조작된 T 세포는 우수한 세포 증식, 세포 독성 및 사이토카인 생산을 유지합니다.

대형 DNA 주형의 상동성 매개 말단 결합을 통한 일차 인간 T 세포의 비바이러스 공학

학습하세요 piggyBac 트랜스포존 시스템을 이용한 기본 인간 T 세포의 안정적인 유전자 수정 방법입니다. 비바이럴 방식으로 장기간 유전자 발현이 가능하며, 면역치료 연구에 활용됩니다.

기본 인간 T 세포 piggyBac Transposon 시스템 변경

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