Name: 중국 햄스터 난소 세포의 신속한 항체 당공학 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-06-02T13:30:00.000+00:00
Duration: 6 min 53 s
Description: 학습하세요 CHO 세포에서 글리코실화 효소의 고속 스크리닝 방법을. 전기천공과 웨스턴 블롯을 활용하여 항체 당구조를 최적화하고 치료 효능을 향상시키는 이 기술은 바이오제약 품질 관리에 필수적입니다.

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PK는 임페리얼 칼리지 런던의 화학 공학과에 장학금을 주신 것에 감사드립니다. RD는 영국 생명 공학 및 생물 과학 연구위원회에 그의 학생들에 감사드립니다. MM은 영국 생명 공학 및 생물 과학 연구위원회 (보조금 참조 : BB / S006206 / 1)가 자금을 지원합니다. IAG는 아일랜드 연구위원회 (장학금 번호)에 감사드립니다. GOIPG/2017/1049) 및 CONACyT (장학금 번호 438330).

저자는 공개 할 것이 없습니다.

글리코실화 경로는 효소 및 부속 단백질의 복잡한 대사 네트워크를 수반한다. 경로 구성 요소의 기능을 해부하는 것은 기존의 녹아웃 또는 녹인 유전 공학 전략에만 의존하는 경우 어려운 일입니다. 대안적인 접근법은 일시적인 기능 손실 검정을 사용하여 경로의 구성원을 미리 스크리닝하는 것입니다. 이를 위해 RNAi 및 CGE-LIF 검출이라는 두 가지 신속한 프로토콜을 결합하여 글리코실화 유전자를 특성화하는 보다 효율적인 방법을 만들었습니다. 설명 된 방법은 완료에 몇 주가 걸릴 가능성이있는 기존 방법과 비교하여 완료에 5-7 일이 필요합니다. 또한 자동화 기능을 갖춘 연구 환경은이 방법을 활용하여 수동 처리로 실현 가능한 것보다 더 많은 유전자 후보를 선별 할 수 있습니다.
일시적인 글리코엔지니어링 캠페인의 성공은 siRNA 설계에 크게 의존한다. 맞춤형 DsiRNA 설계는 이전에 설명된 규칙을 따라야 하며, 또는 쉽게 사용자가 상업적으로 이용가능한 사전 설계된 서열을 선택할 수 있다. 다른 유전자 변형 전략과 마찬가지로, RNAi는 오프 타겟 효과에 대한 잠재력을 가지고 있습니다. 따라서, 사용자는 계산 방법(41)에 의해 의도하지 않은 유전자 표적화를 평가하도록 권장된다. 실험적 설계 선택은 또한 오프 타겟 효과를 제한하는 데 도움이 될 수 있습니다. Kittler 등은 siRNA의 다중화된 전달이 오프 타겟 효과의 감소를 유도한다는 것을 보여주었다42. 이것은 직관에 어긋나는 것처럼 보이지만, 마스터 믹스는 각 siRNA 구축물의 농도를 감소시켜 오프 표적 유전자 침묵의 기회를 제한하는 것이 제안된다. 또 다른 이점은 동일한 유전자를 표적으로 하는 siRNA 구조의 동시 형질감염이 성공적인 RNAi의 가능성을 증가시킨다는 것이다. 마스터 믹스를 사용하면 샘플과 반복실험 간의 일관성이 보장되고 트랜스펙션 프로세스가 빨라집니다. 혼합된 siRNA 구축물의 초기 스크린에 이어서, 각 서열의 RNAi 효율을 확인하기 위해 개별 구축물을 사용하여 또 다른 실험을 수행할 수 있다. 이 및 다른 녹다운 연구에서, 최대 세 개의 siRNA가 풀링되어 세포(43,44,45)로 전달되었다. 그러나, 단일 유전자를 효율적으로 표적화하거나 여러 유전자를 표적화하기 위해 세 개 이상의 siRNA를 동시에 스크리닝하는 것이 바람직할 수 있다. 실제로, 한 연구는 개별 유전자의 침묵과 비슷한 수준에서 최대 6 개의 유전자의 다중화 siRNA 매개 침묵을 입증했다46. 그러나, 침묵 효율을 손상시키지 않으면서 풀에서 사용될 수 있는 siRNA 구축물의 최대 수를 결정하기 위해서는 추가적인 연구가 필요하다. 멀티플렉스 전략은 RNAi 라이브러리 스크리닝 실험46의 속도를 향상시키기 위해 Martin et al.에 의해 제안되었으며, 유사한 개념은 글리코실화 유전자를 스크리닝하는데 유용한 것으로 입증될 수 있다.
본원에 기재된 프로토콜은 다른 글리코실화 유전자를 검증하기 위해 후속 실험이 수행될 것이라는 기대와 함께 개념 증명으로서 작용한다. 관심있는 새로운 유전자는 Fut8보다 특성화되지 않거나 덜 대중적일 수 있으며, 유전자 침묵을 검출하는 일차 항체는 불량하거나 이용가능하지 않을 수 있다. 이 시나리오에서, RT-PCR과 같은 대안적인 방법은 유전자 침묵(47)을 정량화하는데 사용될 수 있지만, RT-PCR은 단백질보다는 mRNA를 검출한다는 점에 유의해야 한다. 웨스턴 블롯팅에 대한 항체를 사용할 수 있을 때, 일반적인 문제는 불량한 검출 또는 비특이적 밴드의 존재이다. 사용자가 일반적인 문제를 해결하는 데 도움이 되는 문제 해결 가이드를 사용할 수 있으며, 여기에는 일차 항체 적정, 대체 차단 및 검출 조건(48,49)과 같은 다양한 솔루션이 포함되는 경향이 있다. 이 연구에서, FUT8은 예기치 않게 ~65 및 ~70 kDa에서 더블 밴드로 나타났다. ∼70 kDa 밴드가 글리코실화 FUT8을 나타낼 수 있다. 인간 세포주로부터의 문헌 증거는 Thr 56450,51, 중국 햄스터에서 보존되는 부위, 및 CHO K1 FUT8 서열에서의 O-연결된 글리코실화를 기술한다.
앞서 언급한 바와 같이, 글리코실화 경로는 종종 복잡한 효소 배열을 수반한다. 현재의 프로토콜은 Fut8에 의해 조절되는 단발성 글리코실화 반응을 사용하여 개발, 최적화 및 입증되었다. 따라서, 표적 유전자가 대체 동역학 및 발현 수준을 갖는 효소를 인코딩하거나 중복 기능을 갖는 이소효소에 의해 조절되는 경로를 갖는 이 방법의 견고성을 확인하기 위해서는 추가적인 연구가 요구된다.
종합하면, 유전자를 신속하게 침묵시키고 변형된 IgG 글리코프로파일을 검출하는 능력은 맞춤형 글리코엔지니어링된 항체를 향한 노력에 유용한 도구이다. 유사한 단기 연구의 통찰력은 유가식 배양과 같은 장기 분석에 사용하기 위해 안정적인 당공학적 세포를 생성하는데 적용될 수 있다. 제약 맥락 밖에서이 방법은 글리 칸 생물학 연구에 기여하고 발달, 건강 및 질병에서 글리 칸의 중요한 기능을 강조합니다.

N-연결된 글리코실화는 올리고당 잔기가 Asn 잔기에 공유적으로 연결되는 효소적 과정이다. de novo 단백질 합성과는 달리, 글리칸 합성은 단백질의 이질적인 글리코실화를 초래하는 비주형 반응이다. 글리칸의 구조, 구성 및 분포는 단백질 입체 형태 및 기능에 영향을 줄 수 있습니다. 실제로, 면역글로불린 G(IgG)의 결정화가능한 단편 (Fc) 영역에서의 N-글리코실화는 항체1의 치료 효능, 면역원성 및 반감기를 조절한다. 이와 같이, 재조합 생물요법 단백질 제품의 개발을 위한 설계(QbD) 패러다임에 의한 품질은 자연스럽게 글리코실화를 임계 품질 특성(CQA)2,3으로서 식별한다. 포유동물 세포는 박테리아, 효모, 곤충 또는 식물 세포보다 본질적으로 인간 유사 글리코실화 패턴을 더 가깝게 생산하기 때문에 종종 바람직한 발현 시스템이다. 더욱이, 차이니즈 햄스터 난소(CHO) 세포는 인간 바이러스 감염에 내성이 있고, 높은 역가에서 생성물을 분비하고, 높은 생존 가능한 세포 밀도로 현탁 배양물에서 성장할 수 있기 때문에 다른 포유동물 세포주보다 선택된다4. 글리칸 형성과 관련하여, 비-CHO 뮤린 생산 세포는 모노클로날 항체 (mAbs)5의 안전한 사용에 영향을 미치는 면역원성 글리칸 (α(1-3)-연결된 갈락토오스 [α(1-3)-Gal] 및 N-글리콜릴뉴라민산 [NeuGc])을 생성한다. 이러한 이점은 CHO 세포를 가장 중요한 발현 시스템으로 만들어 주며 2014 년과 2018 년 사이에 새로운 생물 치료제의 80 % 이상을 생산합니다 6. 그러나, 주형-비의존성 글리코실화는 글리코폼의 어레이를 갖는 CHO 유래 생물치료제로 이어지는 보존된 메카니즘이다.
생물 치료 개발 전략은 유전 공학에 의해 CHO 세포의 이질성을 조절하는 것을 목표로합니다. 일부 문헌의 예는 시알리다제 (Neu1, Neu3)7, GDP-만노스 4,6-데하이드라타제 (GMD) 녹아웃8, 및 글리코실트랜스퍼라제 (GnTIII)9의 과발현의 녹다운을 포함한다. 글리코엔지니어링의 발전은 CHO 게놈 10과 같은 공개적으로 이용 가능한 자원의 조합과 전사 활성화제-유사 이펙터 뉴클레아제(TALENs), 징크 핑거 뉴클레아제(ZFNs) 및 클러스터링된 규칙적으로 간격이 짧은 구두체 반복(CRISPR)-관련 단백질 9(CRISPR-Cas9)11,12,13,14와 같은 유전 공학 도구의 지속적인 개발로 인해 가능하다. . 이들 도구는 전형적으로 플라스미드 DNA 또는 정제된 리보뉴클레오단백질 (RNP) 복합체로서 CHO 세포에 전달된다. 반대로, RNA 간섭 (RNAi)은 유전 공학 기술로, 가장 단순한 형태로 정제 된 짧은 간섭 RNA (siRNA) 올리고뉴클레오티드의 전달만을 필요로합니다. 내인성 단백질은 이중 가닥 siRNA를 단일 가닥으로 처리하고, 뉴클레아제, RNA-유도 침묵 복합체 (RISC)는 표적 mRNA 서열15,16,17을 절단하기 위해 siRNA와 복합체를 형성한다. 이 방법을 통한 유전자 침묵은 RNA 불안정으로 인해 일시적이지만, 본 명세서에서 조사한 결과, 신속한 스크리닝을 돕기 위해 이 기능을 활용한다.
현재 연구를 위해 선택된 모델 효소인 α1,6-fucosyltransferase (FUT8)는 α-1,6 코어 결합 L-푸코스(Fuc)를 갖는 N-글리칸을 생산한다. 이러한 변형은 상업적 항체의 연구에 의해 입증된 바와 같이, 항체 의존성 세포 세포독성 (ADCC) 활성의 일차적인 결정인자이다. 코어 푸코실화의 부재 하에서, 리툭시맙 (항-CD20 IgG1)은 ADCC를 50배 증가시키고, FcgRIIIa 결합 18,19를 개선함으로써 트라스투주맙 (항-Her2IgG1)에서 ADCC를 증가시킨다. 따라서 코어 fucosylation은이 표현형을 역전시키려는 노력을 보증하는 mAbs의 바람직하지 않은 특징으로 간주됩니다. ADCC20,21,22에서 수반되는 증가와 함께 siRNA를 사용한 성공적인 Fut8 유전자 표적화의 예가 있지만, 이들 예는 플라스미드 DNA에 암호화된 Fut8 siRNA를 전달한다. 이러한 실험은 플라스미드 DNA가 siRNA 합성을 위한 주형으로서 기능함에 따라 안정한 유전자 침묵을 생성한다. 이를 통해 세포는 세포내 RNases 및 포스파타제에 의해 분해되는 siRNA 분자를 보충할 수 있습니다. 반대로, 외인성 합성 siRNA의 전달은 siRNA가 세포내 주형의 부족으로 인해 보충될 수 없기 때문에 일시적인 유전자 침묵만을 허용한다. 따라서 사용자는 실험 설계가 플라스미드 유래 또는 합성 siRNA와 호환되는지 여부를 고려해야합니다. 예를 들어, 피크 mAb 생산에 초점을 맞춘 연구들, 전형적으로 배양23,24일의 육일째에, 피크 발현 며칠 전에 세포에 전달될 수 있는 합성 siRNA를 선택할 수 있다. 합성 siRNA를 이용한 일시적 접근법의 이점은 생산을 아웃소싱하는 능력 및 플라스미드에서 구축물을 생성하는 데 걸리는 시간의 일부분으로 다수의 siRNA 구축물이 생성될 수 있다는 사실을 포함한다. 더욱이, 합성 siRNA는 FUT8 단백질 발현25를 감소시키고 증가된 FCgRIIIa 결합 및 ADCC26을 갖는 아푸코실화된 IgGs를 수득하기에 충분한 Fut8 유전자 침묵의 문헌 예에 의해 입증된 바와 같이 효과적이다.
이러한 당공학 프로토콜의 성공은 Fc 글리코실화의 정도에 의해 결정되었다. 질량 분광법은 일반적으로 글리코믹 분석을 위해 선택되는 방법입니다. 그러나, 모세관 겔 전기영동 및 레이저-유도 형광 검출 (CGE-LIF)은 정제된 IgGs의 글리코프로파일을 분해하는데 완벽하게 순응할 수 있고, 더 빠른 속도 및 단순성의 이점을 갖는다. 질량 분광법 프로토콜은 적절한 크로마토그래피 및 유도체화 방법, 이온화 공급원 및 질량 분석기(27,28,29)를 결합해야 한다. 숙련 된 전문가가 필요한 것 외에도 질량 분광법 프로토콜은 길며 방법의 다양성으로 인해 서로 다른 설정을 가진 실험실간에 데이터를 비교하기가 어렵습니다. 바이오 의약품의 맥락에서, CGE-LIF는 항체 글리코 프로파일의 충분한 세부 사항을 제공 할 수있는 민감한 방법이며 고 처리량 방법에 대해 쉽게 확장 할 수 있습니다. 저조한 특성화 된 당단백질과 낮은 풍부하고 매우 복잡한 혼합물의 경우, 질량 분광법의 이점이 남아있을 수 있습니다. 그러나, CGE-LIF 기반 N-글리칸 분석에 의해 제공되는 고분해능 및 고감도 mAb 분석은 이 방법을 시험하기 위한 이론적 근거가 된다. 또한, 샘플 준비 및 분석은 단 몇 시간 만에 완료됩니다30. 최근 연구에 따르면 CGE-LIF는 인간 혈장31, 마우스 32 및 CHOIgGs 33에서 유래 된 글리 칸을 모니터링하는 데 사용될 수 있습니다. 이 연구는 높은 처리량의 샘플 분석 및 작은 샘플 부피에 CGE-LIF의 사용을 강조합니다.
CGE-LIF 방법에는 고려해야 할 제한 사항이 있습니다. 비용은 글리칸 분석을 위해이 장치 및 다른 장치의 사용에 대한 중요한 장벽입니다. 그러나, 이러한 비용은 현장 내에서 전형적이며, CGE-LIF는 비용 효율적인 옵션(34)으로 생각된다. 예산이 적은 실험실은 기계를 임대하거나 샘플 분석을 아웃소싱하는 것이 더 실용적일 수 있습니다. 분석 방법의 또 다른 고려 사항은 반복성입니다. CGE-LIF의 평가는 상이한 날에 검정되었던 동일한 샘플의 48개의 반복실험을 사용하여 수행되었다. 모세관 당 상대적 표준 편차는 배치내 및 인터배치 반복성에 대해 결정되었다. 반복실험의 배치내 비교는 6.2%의 상대적 표준 편차를 갖는 것으로 나타났으며, 이는 모세관 성능이 균일하지 않음을 나타낸다. 또한, 인터배치 데이터의 비교는 15.8%31의 상대적 표준 편차를 나타내었으며, 이는 모세관 성능이 시간에 따라 변화함을 나타낸다. 확인 된 운영 단점은 다른 기계 및 독점 시약을 사용하는 현재 연구에는 적용되지 않을 수 있습니다. 사용자가 사내 프로토콜을 개발하려는 경우 Ruhaak et al.의 연구를 고려할 가치가 있습니다. 도 31을 참조하면, CGE-LIF에 대한 시약을 신중하게 평가하였다. 이와 같이, 시료 주입을 위한 시약 (Hi-Di Formamide 및 DMSO), 글리칸 라벨링 (NaBH3CN또는 2-피콜린 보란)31, 및 다른 것들이 최적화되었다.
이 연구는 직접 RNAi의 신속성과 다운스트림 글리코믹 분석을 결합한 시간 효율적인 당공학 프로토콜을 제시합니다. 상기 방법론은 상기 요약된 이유들 때문에 Fut8 유전자를 표적으로 사용하여 예시된다.

<table><tbody><tr><td>32 캐럿 소프트웨어</td>: <td>SCIEX</td><td>연락처 제조업체</td><td>: 고속 글라이칸 분석 프로토콜 및 분리 방법을 사용한 글라이칸 데이터 수집 및 분석을 위한 소프트웨어입니다.</td></tr><tr><td>아세토니트릴, HPLC 등급</td><td>시그마 알드리치</td><td>34851</td><td>용매.</td></tr><tr><td>Anti-FUT8 항체</td><td>AbCam</td><td>ab198741</td><td>Fut8에 대한 토끼 다클론성. 이 항체를 사용하여 Fut8 단백질 발현을 정량화합니다. 다른 유전자를 표적으로 하는 siRNA를 사용하는 경우 이 항체를 교체하십시오.</td></tr><tr><td>항-GAPDH 항체</td><td>AbCam</td><td>ab181602</td><td>토끼 단클론 to GAPDH. 대안적인 하우스키핑 유전자가 존재하며 사용자가 선호할 수 있습니다.</td></tr><tr><td>BioDrop 분광 광도계</td><td>Biochrom</td><td>80 3006 55</td><td>단백질 농도를 정량화하는 데 사용되는 기기.</td></tr><tr><td>BLItz</td><td>ForteBio</td><td>45 5000</td><td>기기. 무표지 단백질 분석 시스템.</td></tr><tr><td>BRAND 혈구계</td><td>Sigma Alrich</td><td>BR717810</td><td>카운팅 챔버 장치</td></tr><tr><td>모세관 카트리지</td><td>SCIEX</td><td>A55625</td><td>창이 있는 사전 조립된 모세관 카트리지 (총 길이 30cm, 375 &마이크로; M 외경 (OD), x 50 & 마이크로; m 내경(I.D).</td></tr><tr><td>C100HT 글라이칸 분석&mdash; 모세관 전기영동</td><td>SCIEX</td><td>접촉 제조업체</td><td>모세관 젤 전기영동 기기인 CESI 8000 Plus 기기가 현재 사용됩니다.</td></tr><tr><td>CD CHO 배지</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>10743029</td><td>이를 선택한 세포주에 적합한 배양 배지로 교체하십시오.</td></tr><tr><td>원심분리기 튜브, 15 mL</td><td>Greiner Bio</td><td>188261</td><td>멸균 폴리프로필렌 튜브.</td></tr><tr><td>원심분리기 튜브, 50 mL</td><td>Greiner Bio</td><td>227270</td><td>멸균 폴리프로필렌 튜브.</td></tr><tr><td>CHO IgG</td><td>MedImmune</td><td>Gift</td><td>IgG 단일클론항체(CHO T127)를 발현하는 중국 햄스터 난소 세포. GS 시스템을 사용하여 생성되었습니다.</td></tr><tr><td>Dulbecco의 인산염 완충 식염수(DPBS)</td><td>Gibco</td><td>14190144</td><td>칼슘이나 마그네슘이 없는 PBS 1개입니다.</td></tr><tr><td>벤트 캡이 있는 Erlenmeyer 플라스크, 125 mL</td><td>Corning</td><td>431143</td><td>이를 선택한 세포주를 성장시키는 데 적합한 배양 용기로 교체하십시오.</td></tr><tr><td>벤트 캡이 있는 Erlenmeyer 플라스크, 250 mL</td><td>Corning</td><td>431144</td><td>이를 선택한 세포주를 성장시키는 데 적합한 배양 용기로 교체하십시오.</td></tr><tr><td>빠른 글라이칸 라벨링 및 분석 키트</td><td>SCIEX</td><td>는 B94499PTO</td><td>APTS로 N-글라이칸을 라벨링한 다음 마그네틱 비드 기반 클린업 시스템을 사용하여 과도한 APTS를 제거합니다.</td></tr><tr><td>Fut8 DsiRNA</td><td>IDT</td><td>맞춤형</td><td>설계 DsiRNA 타겟팅 Fut8.</td></tr><tr><td>Gene Pulser 큐벳, 0.4cm</td><td>Bio-Rad</td><td>1652088</td><td>Electroporation 큐벳.</td></tr><tr><td>유전자 펄서 Xcell 진핵 생물 시스템</td><td>Bio-Rad</td><td>165 2661</td><td>Insturment. CE(Capacitance Extender) Mocdule 및 ShockPod가 있는 Xcell 본체.</td></tr><tr><td>Immobilon-FL PVDF&nbsp; 멤브레인</td><td>Merck-Millipore</td><td>IPFL00010</td><td>Immunoblot 전달 멤브레인, 낮은 배경.</td></tr><tr><td>L-메티오닌 설폭시민(MSX)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>M5379</td><td>글루타민 합성효소(GS) 선별 시스템을 사용하는 CHO 세포주에만 필요합니다.</td></tr><tr><td>Kimwipes</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>10623111</td><td>보푸라기가 적고 흡수성이 높으며 화학적으로 불활성인 물티슈입니다.</td></tr><tr><td>M-PER 포유류 단백질 추출 시약</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>78505</td><td>RIPA와 같은 대체 용해 완충액도 적합합니다.</td></tr><tr><td>메탄올, HPLC 등급</td><td>Fisher Scientific</td><td>10365710</td><td>용매.</td></tr><tr><td>마이크로 원심분리기 튜브, 1.5 mL</td><td>Eppendorf</td><td>616201</td><td>오토클레이브 튜브.</td></tr><tr><td>Mini-PROTEAN Tetra 수직 전기영동 셀 시스템</td><td>Bio-Rad</td><td>1658035FC</td><td>기기. 4-겔 용량, 1.0mm 두께의 핸드캐스트 젤용, 미니 트랜스 블롯 모듈 및 PowerPac HC 전원 공급 장치 포함.</td></tr><tr><td>NC-Slide A8</td><td>ChemoMetec</td><td>942 0003</td><td>NucleoCounter NC 250과 함께 사용할 수 있는 8-챔버 슬라이드.</td></tr><tr><td>음성 대조군 DsiRNA, 5 nmol</td><td>IDT</td><td>51 01 14 04</td><td>비표적 DsiRNA.</td></tr><tr><td>뉴클레아제가 없는 이중 완충액</td><td>IDT</td><td>11-01-03-01</td><td>DsiRNA에 대한 재구성 완충액.</td></tr><tr><td>NucleoCounter NC-250</td><td>Chemometec</td><td>연락처 제조업체</td><td>기기. 자동 세포 분석기</td></tr><tr><td>Page-Ruler ladder, 10 - 180 kDa</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>26616</td><td>SDS PAGE 및 웨스턴 블로팅을 위한 혼합 청색, 주황색 및 녹색 단백질 표준물질.</td></tr><tr><td>PCR 튜브</td>: <td>Greiner Bio</td><td>608281</td><td>DsiRNA 알리쿠트 및 글라이칸 준비를 위한 오토클레이브 튜브.</td></tr><tr><td>피펫 필터 팁 살균&nbsp; (10, 200, 1000 &마이크로; L)</td><td>Gibson</td><td>F171203, F171503 F171703</td><td>RNA 오염을 방지하기 위한 멸균 필터 팁.</td></tr><tr><td>PNGase F 효소</td><td>New England Biolabs</td><td>P0704S</td><td>당단백질에서 글리칸의 효소 절단.</td></tr><tr><td>폴리프로필렌 컬럼, 중력</td><td>흐름 크로마토그래피용</td> 1mL <td>Qiagen</td><td>34924</td> 컬럼.</tr><tr><td>프로테아제 억제제 칵테일</td><td>시그마 Aldrich</td><td>P8340</td><td>세린, 시스테인, 아스파르트 프로테아제 및 아미노펩티다아제의 억제</td></tr><tr><td>단백질-A 아가로스 비드</td><td>Merck-Millipore</td><td>16 125</td><td>인간, 마우스 및 토끼 면역 글로불린의 정제용.</td></tr><tr><td>Protein-A 바이오센서</td><td>ForteBio</td><td>18 5010</td><td>팁은 신속한 항체 정량을 위해 단백질 A와 함께 기능화되었습니다.</td></tr><tr><td>RNaseZap</td><td>Invitrogen</td><td>AM9780</td><td>은 RNAse 오염을 제거합니다.</td></tr><tr><td>시료 희석제</td><td>ForteBio</td><td>18 1104</td><td>Activate Protein A tips.</td></tr><tr><td>혈청학적 피펫(5, 10, 25mL)</td><td>Corning</td><td>4487, 4488, 4489</td><td>멸균 세포 배양 기술에 사용됩니다.</td></tr><tr>THF <td>시그마 알드리치</td><td>296813</td><td>환원제</td><td>에 1M 시아노보로하이드라이드 나트륨 용액</td>.</tr><tr><td>솔루션 18</td><td>: ChemoMetec</td><td>910-3018</td><td>: 아크리딘 오렌지 (AO) 및 4',6-diamidino-2- 페닐 린돌 (DAPI)</td></tr> <tr><td>Spin-X 원심 분리기 튜브 필터</td><td>Corning</td><td>8161</td>을 함유 한 염색 시약<td>; 0.22 & 마이크로; m pore, 셀룰로오스 아세테이트 멤브레인.</td></tr><tr><td>뚜껑이 있는 서스펜션 플레이트, 6-well</td><td>Greiner Bio</td><td>657 185</td><td>현탁액 배양 성장을 위한 소수성 배양 플레이트.</td></tr><tr><td>주사기 필터,&nbsp; 0.22 &mu; m</td><td>Sartorius</td><td>514 7011</td><td>계면활성제 무함유 셀룰로오스 아세테이트(SFCA)</td></tr> <tr><td>루어 잠금 팁이 있는 주사기, 20mL</td><td>Fisher Scientific</td><td>10569215</td><td>주사기 필터와의 안전한 연결용.</td></tr><tr><td>Trypan Blue 솔루션</td><td>Gibco</td><td>15250061</td><td>죽거나 죽어가는 세포를 염색합니다.</td></tr><tr><td>Vivaspin 500, 3,000 MWCO</td><td>Sartorius</td><td>VS0191</td><td>폴리에테르설폰</td></tr><tr><td>WesternBreeze 발색 키트, 토끼 방지</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>WB7105</td><td>웨스턴 블롯 검출 키트, 대체 차단 완충액 및 항체 희석제는 온라인에서 제공되는 레시피를 사용하여 사용자가 만들 수 있습니다.</td></tr></tbody></table>

중국 햄스터 난소 세포의 신속한 항체 당공학

Rapid Antibody Glycoengineering in Chinese Hamster Ovary Cells

재조합 모노클로날 항체는 특정 분자 표적에 결합하고, 이어서, 면역 반응을 유도하거나 다른 리간드의 결합을 억제한다. 그러나, 모노클로날 항체 기능성 및 반감기는 숙주 특이적 글리코실화의 유형 및 분포에 의해 감소될 수 있다. 우수한 항체를 생산하려는 시도는 글리코 최적화 항체를 합성하는 유전자 변형 생산자 세포의 개발에 영감을 불어 넣었습니다. 당공학은 전형적으로 단백질 9-연관 단백질 9-클러스터링된 규칙적으로 간격이 짧은 팔린드로믹 반복(CRISPR)과 같은 방법을 사용하여 안정한 녹아웃 또는 녹인 세포주의 생성을 필요로 한다. 조작된 세포에 의해 생산된 모노클로날 항체는 원하는 글리코프로파일이 수득되었는지를 결정하기 위해 질량 분광법을 사용하여 특성화된다. 이 전략은 시간이 많이 걸리고 기술적으로 도전적이며 전문가가 필요합니다. 따라서, 유전 글리코엔지니어링 및 글리칸 검출을 위해 간소화된 프로토콜을 이용하는 대안적인 전략은 최적의 항체를 향한 노력을 도울 수 있다. 이 개념 증명 연구에서, IgG를 생산하는 중국 햄스터 난소 세포는 당공학을 최적화하는 이상적인 숙주로 작용했다. Fut8 유전자를 표적으로 하는 짧은 간섭 RNA를 중국 햄스터 난소 세포에 전달하고, 그 결과 FUT8 단백질 발현의 변화를 정량화하였다. 결과는 이 방법에 의한 녹다운이 효율적이었으며, FUT8의 ~60% 감소로 이어졌다는 것을 나타낸다. 항체 글리코프로파일의 상보적 분석은 신속하면서도 매우 민감한 기술, 즉 모세관 겔 전기영동 및 레이저-유도된 형광 검출을 사용하여 수행되었다. 모든 녹다운 실험은 아푸코실화 글리칸의 증가를 보여주었다; 그러나이 연구에서 달성 된 가장 큰 변화는 ~ 20 %였습니다. 이 프로토콜은 실리코 설계 도구, 상업적으로 합성된 유전자 표적화 시약 및 광범위한 사전 경험이 필요하지 않은 신속한 정량화 분석을 활용하여 당공학 노력을 단순화합니다. 따라서, 이 프로토콜에 의해 제공되는 시간 효율성은 새로운 유전자 표적에 대한 조사를 도울 수 있다.

웨스턴 블롯 분석은 세 개의 Fut8 DsiRNA 구축물의 혼합물로 형질감염된 세포에서 감소된 FUT8 단백질 발현을 나타냈다. 비표적화 DsiRNA로 형질감염된 대조군 샘플에서, FUT8은 ∼65 및 70 kDa에서 이중 밴드로서 나타났다. FUT8의 예측된 분자량이 66 kDa이기 때문에, 더 낮은 분자량 밴드의 신호 강도의 감소는 유전자 침묵을 나타낸다. 유전자 침묵을 확인하고 정량하기 위해, FUT8 단백질의 수준을 상대적인 GAPDH 단백질 수준으로 정규화하였다. 웨스턴 블롯 분석은 ~37 및 35 kDa에서 GAPDH에 대한 두 개의 밴드를 검출하였다. 더 높은 분자량 밴드는 예측된 단백질 크기에 상응하고, 따라서, 정규화 계산에 사용된다. GAPDH 단백질 수준에 대해 정규화하였을 때, FUT8 단백질 발현은 최대 60%까지 감소하였다(도 1).
형질감염 후 48 h에서의 유전자 녹다운의 관찰에 따라, 상응하는 mAb 샘플을 CGE-LIF에 의한 분석을 위해 처리하였다. 녹다운 세포로부터의 글리칸 구조는 푸코실화의 감소를 나타냈다. 이러한 경향은 아갈락토실화 구조 (G0F)에서 가장 두드러졌으며 갈락토실화 구조 (G1F, G1F' 및 G2F)에서 덜 관찰되었다. 이 데이터세트로부터, 총 IgG 코어 푸코실화는 음성 대조군 조건에 대해 관찰된 코어 푸코실화로부터 ∼95%로 감소하여 ~75%로 감소하였다(도 2). 코어 푸코실화의 더 큰 감소는 FUT8 단백질 수준의 ~60% 감소를 고려할 때 예상되었다. 반성시, 글리코프로파일은 형질감염 이후 48 h의 기간에 걸쳐 축적된 글리코실화된 mAbs를 나타내는 반면, 유전자 침묵은 수확시에만 존재하는 단백질 수준을 나타낸다는 것이 주목할 만하다.
이 녹다운 방법에 대한 추가 조사는 DsiRNA 농도, 수확 시간 및 전기 천공 조건을 변화시키는 것과 관련이 있습니다. 각 요인은 관련성을 결정하기 위해 개별적으로 조사되었습니다. 전기 천공 펄스 조건이 코어 푸코실화 및 세포 생존력에 미치는 영향은 실험 B, C, D 및 E에서 포착됩니다. 이러한 결과는 세포 생존율에 큰 차이 없이 단일 구형파 펄스(실험 B)에 비해 2개의 구형파 펄스(실험 C)를 사용한 전기천공으로부터 코어 푸코실화의 2배 감소를 입증한다(표 2). 전기천공 조건 e3(실험 D)는 이 시점에서 가장 낮은 세포 생존율(∼90%) 및 IgG 수율을 가져왔다. 그러나, 전기천공 사건에서 살아남은 세포는 코어 푸코실화의 ∼10% 감소에 의해 입증된 바와 같이 적당히 형질감염되었다(표 2). 흥미롭게도, 실험 D는 코어 푸코실화의 가장 큰 감소 (14.7 %)를 제공하는 전기 천공 조건을 사용했지만 세포 생존력 (91 % -93 % 생존력)에 분명히 해로웠다. 이러한 제한된 실험 세트는 돌이킬 수 없는 손상을 일으키지 않으면서 세포막의 충분한 투과를 가능하게 하는 전기천공 설정을 결정할 필요성을 보여준다. 코어 fucosylation에서 siRNA 농도 및 수확 시간의 역할을 주목하는 것도 흥미 롭습니다. 전반적으로, siRNA 농도의 증가는 수확 시간을 증가시키는 것보다 코어 푸코실화에 더 큰 영향을 미친다(실험 B, F, G 대 실험 A, B, H). 앞으로의 실험에서, 전기천공법 e2에 의해 전달된 siRNA 농도를 적정하는 것은 흥미로울 것이다.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/63872/63872fig01.jpg"> 그림 1. 실험 순서도. 글리코엔지니어링 및 샘플 분석 단계는 각 단계에 필요한 관련 시간과 함께 묘사된다. SiRNA 설계는 유전자 표적 당 유전자 표적 또는 구축물의 수에 따라 몇 시간이 소요된다. siRNA로 CHO 세포 형질감염은 몇 시간 내에 완료되고, 형질전환된 세포는 48시간 동안 성장하도록 방치된다. 세포 펠릿 및 상청액은 몇 시간 내에 수확된다. 세포 펠릿은 용해되고, 세포내 단백질은 SDS PAGE 상에서 분리되고, 이어서 표적 유전자에 대한 항체로 블롯팅되고 프로브된다. 글리칸은 정제된 항체로부터 절단되고 CGE-LIF에 의해 분석된다. 이들 분석은 각각 1일을 필요로 할 수 있다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/63872/63872fig01large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/63872/63872fig02.jpg"> 그림 2. RNA 간섭의 확인. Fut8 또는 비표적화 대조군 DsiRNA로 처리된 샘플에서 α-1,6-푸코실트랜스퍼라제(FUT8) 단백질 수준의 웨스턴 블롯 검출. FUT8에 해당하는 밴드는 Fut8 녹다운 샘플보다 제어력이 더 강합니다. GAPDH 단백질 수준은 또한 표적 유전자 발현을 정상화하기 위해 평가되었다. 모든 샘플을 실험 G로부터 취하였다(표 2 참조). Kotidis et al.에서 재인쇄되었습니다. 52. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/63872/63872fig02large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/63872/63872fig3v2.jpg"> 그림 3. 48 h에서의 누적 IgG 글리코실화에 대한 Fut8 녹다운의 효과. 글리칸 분포의 변화는 녹다운 샘플에서 검출된다. 특히, 주요 코어-푸코실화 구조 (G0F)의 상대적 풍부도는 감소되는 반면, 아푸코실화된 종은 녹다운 실험에서 증가한다. 측정은 실험 G 샘플로부터 수행되었다(표 2 참조). 각 실험에 대해 수행된 생물학적 삼중항은 하류 분석의 부담을 줄이기 위해 수확 후에 혼합되었다. Kotidis et al.에서 재인쇄되었습니다. 52. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/63872/63872fig3v2large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody><tr><td colspan="3">실험 이름</td>
			<td colspan="2">전기천공법</td>
			<td colspan="2">DsiRNA 농도 (nΜ)</td>
			<td>수확 시간(h)</td>
			<td>생존율(%)</td>
			<td colspan="2">Xv (106 세포·mL-1)</td>
			<td>IgG 역가 (mg· L-1)</td>
			<td colspan="2">코어-푸코실화의 차이(%)</td>
		</tr><tr><td colspan="3">ExpA_Negative</td>
			<td colspan="2">e1</td>
			<td colspan="2">500</td>
			<td>24</td>
			<td>98.3</td>
			<td colspan="2">4.71</td>
			<td>122.5</td>
			<td colspan="2">-</td>
		</tr><tr><td colspan="3">ExpA_Knockdown</td>
			<td colspan="2">e1</td>
			<td colspan="2">500</td>
			<td>24</td>
			<td>98.3</td>
			<td colspan="2">4.9</td>
			<td>110.3</td>
			<td colspan="2">4.08</td>
		</tr><tr><td colspan="3">ExpB_Negative</td>
			<td colspan="2">e1</td>
			<td colspan="2">500</td>
			<td>48</td>
			<td>95.6</td>
			<td colspan="2">9.55</td>
			<td>453.3</td>
			<td colspan="2">-</td>
		</tr><tr><td colspan="3">ExpB_Knockdown</td>
			<td colspan="2">e1</td>
			<td colspan="2">500</td>
			<td>48</td>
			<td>96.7</td>
			<td colspan="2">9.61</td>
			<td>469</td>
			<td colspan="2">5.38</td>
		</tr><tr><td colspan="3">ExpC_Negative</td>
			<td colspan="2">e2</td>
			<td colspan="2">500</td>
			<td>48</td>
			<td>96.3</td>
			<td colspan="2">9.91</td>
			<td>449.3</td>
			<td colspan="2">-</td>
		</tr><tr><td colspan="3">ExpC_Knockdown</td>
			<td colspan="2">e2</td>
			<td colspan="2">500</td>
			<td>48</td>
			<td>96.7</td>
			<td colspan="2">11</td>
			<td>454.6</td>
			<td colspan="2">11.42</td>
		</tr><tr><td colspan="3">ExpD_Negative</td>
			<td colspan="2">e3</td>
			<td colspan="2">500</td>
			<td>48</td>
			<td>90.6</td>
			<td colspan="2">6.25</td>
			<td>318.5</td>
			<td colspan="2">-</td>
		</tr><tr><td colspan="3">ExpD_Knockdown</td>
			<td colspan="2">e3</td>
			<td colspan="2">500</td>
			<td>48</td>
			<td>89.1</td>
			<td colspan="2">6.09</td>
			<td>311.85</td>
			<td colspan="2">9.71</td>
		</tr><tr><td colspan="3">ExpE_Negative</td>
			<td colspan="2">e4</td>
			<td colspan="2">500</td>
			<td>48</td>
			<td>91.1</td>
			<td colspan="2">7.2</td>
			<td>380.3</td>
			<td colspan="2">-</td>
		</tr><tr><td colspan="3">ExpE_Knockdown</td>
			<td colspan="2">e4</td>
			<td colspan="2">500</td>
			<td>48</td>
			<td>93.3</td>
			<td colspan="2">7.79</td>
			<td>422.8</td>
			<td colspan="2">14.7</td>
		</tr><tr><td colspan="3">ExpF_Negative</td>
			<td colspan="2">e1</td>
			<td colspan="2">750</td>
			<td>48</td>
			<td>96.2</td>
			<td colspan="2">9.7</td>
			<td>501</td>
			<td colspan="2">-</td>
		</tr><tr><td colspan="3">ExpF_Knockdown</td>
			<td colspan="2">e1</td>
			<td colspan="2">750</td>
			<td>48</td>
			<td>95.7</td>
			<td colspan="2">9.76</td>
			<td>504.6</td>
			<td colspan="2">9.9</td>
		</tr><tr><td colspan="3">ExpG_Negative</td>
			<td colspan="2">e1</td>
			<td colspan="2">1000</td>
			<td>48</td>
			<td>96.1</td>
			<td colspan="2">11.1</td>
			<td>422.6</td>
			<td colspan="2">-</td>
		</tr><tr><td colspan="3">ExpG_Knockdown</td>
			<td colspan="2">e1</td>
			<td colspan="2">1000</td>
			<td>48</td>
			<td>95.9</td>
			<td colspan="2">9.73</td>
			<td>499.3</td>
			<td colspan="2">17.26</td>
		</tr><tr><td colspan="3">ExpH_Negative</td>
			<td colspan="2">e1</td>
			<td colspan="2">500</td>
			<td>72</td>
			<td>94.4</td>
			<td colspan="2">14.3</td>
			<td>925.8</td>
			<td colspan="2">-</td>
		</tr><tr><td colspan="3">ExpH_Knockdown</td>
			<td colspan="2">e1</td>
			<td colspan="2">500</td>
			<td>72</td>
			<td>95</td>
			<td colspan="2">13.5</td>
			<td>1018.4</td>
			<td colspan="2">7.37</td>
		</tr></tbody></table>표 2. 트랜스펙션 최적화. 전기천공법, DsiRNA 농도 및 수확 시간의 반복적인 변형은 세포 생존력, 생존 가능한 세포 밀도, 수확 시간에서의 IgG 역가, 및 코어 푸코실화의 차이의 변화를 가져왔다. 각 실험은 넉다운과 각각의 음성 대조군을 비교하여 변형이 원하는 효과(즉, 푸코실화의 감소)를 생성하는지 여부를 결정하였다. 전기천공 설정은 다음과 같았다: e1: 1200 V, 0.1 ms, 정사각형 파형; e2: 1200 V, 2x 0.1 ms, 펄스 간 5 s, 구형 파형; e3: 150V, 20ms, 정사각형 파형; e4: 250V, 500μF, 지수 감쇠. Kotidis et al.에서 재인쇄되었습니다. 52년.

항체의 글리코실화 패턴은 그의 임상 성능을 결정하고, 따라서 글리코실화를 조절하기 위한 산업적 및 학문적 노력이 지속된다. 전형적인 글리코엔지니어링 캠페인은 시간과 노동 집약적이기 때문에, 일시적 침묵을 사용하여 글리코실화 유전자의 영향을 특성화하는 신속한 프로토콜의 생성은 유용할 것이다.

Recombinant monoclonal antibodies bind specific molecular targets and, subsequently, induce an immune response or inhibit the binding of other ligands. ...

이 프로토콜은 표적 단백질의 글리코-프로파일에 대한 다중 글리코실화 효소의 효과를 스크리닝하고 효소의 기능성에 대한 더 나은 이해에 기여하는데 이용될 수 있다. 프로토콜의 본질은 일시적이면서도 높은 처리량 방식으로 글리코실화 효소의 스크리닝을 허용한다. 변경된 글리코실화 프로파일은 개선된 항체 활성을 유도할 수 있고, 따라서 최종 생성물의 효능을 증가시킬 수 있다.바이오 제약 회사는 중요한 품질 특성으로 글리코실화를 면밀히 모니터링합니다. 비정상적인 글리코실화는 암과 같은 질병의 특징입니다. 따라서이 방법은 약리학 및 생물 의학 연구와 관련이 있습니다.이 프로토콜은 사용자가 포유동물 세포 형질감염 및 웨스턴 블로트를 포함한 여러 실험 기술에 대한 경험이 있다고 가정합니다. 더 적은 수의 샘플로 시작하고 첫 번째 인스턴스에서 중지 지점을 사용하는 것이 좋습니다. 중국 햄스터 난소 세포의 밀도와 생존력을 평가하여 시작하십시오.그런 다음 오염을 피하기 위해 70 % 에탄올과 RNase 억제제 용액으로 생물 안전 캐비닛 및 모든 장비를 조심스럽게 청소하십시오. 다음에, 세포를 5분 동안 100배 G에서 펠릿화하고, 밀리리터당 여섯 개의 세포에 다섯 배의 세포 밀도로 미리 가온된 배지에서 10배로 재현탁시킨다. 여덟 마이크로리터의 DsiRNA 마스터 믹스 또는 대조군을 멸균 전기천공 큐벳으로 옮깁니다.800 마이크로리터의 셀 현탁액을 동일한 큐벳에 첨가하고, 혼합하고, 전기천공 펄스를 전달한다. 그런 다음 큐벳에서 여섯 웰 플레이트의 한 웰로 셀 현탁액을 옮겨 거품과 같은 물질을 피하십시오. 세포를 진탕 없이 10분 동안 인큐베이션한다.인큐베이션 후, 800 마이크로 리터의 미리 데운 배지를 첨가하여 웰 당 1.6 밀리리터의 최종 부피를 만드십시오. 형질감염된 세포를 150 RPM에서 진탕하면서 인큐베이터에서 성장시킨다. 48시간 후, 상청액과 세포를 수확한다.IgG 정제 후, 용출 A를 3-킬로달톤 분자량 컷오프 원심 농축기 상에 첨가하고, 섭씨 4도에서 40 내지 50분 동안 13, 300배 G에서 원심분리한다. 원심분리는 잔류 부피가 50 마이크로리터 이하이면 완료된다. 유동을 버리고 500 마이크로리터의 미리 냉각된 1X PBS를 첨가하여 잔류 상청액을 희석한다.50 마이크로리터의 잔류 상청액이 남아있을 때까지 동일한 조건을 사용하여 샘플을 다시 원심분리한다. 상청액의 100X 희석액을 얻기 위해, 500 마이크로리터의 미리 냉각된 1X PBS를 첨가하고, 원심분리 과정을 반복한다. 글리칸 분석 방법과의 호환성을 보장하기 위해 상청액을 40 마이크로리터의 리터 당 약 2.5 그램의 최종 농도로 농축하십시오.글리칸 분석을 위해, 200 마이크로리터의 자성 비드 용액을 2밀리리터 PCR 튜브로 옮긴다. 마그네틱 스탠드 위에 올려 놓고 상층액에서 비드를 분리하고 상층액을 조심스럽게 제거하십시오. 그런 다음 자석 스탠드에서 튜브를 제거하고 정제 된 단백질 샘플 및 볼텍스를 추가하십시오.다음으로, 공급 변성 완충액을 샘플 튜브에 첨가하고, 섭씨 60도에서 8분 동안 인큐베이션한다. 최적의 반응 성능을 위해 시료 튜브를 열어 두십시오. 인큐베이션 후, PNGase F를 첨가하고, 정제된 항체로부터 글리칸을 절단하기 위해 섭씨 60도에서 또 다른 20분 동안 인큐베이션한다.N- 글리 칸의 방출 후, 샘플 튜브와 소용돌이를 닫으십시오. 이어서, 샘플 튜브에 아세토니트릴을 첨가하고, 볼텍스하고, 실온에서 일분 동안 인큐베이션한다. 샘플 튜브를 자기 스탠드에 배치하여 용액으로부터 비드를 분리한다.그런 다음, 피펫을 사용하여, 비드를 만지지 않고 조심스럽게 상청액을 제거한다. 형광단 함유 글리칸 표지 용액을 흄 후드에서 샘플에 첨가하고 볼텍싱하여 혼합한다. 뚜껑을 열어 섭씨 60도에서 20분간 인큐베이션한 후, 샘플을 아세토니트릴로 세 번 세척하여 과량의 염료를 제거하였다.이어서, 표지된 글리칸을 이중 증류수에서 용출시킨다. 샘플 튜브를 자기 스탠드에 놓고 정제되고 표지된 글리칸으로 농축된 상청액을 수집한다. 그런 다음 필요한 모든 표준과 샘플을 준비하고 지정된 트레이 위치에로드하십시오.글리칸 분석 프로토콜을 실행하고 적절한 소프트웨어를 사용하여 샘플에 존재하는 글리칸을 분석하고 식별합니다. 웨스턴 블롯 분석은 세 개의 Fut8 DsiRNA 구축물의 혼합물로 형질감염된 세포에서 감소된 Fut8 단백질 발현을 보여주었다. 녹다운 세포로부터의 글리칸 구조 또한 감소된 푸코실화를 나타냈다.이러한 경향은 아갈락토실화 구조에서 가장 뚜렷하게 나타났으며, 갈락토실화 구조에서 더 적은 정도로 관찰되었다. 코어 푸코실화의 두 배 감소는 세포 생존력에 큰 차이 없이 단일 구형파 펄스와 비교하여 두 개의 구형파 펄스를 사용한 전기천공으로부터 관찰되었다. 전반적으로, 짧은 간섭 RNA 농도를 증가시키는 것은 수확 시간을 증가시키는 것보다 코어 fucosylation에 큰 간섭을 갖는다.물과 아세토니트릴 사이의 비율은 글리칸이 용액 또는 비드의 일부에 있는지 여부를 결정합니다. 이는 용액에서 라벨이 붙은 글리칸을 우발적으로 제거하지 않도록 세척 단계에서 기억하는 것이 중요합니다. 후속 실험은 항체 의존성 세포 매개 세포독성 및 보체 의존성 세포독성을 정량화하기 위해 세포 기반 분석을 사용하여 정제된 모노클로날 항체의 특성화를 수반할 수 있다.

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Research

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