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마 취 쥐에서 중앙 신경 조작에 대 한 응답에서 신장 교감 신경 활동에 심각한 변화를 측정
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JoVE Journal Neuroscience
Quantifying Acute Changes in Renal Sympathetic Nerve Activity in Response to Central Nervous System Manipulations in Anesthetized Rats

마 취 쥐에서 중앙 신경 조작에 대 한 응답에서 신장 교감 신경 활동에 심각한 변화를 측정

Full Text
8,296 Views
06:30 min
September 11, 2018

DOI: 10.3791/58205-v

Anne M. Fink1, Caron Dean2

1Department of Biobehavioral Health Science, College of Nursing,University of Illinois at Chicago, 2Department of Anesthesiology,Medical College of Wisconsin and Zablocki VA Medical Center

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Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study presents a method for measuring renal sympathetic nerve activity (RSNA) in anesthetized rats to investigate the autonomic nervous system. By examining changes in sympathetic outflow related to central nervous system manipulations, the protocol provides insights into the mechanisms regulating autonomic responses affecting kidney function.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Cardiovascular Physiology
  • Autonomic Regulation

Background

  • Understanding sympathetic outflow from the central nervous system is crucial for studying blood pressure regulation.
  • Techniques for assessing renal sympathetic nerve activity are essential in neuroscience research.
  • Manipulating the CNS can reveal important information about sympathetic regulation.
  • The method allows for acute assessments in vivo in a controlled environment.

Purpose of Study

  • To develop a protocol for measuring RSNA to central nervous system changes.
  • To understand the relationship between CNS manipulations and sympathetic nerve activity directed at the kidneys.
  • To facilitate future studies on blood pressure and renal function modulation.

Methods Used

  • This study employs in vivo methodologies in anesthetized rats to assess RSNA.
  • The biological model involves renal sympathetic nerves and addresses CNS manipulations.
  • Detailed surgical steps for catheter and electrode placements were outlined to ensure proper measurement.
  • Special attention was given to the quality of anesthesia and the positioning of the animals during procedures.

Main Results

  • The study successfully measured RSNA, demonstrating that CNS manipulations can impact renal sympathetic outflow.
  • Electrophysiological recordings confirmed changes in nerve activity correlated with blood pressure alterations.
  • Findings suggested that sympathetic nerve activity might play a role in regulating kidney function during CNS challenges.
  • The protocol validated by using phenylephrine injections to evoke baroreflex responses.

Conclusions

  • This study demonstrates a method for exploring CNS influence on renal sympathetic nerve activity.
  • The findings have implications for understanding autonomic regulation in cardiovascular health and disease.
  • The protocol can be adapted for future research on blood pressure control mechanisms.

Frequently Asked Questions

What are the advantages of this technique?
This method allows for precise measurement of sympathetic responses to central nervous system manipulations, providing valuable insights into autonomic regulation.
How is the biological model implemented?
The study uses anesthetized rats, where surgical techniques are employed to access and record renal sympathetic nerve activity.
What types of data are obtained from this method?
The methodology provides electrophysiological data regarding renal sympathetic nerve activity in response to CNS manipulations and blood pressure changes.
How can this method be adapted for other studies?
The protocol can be modified to examine different variables affecting sympathetic activity or to study various autonomic responses in other animal models.
What are key considerations when using this technique?
Ensuring adequate anesthesia, proper electrode placement, and handling of the animal during the procedure are critical for obtaining reliable results.
What limitations should be considered?
The method requires skilled surgical handling and may not be suitable for studies requiring long-term observations due to its acute experimental design.

중앙 신경 시스템 (CNS) 조작에 대 한 공감과 심장 혈관 응답을 측정 하기 위한 방법 신경 과학 발전을 위해 중요 하다. 이 프로토콜은 측정 및 마 취 쥐 (비-생존)에서 신장 교감 신경 활동 (방사선학)에 심각한 변화를 측정 과학자를 지원 하기 위해 개발 되었다.

이 방법은 자율신경계, 특히 신장으로의 교감신경 유출을 조절하는 중추신경계 메커니즘에 대한 주요 질문에 답하는 데 도움이 될 수 있습니다. 이 기술의 가장 큰 장점은 중추 신경계 조작이 신장으로의 교감신경 유출에 미치는 영향을 측정할 수 있다는 것입니다. 동맥 삽관을 삽입하기 전에 고배율에서 압력 감지 카테터를 검사하여 카테터에 기포와 파편이 없고 유체와 젤로 채워진 구성 요소 사이에 손상되지 않은 반월판이 있는지 확인합니다.

각 이식 전에 카테터의 말단 끝에 젤을 다시 채우고 자석을 사용하여 송신기를 켭니다. 근위 봉합사에 느슨한 오버핸드 반 매듭을 넣어 대퇴 동맥을 잠시 폐색합니다. 그리고 카테터 도입기를 비지배적인 손에 들고 혈관 캐뉼레이션 겸자를 사용하여 팁에서 젤이 변위되지 않도록 원격 측정 장치의 캐뉼라 끝을 잡습니다.

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신경 과학 문제점 139 마 취 혈압 중앙 신 경계 쥐 신장 교감 신경 활동 원격 transcardiac 관류.

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