Name: 말초 혈액 조혈 전구 세포에서 인간 신경 줄기 세포의 직접 유도 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-01-28T15:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 6 s
Description: 배우세요 말초 혈액의 CD34+ 조혈 전구 세포에서 바이러스 벡터를 이용해 신경 줄기 세포를 직접 유도하는 방법을. 이 기술은 재생 의학 연구에 활용될 수 있습니다.

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저자는 공개할 이해 상충이 없습니다.

성인 전혈 1. 농축 조혈 전구 세포 주 : 조혈 전구 세포 또는 CD34 + 세포를 밀도 구배 원심 분리 기반의 방법을 이용하여 제대혈, 백혈구 성분 채집 물질 및 전혈을 다양한 소스로부터 유도 된 말초 혈액 단핵 세포 (PBMC)로부터 정제 될 수있다. 여기에 나열된 방법은 예를 들어 전혈을 사용한다. <ol><li> 전체 혈액에서 PBMC를의 분리 : <ol><li> 삽입물의 중앙 구멍을 피펫 팅하여 SepMate 튜브에 림프구 분리 매체의 4.5 ML을 추가합니다. </li><li> 2 % 인간 혈청을 함유하는 무균의 DPBS 동량 혈액 시료를 희석 (V / V). 예를 들어, DPBS + 2 % 인간 혈청을 5 ml의 샘플 5 ml의 희석. </li><li> 튜브의 측면을 아래로 피펫 팅에 의해 희석 된 샘플을 추가합니다. 중앙 구멍을 통해 직접 샘플을 부어 않도록주의하십시오. </li><li> 실온에서 10 분 동안 1,200 XG에 원심 분리기. </li><li> 조심스럽게 PMBC 층 위의 상층 액을 제거합니다. </li><li> 새로운 튜브로 PBMC 층 (흐린)를 수집합니다. </li><li> 브레이크 해제와 함께 실온에서 10 분 동안 150 XG에서 2 % 인간의 튜브에 혈청 및 원심 분리기를 포함하는 둘 베코 인산염 완충 식염수 (DPBS)의 15 ML을 추가합니다. </li><li> 뜨는을 취소하고 2 % 인간 혈청을 포함하는 DPBS 15 ml의 펠렛을 재현 탁. 세포의 수를 계산. </li><li> 실온에서 10 분 동안 690 XG에 원심 분리기. 튜브에서 모든 상층 액을 제거합니다. </li><li> 15 1 % 항생제를 포함 Iscove의 수정 둘 베코의 매체 (IMDM)의 ㎖ (v / v)의 10 % 인간 혈청 당 1 × 10 7 세포에서 재현 탁 세포 (v / v)로. </li><li> CD34 + 세포를 분리하기 전에 5 %에서 37 ° C에서 CO 2 배양기를 세포 O / N을 품어. </li></ol></li><li> CD34 MultiSort 키트를 사용하여 한 PBMC에서 CD34 + 세포의 긍정적 인 선택 : 참고 : 빠른 작업 차가운 세포를 만들기 위해 사전 냉각 솔루션을 사용하여 캡을 방지키트 지시에 따라 세포 표면 비특이적 세포의 표지에 대한 항체. <ol><li> 50 ㎖ 튜브에 모두 모아서 PMBCs 배지에서 총 세포 수를 계산. </li><li> 10 분 동안 300 XG에 세포를 원심 분리기. 완전히 모든 상층 액을 제거합니다. </li><li> 10 8 비드 버퍼 300 μL 당 세포 (DPBS 포함 0.5 % 인간 혈청 (v / v)의 2 mM의 EDTA)까지 재현 탁. </li><li> 의 FcR 차단 시약 100 μl를 추가하고 CD34의 MultiSortMicroBeads 100 μl를 추가합니다. </li><li> 잘 섞어 냉장고에 30 분 동안 배양 (2-8 ° C에서). </li><li> 실온에서 10 분 동안 300 XG에서 비드 (10) 8 셀 당 버퍼와 원심 분리기 2 ㎖를 첨가하여 세포를 씻으십시오. 완전히 뜨는을 제거합니다. </li><li> 버퍼의 500 μl의 10 8 셀을 재현 탁. </li><li> MACS 분리기의 자기장에 MACS LS 열을 올려 놓고 비드 버퍼의 3 ㎖로 세척하여 열을 준비합니다. </li><li> cente에 세포 현탁액을 적용열의 R. 레이블이없는 세포를 선호하는 경우이를 통해 수집 할 수 흐를 것이다. </li><li> 워시 열 비드 버퍼의 3 ㎖로 3 회. </li><li> 분리기로부터 열을 제거하고 15 ML 튜브에 놓습니다. </li><li> 컬럼 상 비드 완충액 5 mL를 첨가하고, 즉시 컬럼으로 플런저를 밀어 자기 적으로 표지화 된 세포를 세척. </li><li> 세포 현탁액 1 ㎖ 당 MultiSort 출시 시약의 20 μl를 추가합니다. 잘 섞어 냉장고에 10 분 동안 배양 (2-8 ° C에서). </li><li> 실온에서 10 분 동안 300 XG에서 세포를 10 7 셀 당 구슬 버퍼 2 ㎖ 원심 분리기 - 1을 추가합니다. 완전히 뜨는을 제거합니다. </li><li> 10 7 세포 당 비드 버퍼의 50 μL에 재현 탁 세포. </li><li> 10 7 세포 당 MultiSort 중지 시약의 30 μl를 추가하고 냉장고에 15 분 동안 품어. </li><li> RT에서 10 분 동안 300 XG에 세포를 비드 완충액 5 mL를 첨가하고 원심 분리기. 상층 액을 제거한다. </li></ol></li></ol> CD34 + 세포에서 유도 된 신경 줄기 세포의 2. 유도 <ol><li> CD34 + 세포 배양 : 참고 : 냉장고에 보관하면 갓 준비한 매체는 7 일 이내에 사용되어야한다. 상당한 CD34 세포 손실이 24 시간 후에 관찰 될 수도 있지만, 셀 번호가 연속적으로 감소하거나 전혀 증식이 없으면 세포의 현저한 증식 특히 일 5. 후에 두드러 질 경우, 이는 불량 매체 또는 CD34 세포의 품질과 세포를 의미 다음 단계에 사용되어서는 안된다. <ol><li> CD34에 재현 탁하고 배양 CD34은 + 세포 (인간 트롬 함유 (StemSpan SFEM 매체 SCF를 (TPO, 100 NG / ㎖), FMS 같은 티로신 키나아제 3 (예를 들어 Flt-3) 리간드 (100 NG / ml) 및 줄기 세포 인자를 배지를 유지 NG 100 / ㎖), 인터루킨 -6 (IL-6, 20 NG / ml) 및 인터루킨 -7 (IL-7, 24- 웰 플레이트에서 20 NG / ㎖)) (최대 3 × 105 / 웰 5 % CO 2 배양기에서 37 ° C에서 잘 당 중) 1 ㎖. </li><li> AF터 24 시간은 부동 세포를 수집하고 연결된 모든 세포와 세포 파편을 제거하는 RT 110 XG에서 세포를 원심 분리기. 뜨는을 취소하고 추가로 5 일 동안 5 % CO 2 배양기에서 37 ° C에서 새로운 24 웰 플레이트 (물론 최대 1 × 10 5 /)에서 신선한 CD34 유지 매체와 씨앗의 1 ml의 세포를 재현 탁. </li><li> CD34 + 세포가 우물 (그림 1A)의 바닥에 떠있는 동안 조심스럽게 상층 액의 위쪽 절반을 흡입하여 매체마다 다른 하루의 절반을 교체합니다. </li></ol></li><li> 센다이 바이러스 형질 : <ol><li> 5 일째, CD34 세포를 수집하고 RT에서 10 분 동안 170 XG에 세포를 원심 분리기. 상층 액을 제거한다. </li><li> 웰의 배지 1 ㎖ 중의 24- 웰 플레이트에 1 × 105 / 신선한 배지에서 세포를 재현 탁. </li><li> 처음 10 초 동안 37 ° C의 물을 욕조에 튜브의 바닥을 담금으로써 cytotune - 만능 줄기 센다이 리 프로그래밍 키트를 해동 한 후 완전히 해동t RT. 간단히 튜브를 원심과 얼음에 넣어. 해당 로트의 분석 인증서 (COA)에 나열된 각 바이러스의 권장 볼륨을 혼합하여 센다이 바이러스 혼합물을 준비합니다. MOI (15)을 권장합니다. </li><li> CD34 세포의 각 웰에 센다이 바이러스 믹스를 추가한다. 부드럽게 흔들어 우물을 섞는다. 주식을 5 %에서 37 ° C에서 2 배양기를 세포를 품어. </li><li> 24 시간 후 형질 전환 효율을 관찰한다. 세포 집합체 및 구 형성이 성공적으로 형질 전환 (그림 1B)에 대한 지표는 것을 알 수 있습니다. </li><li> 조심스럽게 다른 매체의 위쪽 절반을 전송 잘하여 매체의 절반을 변경합니다. 새로운 웰 세포 분야가 있다면, 새로운 배지의 동일한 양을 첨가하는 것이 바람직하다. </li><li> 단계 2.2.6를 반복하여 다른 일 매체마다 변경합니다. </li></ol></li><li> 신경 줄기 세포의 유도 : 주 : 셀 조건에 따라 약 5 칠일 형질 감염 후, 부착 세포 단층 (30)에 도달한다 -50 %의 합류 (그림 1C). <ol><li> 영양소 혼합물 F-12 1X N2 보충제, 0.1 % (w / v)의 소 혈청 알부민을 함유하는 (DMEM / F12), ((둘 베코 변형 이글 중간 부유 세포 및 구 함유 상층 액을 제거한 후 신경 전구 배지 1 ㎖를 추가 BSA), 1 % (V / V) 항생제, 염기성 섬유 아세포 성장 인자 20 ng를 / ㎖ (의 bFGF) 및 부착 세포 내로 표피 성장 인자 (EGF)) 20 ng / ml이되게 준비 하였다. </li><li> 임의로, 부드럽게 피펫 팅하여 세포를 해리 분야 및 10 분 동안 170 XG에 세포를 원심 분리. 상층 액을 제거하고 다시 명령 당 리겔로 코팅 된 새로운 24 웰 플레이트에서 신경 전구 배지 1 ㎖의 세포를 재현 탁. </li><li> 80 %의 합류 보통 일주 후, - 세포가 60에 도달 할 때까지 매일 매체를 변경합니다. </li><li> 상층 액을 제거하고 신경 줄기 세포 배지 (무 혈청 배지, NSC SFM) 1 ㎖에 추가 할 수 있습니다. 이어서 셀 스크레이퍼를 사용하여 세포를 해리매우 부드러운 피펫으로. </li><li> 세포를 제거하고 6- 웰 플레이트의 한 웰에 그들 모두를 시드. 신경 줄기 세포 매체의 다른 1 ㎖를 각 웰에 대해 2 ml의 용지를 만들기 위해 추가. 주식을 5 %에서 37 ° C에서 2 배양기를 세포를 품어. </li><li> 일전에 매체마다 변경합니다. </li><li> 세포가 60 % 합류에 도착했을 때, 해리와 1의 세포를 replate : 2.3.4과 2.3.6의 단계에 따라 3 비율. </li></ol></li><li> 신경 줄기 세포의 냉동 : <ol><li> 신경 줄기 세포의 배지에 20 % 디메틸 설폭 사이드 (DMSO)를 첨가하여 동결 배지 신경 줄기 세포를 준비한다. 얼음에 동결 매체를 보관하십시오. </li><li> 부드럽게 피펫 팅 하였다 셀 스크레이퍼를 사용하여 6 웰 플레이트에 세포를 해리. 세포를 계산합니다. RT에서 10 분 동안 170 XG에 세포를 원심 분리기. 상층 액을 제거한다. </li><li> 1 × 106 / ㎖에서 신경 줄기 세포 배지에서 세포를 재현 탁. 세포에 매체를 동결 동일한 볼륨을 추가합니다. </li><li> 1 ㎖ (5 × 1 추가cryovial에 세포의 0 ~ 5 총 세포). 다음 명령어 씨 Froster 냉동 컨테이너를 사용하여 세포를 동결. </li></ol></li></ol> 3. 신경 세포 분화 <ol><li> 신경 세포의 분화 : <ol><li> 신경 줄기 세포가 80 % 합류에 도달하면 고무 경찰관을 사용 신경 줄기 세포를 분리 한 다음 온화하게 피펫 팅하여 해리. </li><li> 세포를 세어 신경 줄기 세포 배지에서 1 × 105 / ml의 농도로 조정한다. </li><li> 신경 세포의 분화를 들어, 폴리 D 라이신 / 라미닌 코팅 덮개의 세포를 판 잘 1 × 10 5 / 24 웰 플레이트에서 미끄러 져. 주식을 5 %에서 37 ° C에서 2 배양기를 세포를 품어. </li><li> 신경 분화 매체와 매체를 교체 (DMEM 1 배 N2 보충, 1X B27 보충제, 300 NG / ㎖ 캠프, 0.2 mM의 비타민 C, 신경 영양 인자 (BDNF 유도 10 NG / ml의 뇌) 10 NG / ㎖ 아교 세포를 포함 / F12 유도 신경 영양 인자 (GDNF)) AF터 24 시간. 주식을 5 %에서 37 ° C에서 2 배양기를 세포를 품어. </li><li> 2 주간 일주일에 두 번 신경 분화 매체를 변경합니다. </li></ol></li><li> Astroglial 차별화 : <ol><li> 피펫으로 신경 줄기 세포를 해리. </li><li> 세포를 세어 5 × 104 세포 / ml의 세포 농도를 조절한다. 24 웰 플레이트에 세포를 시드. 주식을 5 %에서 37 ° C에서 2 배양기를 세포를 품어. </li><li> 10 % 소 태아 혈청 (FBS)을 DMEM / F12 배지로 교체하고, 5 % CO 2 인큐베이터에서 37 ℃에서 세포를 배양한다. </li><li> 2 주간 일주일에 두 번 매체 변경합니다. 세포가 이주 전에 합류에 도달하면, 단계 3.2.1과 3.2.2 다음 세포를 replate. </li></ol></li><li> 희소 돌기 아교 세포의 분화 : <ol><li> 피펫으로 신경 줄기 세포를 해리. </li><li> 희소 돌기 아교 differenti 1 ml의 세포 및 종자 폴리 -L- 오르니 틴 코팅 된 24 웰 플레이트에 1 × 105 세포 개수, N2 보충제를 함유하는 DMEM / F12 혈소판 유래 성장 인자-AA (PDGF-AA) 10ng의 / ㎖, 뉴로 트로 핀 -3 (NT-3)의 2 ng를 / ㎖, 소닉 헤지 호그의 2 ng를 / ㎖로 이루어진 ATION 매체 ( 쉬) 및 트리 요오 도티 로닌 (T3 3 ㎚). 주식을 5 %에서 37 ° C에서 2 배양기를 세포를 품어. </li><li> 2 주간 일주일에 두 번 매체 변경합니다. </li><li> DMEM / 1xN2 보충과 F12와 T3의 3 nM의 문화 미엘린 염기성 단백질 (MBP) 생산을위한 추가 주에 대한 세포 매체를 교체합니다. </li></ol></li></ol> 4. 면역 형광 염색법 <ol><li> 4 % 파라 포름 알데히드 (PFA)와 미디어를 교체합니다. 실온에서 10 분 동안 품어. </li><li> PFA를 버리고 PBS 0.1 % 트리톤 X-100 (PBS-T) 3 회, 5 분마다 포함 씻어. </li><li> PBS는 RT에서 10 분 동안 0.5 % 트리톤 X-100을 함유하는 세포를 Permeabilize 하시려면. </li><li> PBS-T는 RT에서 20 분 동안 4 % 염소 혈청을 함유하는 세포와 차단. </li><li> 해당 차 antibo와 세포를 품어냉장실 RT 또는 O / N에서 2 시간 동안 0.1 % BSA를 함유하는 PBS-T에 희석 죽는다. </li><li> PBS-T, 5 분마다 3 번 세포를 씻으십시오. 어둠 속에서 진탕 기에서 1 시간 동안 0.1 % BSA를 함유하는 PBS-T에 희석 400 : 1을 사용하는 형광 색소와 결합 이차 항체에 상응하는 세포를 배양한다. </li><li> 실온에서 10 분 동안 4 &#39;, 6 diamidino -2- 페닐 인돌 (DAPI)를 포함하는 PBS-T와 세포를 씻으십시오. </li><li> RT에서 5 분마다 PBS-T로 세포를 두 번 더 씻는다. </li><li> 현미경을 사용하여 레이블 세포를 관찰하고 걸릴 사진 (그림 3). </li></ol>

<ol><li>Azari, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Purification+of+immature+neuronal+cells+from+neural+stem+cell+progeny%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">Purification of immature neuronal cells from neural stem cell progeny.</a> PLoS ONE. 6, e20941(2011).</li>
<li>Azari, H., Sharififar, S., Fortin, J. M., Reynolds, B. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+neuroblast+assay%3A+an+assay+for+the+generation+and+enrichment+of+neuronal+progenitor+cells+from+differentiating+neural+stem+cell+progeny+using+flow+cytometry%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">The neuroblast assay: an assay for the generation and enrichment of neuronal progenitor cells from differentiating neural stem cell progeny using flow cytometry.</a> J Vis Exp. (62), (2012).</li>
<li>Takahashi, K., Yamanaka, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+of+pluripotent+stem+cells+from+mouse+embryonic+and+adult+fibroblast+cultures+by+defined+factors%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Induction of pluripotent stem cells from mouse embryonic and adult fibroblast cultures by defined factors.</a> Cell. 126 (4), 663-676 (2006).</li>
<li>Takahashi, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+of+pluripotent+stem+cells+from+adult+human+fibroblasts+by+defined+factors%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Induction of pluripotent stem cells from adult human fibroblasts by defined factors.</a> Cell. 131 (5), 861-872 (2007).</li>
<li>Zhang, N., An, M. C., Montoro, D., Ellerby, L. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+Human+Huntington%27s+Disease+Cell+Model+from+Induced+Pluripotent+Stem+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22PLoSCurr%22%5BJournal%5D)">Characterization of Human Huntington's Disease Cell Model from Induced Pluripotent Stem Cells.</a> PLoSCurr. 2, RRN1193(2010).</li>
<li>Park, I. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Disease-Specific+Induced+Pluripotent+Stem+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Disease-Specific Induced Pluripotent Stem Cells.</a> Cell. 134 (5), 877-886 (2008).</li>
<li>Song, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neural+differentiation+of+patient+specific+iPS+cells+as+a+novel+approach+to+study+the+pathophysiology+of+multiple+sclerosis%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cell+Research%22%5BJournal%5D)">Neural differentiation of patient specific iPS cells as a novel approach to study the pathophysiology of multiple sclerosis.</a> Stem Cell Research. 8 (2), 259-273 (2012).</li>
<li>Vierbuchen, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+conversion+of+fibroblasts+to+functional+neurons+by+defined+factors%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Direct conversion of fibroblasts to functional neurons by defined factors.</a> Nature. 463 (7284), 1035-1041 (2010).</li>
<li>Pfisterer, U., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+conversion+of+human+fibroblasts+to+dopaminergic+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences%22%5BJournal%5D)">Direct conversion of human fibroblasts to dopaminergic neurons.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences. 108, 10343-10348 (2011).</li>
<li>Lee, S. -T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+Generation+of+Neurosphere-Like+Cells+from+Human+Dermal+Fibroblasts%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">Direct Generation of Neurosphere-Like Cells from Human Dermal Fibroblasts.</a> PLoS ONE. 6, e21801(2011).</li>
<li>Thier, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+Conversion+of+Fibroblasts+into+Stably+Expandable+Neural+Stem+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">Direct Conversion of Fibroblasts into Stably Expandable Neural Stem Cells.</a> Cell Stem Cell. 10 (4), 473-479 (2012).</li>
<li>Lujan, E., Chanda, S., Ahlenius, H., Südhof, T. C., Wernig, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+conversion+of+mouse+fibroblasts+to+self-renewing%2C+tripotent+neural+precursor+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences%22%5BJournal%5D)">Direct conversion of mouse fibroblasts to self-renewing, tripotent neural precursor cells.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences. 109, 2527-2532 (2012).</li>
<li>Wang, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Derivation+of+neural+stem+cells+from+human+adult+peripheral+CD34%2B+cells+for+an+autologous+model+of+neuroinflammation%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">Derivation of neural stem cells from human adult peripheral CD34+ cells for an autologous model of neuroinflammation.</a> PLoS ONE. 8, e81720(2013).</li>
<li>Jin, C. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recombinant+Sendai+virus+provides+a+highly+efficient+gene+transfer+into+human+cord+blood-derived+hematopoietic+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Gene+Ther%22%5BJournal%5D)">Recombinant Sendai virus provides a highly efficient gene transfer into human cord blood-derived hematopoietic stem cells.</a> Gene Ther. 10 (3), 272-277 (2003).</li>
<li>Ban, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficient+generation+of+transgene-free+human+induced+pluripotent+stem+cells+%28iPSCs%29+by+temperature-sensitive+Sendai+virus+vectors%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences%22%5BJournal%5D)">Efficient generation of transgene-free human induced pluripotent stem cells (iPSCs) by temperature-sensitive Sendai virus vectors.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences. 108, 14234-14239 (2011).</li>
<li>Goolsby, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hematopoietic+progenitors+express+neural+genes%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences%22%5BJournal%5D)">Hematopoietic progenitors express neural genes.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences. 100, 14926-14931 (2003).</li>
</ol>

이 연구는 NIH 교내 기금으로 자금을 지원합니다.

직접 주연 조혈 전구 세포로부터 신경 줄기 세포를 생성하는 상세한 프로토콜이 제공된다. 섬유 아세포에 비교하여, 인간 말초 혈액 더 접근 할 수있다. 제시된 프로토콜 이상 1 × 105 조혈 전구 세포 또는 CD34 양성 세포를 이용하여, 전혈을 10 ㎖에서 농축 될 수있다. 혈소판 오염 보통 예방하지 않지만, 용이하게, 저속 원심 분리에 의해 감소​​ 될 수 있으며 신경 줄기 세포의 생성을 방해하지 않는다. 그러나, CD34 세포의 품질 및 개수는 신경 줄기 세포의 생산을 최종 결정한다. CD34 세포의 품질은 크게 CD34 배지에 대한 반응에 의해 판단 될 수있다. 긍정적 인 응답은 매체에 CD34 세포의 급속한 증식을 의미 이후 성공적인 변환 중요하다. CD34 세포가 상당한 손실 세포 증식, 또는 거치도록 실패한 경우, 변압기의rmation 덜 증식 세포의 결과로 어려워 질 것입니다. 따라서는 좋은 품질의 CD34 세포로 변환을 시작하는 것이 좋습니...

시험관 내에서의 연결을 문화는 신경 질환의 연구를위한 기본적인 도구로 사용되어왔다. 일차 동물 (주로 쥐) 신경 배양 1, 2, 또는 다른 신경 교종 종양에서 유래 인간 신경 세포주는 가장 일반적으로 사용되는 등의 연구에있다. 그러나, 설치류 및 인간 세포 사이에 상당한 차이가 있음을 인식하고있다. 설치류에 기초하여 다수의 발견은 인간으로 변환 될 수 없다. 또한, 대량의 게놈 정보 및 비교적 쉽게 유전자 편집 및 총 유전체 분석의 급속한 발전과 함께, 추세는 더욱 기어 몇몇 인간 신경 세포를 만드는 질병 경향 유전자를 검색하고 특정 질환의 기능 및 역할을 서술하는 것 세포주 만 사용을 제한. 이론적으로, 환자 신경계의 샘플에서 파생 된 인간의 기본 신경 문화 최선의 선택을하지만 그들은 얻을 불가능하다; 따라서 다른 메타ODS가 필요합니다. 최근 몇 년 동안, 몇몇 접근법은 두 가장 구별되는 함께 진행되고있다. 생성 유도 된 다 능성 줄기 세포 (IPSC)을 사용하여 마우스 및 인간 체세포 기술의 발달에 따라 3, 4는, 신경 세포들을 상기 5-7에서 차이가있을 수있다. 그러나, 생성 및 IPSC을 특성화하는 것은 노동 집약적, 기술, 시간 입력을 요구하고, 때로는 엄청나게. 얼마 후, 또 다른 접근 방식은 직접 체세포 8, 9에서 신경 세포를 변환하기 위해 개발되었다. 생성 된 뉴런 비 증식하는, 그 예의 연구 및 세포 많이 필요 약물 스크리닝에의 응용을 제한한다. 두 가지 기술, 신경 줄기를 직접 유도의 장점을 활용하려면 / 체세포에서 전구 세포는 여전히 IPSC 생성 및 특성화하지만 있습니다 provi의 지루한 과정을 거치지 여러 그룹 10-12에 의해 탐구되었다데 나중에 신경 분화 신경 줄기 세포의 괜찮은 번호. 우리는 이전에 조혈 전구 세포로 야마나카 전사 인자의 도입 다음, 신경 줄기 세포가 직접적으로 매체 (13)를 선택하는 신경 전구 세포를 이용하여 생성 될 수 있음을 보여 주었다. 여기서 우리는 자세히 방법을보고한다.

<table><tbody><tr><td>림프구 분리 매체</td><td>Lonza</td><td>17-829E</td><td>1x</td></tr><tr><td>SepMate</td><td>Stemcell Technologies</td><td>15415</td><td>15 ml</td></tr><tr><td>인간 혈청</td><td>Invitrogen</td><td>34005-100</td><td></td></tr><tr><td>항생제</td><td>Gibco</td><td>15240-062</td><td>1%</td></tr><tr><td>CD34 MultiSort Kit</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-056-701</td><td></td></tr><tr><td>EDTA</td><td>Cellgro</td><td>46-034-Cl</td><td>2 mM</td></tr><tr><td>MACS LS 컬럼</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-042-401</td><td></td></tr><tr><td>StemSpan SFEM 매체</td><td>Stemcell Technologies</td><td>9650</td><td>1x</td></tr><tr><td>IMDM</td><td>품질 생물학적 제제</td><td>112-035-101</td><td>1x</td></tr><tr><td>TPO</td><td>Peprotech</td><td>300-18</td><td>100 ng/ml</td></tr><tr><td>Flt-3</td><td>Peprotech</td><td>300-19</td><td>100 ng/ml</td></tr><tr><td>SCF</td><td>Peprotech</td><td>300-07</td><td>100 ng/ml</td></tr><tr><td>IL-6</td><td>Peprotech</td><td>200-06</td><td>20 ng/ml</td></tr><tr><td>IL-7</td><td>Peprotech</td><td>200-07</td><td>20 ng/ml</td></tr><tr><td>IPS Sendai 재프로그래밍 키트</td><td>Life Technologies</td><td>A1378001</td><td></td></tr><tr><td>셀 스크레이퍼</td><td>Sarstedt</td><td>83.183</td><td></td></tr><tr><td>DMSO</td><td>Sigma</td><td>D2650</td><td></td></tr><tr><td>CryoTube 바이알</td><td>Thermo</td><td>368632</td><td></td></tr><tr><td>Mr. Frosty 용기</td><td>Thermo</td><td>5100-0001</td><td></td></tr><tr><td>DMEM/F12</td><td>Life Technologies</td><td>12400-024</td><td>1x</td></tr><tr><td>N2 보충제</td><td>Life Technologies</td><td>17502-048</td><td>1x</td></tr><tr><td>소 혈청 알부민</td><td>Sigma</td><td>A2934</td><td>0.1% (w/v)</td></tr><tr><td>bFGF</td><td>Peprotech</td><td>100-18B</td><td>20 ng/ml</td></tr><tr><td>EGF</td><td>Peprotech</td><td>AF-100-15</td><td></td></tr><tr><td>B27 보충제</td><td>Life Technologies</td><td>17504-044</td><td>1x</td></tr><tr><td>NSC 세럼 프리 미디엄</td><td>Life Technologies</td><td>A1050901</td><td>1x</td></tr><tr><td>Poly-D-lysine/laminin 코팅 커버 슬립</td><td>BD Bioscences</td><td>354087</td><td></td></tr><tr><td>cAMP</td><td>Sigma</td><td>A9501</td><td>300 ng/ml</td></tr><tr><td>비타민 C</td><td>Sigma</td><td>A0278</td><td>0.2 mM</td></tr><tr><td>BDNF</td><td>Peprotech</td><td>450-02</td><td>10 ng/ml</td></tr><tr><td>GDNF</td><td>Peprotech</td><td>450-10</td><td>10 ng/ml</td></tr><tr><td>폴리-L-오르니틴</td><td>Sigma</td><td>P4957</td><td>1x</td></tr><tr><td>PDGF-AA</td><td>Peprotech</td><td>100-13A</td><td>10 ng/ml</td></tr><tr><td>NT-3</td><td>Peprotech</td><td>450-03</td><td>2 ng/ml</td></tr><tr><td>Shh</td><td>Peprotech</td><td>1314-SH/CF</td><td>2 ng/ml</td></tr><tr><td>T3</td><td>Sigma</td><td>T6397</td><td>3 nM</td></tr><tr><td>PFA</td><td>Sigma</td><td>P6148</td><td>4%</td></tr><tr><td>PBS</td><td>품질 생물학</td><td>119-069-101</td><td>1x</td></tr><tr><td>염소 혈청</td><td>Sigma</td><td>G9023</td><td>4%</td></tr><tr><td>TritonX-100</td><td>Sigma</td><td>T9284</td><td></td></tr><tr><td>마우스 단클론 항 Nestin</td><td>Millipore</td><td>AB5922</td><td>1:1,000 희석</td></tr><tr><td>Anti-SOX2 항체</td><td>적용 줄기세포</td><td>ASA0120</td> 마우스 안티-&베타<td>를 사용할 준비가 되었습니다</td></tr><tr><td>. III-튜불린 항체</td><td>Promega</td><td>G712A</td><td>1:1,000 희석</td></tr><tr><td>Rabbit anti-GFAP 항체</td><td>Sigma</td><td>G4546</td><td>1:100 희석</td></tr><tr><td>Anti-O4 항체</td><td>R& D 시스템</td><td>MAB1326</td><td>IgM; 1 ng/ml</td></tr><tr><td>Alexa Fluor 594 염소 안티 토끼 항체</td><td>생명 공학</td><td>A11012</td><td>1:400 희석</td></tr><tr><td>Alexa Fluor 488 염소 항 마우스 항체</td><td>생명 공학</td><td>A11001</td><td>1:400 희석</td></tr><tr><td>Alexa Fluor 488 염소 항 마우스 IgM 항체</td><td>생명 공학</td><td>A21042</td><td>1:250 희석</td></tr><tr><td>DAPI</td><td>Sigma</td><td>D9542</td><td>1 &뮤; g/ml</td></tr></tbody></table>

말초 혈액 조혈 전구 세포에서 인간 신경 줄기 세포의 직접 유도

Direct Induction of Human Neural Stem Cells from Peripheral Blood Hematopoietic Progenitor Cells

인간의 질병 특정의 연결을 문화는 인간의 신경 질환에 대한 체외 모델의 생성에 필수적이다. 그러나, 인간 성인 일차 배양 신경에 대한 액세스는 고유의 부족 문제를 제기한다. 유도 만능 줄기 세포의 최근 개발 (IPSC)는 환자의 특정 IPSC을 통해 피부 섬유 아 세포에서 신경 문화를 유도하기 위해 또 다른 방법을 제공하지만,이 과정은 노동 집약적이며, 특별한 전문 지식과 자원의 많은 양을 필요로하고, 몇 달이 걸릴 수 있습니다. 이것은 신경 질환의 연구에이 기술의 다양한 응용 프로그램을 방지 할 수 있습니다. 이러한 문제들을 극복하기 위해, 우리는 IPSC 도출 과정을 거치지 않고, 직접 사람 성인 말초 혈액으로부터 신경 줄기 세포를 유도하는 방법을 개발 하였다. 성인 인간의 말초 혈액에서 농축 조혈 전구 세포가 시험 관내에서 배양하고 10 월을 전사 요인 SOX2 함유 센다이 바이러스 벡터로 형질3/4, Klf4 및 c-Myc와. 상기 염기성 섬유 아세포 성장 인자 (bFGF)와 혈관 내피 성장 인자 (VEGF)를 포함하는 인간 신경 전구 매체를 이용하여 선택되는 세포의 형태 학적 변화의 형질 전환 결과. 생성 된 세포는 네 스틴과 같은 SOX2 같은 신경 줄기 세포 마커에 대한 발현을 특징으로한다. 이러한 신경 줄기 세포는 더 뉴런, 아스트로 글 리아 세포가 지정된 차별화 미디어에서 희소 돌기 아교 세포로 분화 될 수있다. 쉽게 접근 인간 말초 혈액 샘플을 사용하여,이 방법은 신경 질환의 체외 모델링 신경 세포로 더욱 분화 신경 줄기 세포를 유도하는데 이용 될 수 있으며, 이들 질환의 병인 및 치료에 관한 시험을 진행할 수있다.

<html> CD34 세포의 품질은 신경 줄기 세포 전달의 성공에 중요하다. 높은 품질의 CD34 세포는 문화의 일의 처음 몇 동안 증식 단지 배양 용기 (그림 1A)의 바닥 위에 떠, 비 점착성, 균일 라운드 세포로 나타납니다. 세포의 확장이 아닌 특정 세포 집계 세포 배양 중에 발생할 수 있지만, 시간 (그림 1B)를 통해 확장 집계 및 협회의 성공적인 감염 결과가 느슨하다. 부착 세포는 일반적으로 형질 전환 후 3-5일 주위에 나타납니다; 그들은 대부분 바이폴라 및 단일 층 (그림 1C)를 만들어 증식한다. 신경 전구 세포 매체와 선택 후 부착 세포의 대부분은 네 스틴 및 SOX2 긍정적 인 Oct4하지만 마이너스 (그림 2)입니다. 유도 된 신경 줄기 세포는 신경 세포와 아교 세포 (그림 3)에 더 차별화 될 수 있습니다. 항상 &quot;&gt; :&quot;유지...

직접 방법 말초 혈 세포로부터 농축 조혈 전구 세포로부터 인간 신경 줄기 세포를 유도하기 위해 개발되었다.

Human disease specific neuronal cultures are essential for generating in vitro models for human neurological diseases. However, the lack of access to ...

본 실험 절차의 전반적인 목표는 혈액 세포로부터 신경 줄기세포를 직접 유도하는 것입니다. 이는 먼저 혈액에서 CD 34 양성 조혈 전구 세포를 농축함으로써 달성됩니다. 두 번째 단계는 전사 인자를 포함하는 sendi 바이러스를 CD 34 세포에 형질전환하는 것입니다.다음으로, 선택 배지를 사용하여 신경줄기세포를 유도합니다. 마지막 단계는 유도된 신경줄기세포를 뉴런, 성상교세포 및 희소돌기아교세포로 분화시키는 것입니다. 최종적으로, 면역형광 현미경법을 사용하여 생성된 세포들의 특성을 분석합니다.섬유아세포로부터 뉴런을 직접 분화시키는 방법이나 IPS 생성과 같은 기존 방법과 비교했을 때 이 기술의 주요 장점은, 번거로운 IPS 생성 및 배양 과정을 거치지 않고도 뉴런으로 분화할 수 있는 다량의 신경세포를 제공한다는 점입니다. 저는 형질전환된 CD34 세포가 부착되었을 때 일차 배양된 신경 전구 세포와 매우 유사한 모습을 보인다는 점을 발견하고 이 방법의 아이디어를 처음 얻었으며, 이후 실험실 테크니션인 Marines와 함께 절차를 입증하였습니다. 텍스트 프로토콜의 지침에 따라 말초혈액 단핵구에서 CD34 세포를 분리한 후, CD34 배지에 CD34 세포를 재현탁하여 배양 과정을 시작하고, 24-웰 플레이트의 웰당 1 mL 배지에 3 × 10⁵ cells/well의 밀도로 세포를 분주합니다.5% 이산화탄소 농도의 37°C 조직 배양 인큐베이터에서 24시간 동안 배양한 후, 부유 세포를 수집하고 세포 현탁액을 상온에서 110 ×g로 원심 분리합니다. 그다음 상층액을 제거하고 신선한 CD34 유지 배지에 세포를 재현탁합니다. 새로운 24-웰 플레이트의 웰당 1 mL 배지에 1 × 10⁵ 개의 세포를 분주하고, 5% 이산화탄소 인큐베이터의 37°C에서 5일 더 배양하며 이틀마다 배지의 절반을 교체합니다.다섯 번째 날에 여기 보이는 것처럼 CD 34 세포가 웰 바닥에 가라앉아 있을 때, 상층액의 상단 절반을 조심스럽게 흡입하여 제거합니다. 플레이팅 후, CD 34 세포를 수집하여 실온에서 170 ×g로 10분간 원심분리하고, 상층액을 버린 뒤 이전과 동일하게 세포를 재현탁하여 새 24-웰 플레이트에 웰당 1 × 10⁵ cells/well의 밀도로 1 mL의 배지에 분주합니다. 다음으로 CytoTune iPS Reprogramming Kit를 해동합니다.먼저 튜브 하단을 37 °C 항온 수조에 10초 동안 담근 후, 실온에서 완전히 해동합니다. 튜브를 짧게 원심 분리하고 얼음에 둡니다. 해당 로트의 분석 증명서(certificate of analysis)에 기재된 각 바이러스의 권장 부피를 혼합하여 Sendai 바이러스 혼합물을 준비합니다.감염 다중도(MOI)는 15로 권장됩니다. 각 CD 34 세포 웰에 Sendai 바이러스 혼합물을 추가합니다. 그런 다음 플레이트를 부드럽게 흔들어 웰을 혼합합니다.세포를 5% carbon dioxide 인큐베이터에서 37 °C로 24시간 동안 배양합니다. 형질도입 효율을 관찰하십시오. 여기에 표시된 것과 같은 세포 응집체와 구체는 형질도입이 성공적으로 이루어졌음을 나타내는 지표입니다.그런 다음, 여기에서 보는 것처럼 이틀마다 관찰하며 부착된 세포가 나타나고 30~50% confluence에 도달할 때까지 조직 배양 인큐베이터에서 5~7일 동안 배양합니다. 배지 상층부의 절반을 다른 웰로 조심스럽게 옮겨 배지의 절반을 교체합니다. 세포 구체가 새로운 웰로 옮겨진 경우, 동일한 양의 신선한 배지를 추가합니다.도립 현미경을 사용하여 세포의 합류도(confluency)를 확인합니다. 세포의 합류도가 30~50%가 되면, 상층액을 흡입하여 보관하고, 각 웰에 신경 전구세포 배지 1 mL를 추가하여 상층액 내의 구체(sphere)를 이용한 백업 플레이트를 제작합니다. 보관한 상층액을 170 ×g에서 10분 동안 원심분리합니다. 그 후 상층액을 흡입하고 펠렛을 신경 전구세포 배지로 재부유시킨 다음, Matrigel이 코팅된 24웰 플레이트에 분주합니다.이전과 마찬가지로, 세포가 60~80% 밀도(confluence)에 도달할 때까지 매 2일마다 각 플레이트의 배지를 교체합니다. 이는 보통 1주일 후에 도달합니다. 세포가 필요한 밀도에 도달하면, 상층액을 흡입하여 제거하고 각 플레이트에 1 mL의 신경줄기세포 배지를 추가합니다.그 다음, 셀 스크레이퍼를 사용하여 세포를 분리하고, 매우 부드럽게 피펫팅합니다. 이어서, 24웰 플레이트의 한 웰에서 세포를 옮겨 6웰 플레이트의 한 웰에 넣습니다.웰에 배지를 1mL 더 추가하고, 모든 웰에 대해 이 절차를 반복한 후 6-웰 플레이트를 37°C, 5% CO₂ 배양기에 넣습니다. 세포가 60% confluence에 도달할 때까지 이틀마다 배지 전체 용량을 교체하며, 그 후 방금 보여드린 것과 같이 1:3 비율로 세포를 해리 및 재배양하여 미분화 신경줄기세포의 일부를 동결 보존합니다. 먼저, 신경줄기세포 배지에 20% dimethyl sulfoxide(DMSO)를 추가하여 줄기세포 동결 배지를 준비하고 얼음에 둡니다.그런 다음 6-웰 플레이트의 세포를 세포 스크레이퍼와 부드러운 피펫팅을 사용하여 해리합니다. 세포 계수를 위해 현탁액의 일부를 분취하여 남겨두고, 상온에서 170 ×g로 10분 동안 세포를 원심 분리합니다. 세포가 회전하는 동안 헤모사이토미터 또는 자동 세포 계수기를 사용하여 분취한 현탁액의 세포 수를 측정하고, 세포 농도가 1 × 10⁶ cells/mL가 되도록 필요한 배지의 부피를 계산합니다.원심분리가 끝나면 상층액을 제거하고 펠릿을 1×10⁶ cells/mL 농도의 신경줄기세포 배지로 재현탁합니다. 그 다음 동일한 부피의 동결 배지를 추가하고, 1mL 부피에 5×10⁵ cells가 되도록 크라이오 바이알에 분주한 뒤 제조사의 지침에 따라 동결 용기에 넣어 세포를 동결합니다. 6-웰 플레이트의 신경줄기세포가 80% confluency에 도달하면, 러버 폴리스맨을 사용하여 세포를 떼어낸 후 가볍게 피펫팅하여 해리시킵니다.세포 현탁액을 멸균 튜브에 모읍니다. 혈구계수기 또는 자동 세포 계수기를 사용하여 세포 수를 측정하고, 신경줄기세포 배지를 이용해 세포 현탁액의 농도를 1 × 10⁵ cells/mL로 조정합니다. 그 다음, 원하는 수의 웰에 대해 동일한 과정을 반복한 후, 24웰 플레이트의 한 웰에 있는 poly-D-lysine 및 라미닌 코팅 커버슬립 위에 세포 현탁액 1 mL를 피펫으로 분주합니다.이전과 동일하게 24시간 동안 배양합니다. 배양 시간이 경과하면 배지를 흡입하여 제거하고 신경 분화 배지로 교체합니다. 37°C, 5% CO₂ 조건에서 2주 동안 배양하며, 일주일에 두 번 배지를 교체하고 2주 후 다음 단계로 진행합니다.신경 줄기세포는 여기에서 보여지는 것과 같이 완전히 분화되어 면역형광 염색과 같은 하위 응용 단계에 준비되어 있어야 합니다. 처음 두 이미지는 신경 줄기세포가 nestin과 SOX2를 발현함을 보여줍니다. 세 번째 이미지는 OCT4가 발현되지 않음을 입증하며, DAPI가 핵 마커로 사용되었고 스케일 바는 200 µm를 나타냅니다.비디오에 설명된 분화 프로토콜을 따른 후, 분화된 뉴런은 뉴런 마커인 beta three tubulin을 발현합니다. 인간 신경 줄기세포는 신경교세포로도 분화될 수 있습니다. 성상교세포로 분화될 때, 세포는 성상교세포 마커인 GFAP를 발현합니다.마지막으로, 이 이미지에서 세포들은 희소돌기아교세포로 분화되어 희소돌기아교세포 마커인 O4를 발현하고 있습니다. 이러한 과정을 숙달하면 말초혈액으로부터 유도 인간 신경줄기세포를 생성하는 작업을 약 3주 만에 완료할 수 있습니다.적절하게 수행된다면, 신경 줄기세포를 뉴런으로 추가 분화시킬 수 있으며, 이는 시간이 오래 걸리고 복잡한 iPS 세포 생성 과정을 거치지 않는 명확한 방법으로서, 개발 후 환자 특이적 뉴런 배양물을 생성하는 간편한 대안이 될 수 있습니다. 이 기술은 신경과학 분야의 연구자들이 다양한 신경계 질환에 대한 개별 세포 배양 모델링을 탐구할 수 있는 경로를 제공하며, 특히 개별 환자 샘플을 통해 특정 질환의 유전적 차이를 더 잘 나타낼 수 있습니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Developmental Biology

발생생물학

우리는 인간의 연결을 progenitors 및 신경 수리 개발 CNS에의 연결을 세포 유형의 대형 공급 파생을 가능하게 작은 분자와 함께 정의된 조건 하에서 유지 pluripotent 인간 배아 줄기 세포에서 직접 neuroblasts의 유도를위한 프로토콜을 설립했습니다.

작은 분자와 유도 Pluripotent 인간 배아 줄기 세포에서 인간의 연결을 Progenitors과 뉴런의 효율 유도

여기 하나의 lentiviral 재활 벡터를 사용하여 말초 혈 3-4 ML에서 인간 iPSCs의 생성을위한 간단하고 효과적인 프로토콜을 보여줍니다. 즉시 사용할 수 혈액 세포의 재 프로그래밍하면 폭 넓은 연구 공동체에 액세스하여 iPSC 기술의 활용을 촉진 것을 약속드립니다.

STEMCCA Lentiviral 벡터를 사용하여 말초 혈에서 인간 유도 만능 줄기 세포의 생성

이 비디오는 센다이 바이러스를 사용하여 말초 혈액 단핵 세포(PBMNC)를 유도 신경 줄기 세포(iNSC)로 재프로그래밍하는 방법을 보여줍니다. 센다이 바이러스는 세포를 재프로그래밍하기 위한 효율적이고 안전한 수단을 제공하는 비통합형 바이러스입니다.

말초혈액 단핵세포(PBMNC)에서 유도 신경 줄기세포(iNSC) 생성: PBMNC를 iNSC로 재프로그래밍하는 센다이 바이러스 기반 절차

이 비디오는 유전적으로 변형된 조혈전구세포를 신경세포 줄기세포로 직접 재프로그래밍하는 방법을 보여줍니다. 조혈전구세포(hematopoietic progenitor cell)에 의해 발현되는 전사 인자(transcription factor)는 연쇄 반응(cascade of molecular events)을 유발하여 변형을 촉진합니다. 추가 특이적 배지는 유도된 신경 줄기 세포를 선택하고 성장시키는 데 사용됩니다.

조혈전구세포(Hematopoietic Progenitor Cells)를 신경 줄기세포(Neural Stem Cells)로 직접 재프로그래밍(Direct Reprogramming of Hematopoietic Progenitor Cells into Neural Stem Cells)

유도 만능 줄기 세포의 생성은자가 이식의 유도에 대한 매혹적인 전망을 제공합니다. 그러나, 만능 상태와 힘든 다시 차별화를 통해 진행은 여전히​​ 임상 번역을 방해한다. 여기에서 우리는 성인 인간 섬유 아세포의 유도와 유도 된 신경 전구 세포에 자신의 직접 변환과 신경 계통에 후속 차별화를 설명합니다.

성인 인간 섬유 아세포의 유도 및 확장 신경 전구 세포에 자신의 직접 변환

이 프로토콜은 전사 인자의 강제 발현을 통해 인간 만능 줄기 세포에서 혈구 내피 및 다중전위 조혈 전구 세포의 효율적인 유도를 설명합니다.

인간 만능 줄기 세포에서 전사 인자의 과발현에 의해 직접 Hemogenic 내피 세포의 유도 및 혈액

우리는 말초혈액 단핵세포(PBMC)를 유도만능줄기세포(iPSC)로 재프로그래밍하는 프로토콜을 제안합니다. 원심분리를 통해 형질도입된 혈액 세포를 매트릭스 코팅된 플레이트에 도금함으로써 부유 세포에서 iPSC를 성공적으로 유도할 수 있습니다. 이 기술은 PBMC 및 CBMC와 같은 셀에 대한 간단하고 효과적인 재프로그래밍 프로토콜을 제안합니다.

센다이 바이러스 원심 분리를 이용하여 혈액 세포로부터 유도 만능 줄기 세포의 생성

이 프로토콜은 인간 성인 말초 혈액 세포에서 통합이 없는 iPSC를 효율적으로 생성하기 위한 자세한 방법을 설명합니다. 재프로그래밍 인자를 발현하기 위해 KLF4, MYC, BCL-XL 또는 OCT4 및 SOX2와 같은 4개의 oriP/EBNA 기반 에피솜 벡터를 사용하여 1mL의 말초 혈액에서 수천 개의 iPSC 콜로니를 얻을 수 있습니다.

에피 솜 벡터를 이용하여 인간 말초 혈액 단핵 세포로부터의 통합없이 유도 다 능성 줄기 세포의 생성

이 프로토콜은 센다이 바이러스 감염에 의해 신경 줄기 세포를 유도하는 말초 혈액 단핵 세포의 재프로그래밍을 제시, 도파민성 뉴런으로 iNC의 분화, 일방적으로 병변에 DA 전구체의 이식 파킨슨병 마우스 모델, PD 치료를 위한 iNSC 유래 DA 전구체의 안전성 및 효능에 대한 평가.

말초 단핵 세포에서 유도 된 신경 줄기 세포의 생성 및 이식 연구에 대 한 도파민성 신경 전구체로 분화

여기서, 우리는 피더-및 제노프리 조건에서 인간 다능성 줄기 세포로부터 혈생 내피를 정밀하게 형성하는 프로토콜을 제시한다. 이 방법은 치료 화합물에 대한 질병 모델링 및 스크리닝에 광범위한 응용 프로그램을 가질 것이다.

피더 및 제노 프리 정의 상태에서 인간 다능성 줄기 세포에서 혈생 내피 분화

여기서, 우리는 4개의 골수성 혈통에 제대혈 유래 CD34+ 조혈 줄기 및 전구 세포의 면역표현특성 및 사이토카인 유도분화를 위한 프로토콜을 제시한다. 이 프로토콜의 적용은 CD34+ 세포의 골수성 분화에 대한 골수성 질환 돌연변이 또는 소분자의 영향에 대한 조사를 포함한다.

인간 코드 혈액 유래 CD34+ 조혈 줄기 및 전구 세포의 범골수성 분화

배우세요 말초 혈액의 CD34+ 조혈 전구 세포에서 바이러스 벡터를 이용해 신경 줄기 세포를 직접 유도하는 방법을. 이 기술은 재생 의학 연구에 활용될 수 있습니다.

말초 혈액 조혈 전구 세포에서 인간 신경 줄기 세포의 직접 유도

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