Een abonnement op JoVE is vereist om deze inhoud te bekijken. Log in of start vandaag met uw gratis proefperiode.

Methodenartikel

Knaagdier stereotaxische Chirurgie en Dierenwelzijn Outcome Verbeteringen voor Behavioral Neuroscience

39.5K weergaven

⸱

DOI:

10.3791/3528

⸱

30 januari 2012

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 

In dit artikel

Samenvatting

Stereotaxische operatie aan knaagdieren zorgt voor doelgerichte toediening van geneesmiddelen of elektrische stimulatie en opnamen in wakker gedragen dieren. In deze video presentatie zullen we zien de laatste procedurele verfijningen aan deze langdurige procedure die met succes een verbeterde overleving en verminderde post-operatieve gewichtsverlies.

Samenvatting

Stereotaxische chirurgie voor de implantatie van canules in specifieke gebieden van de hersenen is al vele decennia lang een zeer succesvolle experimentele techniek om de effecten van lokaal gemanipuleerd neurotransmitter en signaalwegen in wakker, gedragen dieren te onderzoeken. Bovendien heeft de stereotaxische implantatie van elektroden voor elektrofysiologische stimulatie en het opnemen van studies geweest voor ons huidige begrip van neuroplasticiteit en de hersenen netwerken in gedragen dieren. Steeds toenemende kennis over het optimaliseren van chirurgische technieken bij knaagdieren 1-4, voorlichting te geven over het welzijn van dieren en strenge wetgeving (bijvoorbeeld de 2010 EU-richtlijn over het gebruik van proefdieren 5) voor ons aanleiding om deze chirurgische procedures te verfijnen, met name wat betreft de uitvoering van nieuwe procedures voor toedienen van zuurstof en de continue bewaking van bloedoxygenatie en de hartslag niveaus tijdens de operatie alsde invoering van een gestandaardiseerd protocol voor post-operatieve zorg. Onze waarnemingen wijzen erop dat deze wijzigingen geresulteerd in een verhoogde overleving en een verbetering van de algemene conditie van de dieren na de operatie (bijv. minder gewichtsverlies en een meer actieve dier). Deze video presentatie zal geven van de algemene procedures die betrokken zijn bij dit type van stereotaxische chirurgie met speciale aandacht voor onze verschillende wijzigingen. We zullen illustreren deze chirurgische ingrepen bij ratten, maar het is ook mogelijk om dit type van chirurgie uit te voeren in muizen of andere kleine proefdieren met behulp van speciale adapters voor de stereotaxische apparaat 6.

Protocol

Let op: Antiseptische technieken moeten worden gebruikt tijdens de gehele procedure. Alle instrumenten en materialen (katoen-tip wattenstaafjes, gaas, etc.) die gebruikt zullen worden tijdens de operatie moet worden gesteriliseerd door autoclaveren. Een chirurgisch masker, haar muts en steriele handschoenen worden gedragen. Het werkgebied en de stereotaxische apparaat moet grondig worden gereinigd en ontsmet met een 70% ethanol-oplossing.

1. Pre-chirurgische procedures

  1. Stel de stereotaxische apparatuur en alle benodigde materialen. Pre-warm de verwarming pad.
  2. Plaats de canule in haar steun en controleer of het recht.
  3. Zet het gas systeem - mengsel van lucht en zuurstof (30-35% van de totale stroom moet worden zuurstof).
  4. Weeg de rat en het beheer van de verdoving. Wij maken gebruik van een mengsel van ketamine (37,5 mg / kg) en dexmedetomidine (0,25 mg / kg) subcutaan geïnjecteerd. Voor verschillende anesthesie-protocollen, zie Flecknell 4 en Hellebrekers et al.. 7.
  5. Na de rat verloor het bewustzijn, scheer het hoofd gebied gaande van de oren tot net tussen de ogen met een elektrisch scheerapparaat.
  6. Plaats de rat op de verwarming pad, met zijn neus in de voorkant van de luchtslang. Gebruik een oximeter om ervoor te zorgen dat de rat een adequaat bloedoxygenatie niveau (mag niet vallen <90%) heeft. Volg de instructies van de fabrikant voor een juist gebruik van apparatuur.
  7. Van toepassing oogcrème (Duratears Z, Alcon) aan beide hoornvliezen om uitdroging te voorkomen.
  8. Controleer of de rat reflexen (staart reflex of teen-snuifje reflex, zoals aangetoond in Walantus et al.. 8) om ervoor te zorgen dat deze adequaat verdoofd. Als de rat blijft een sterke reflexen, kan suppletie van de anesthesie nodig zijn.
  9. Als er geen toe-snuifje reflex wordt weergegeven, plaatst u de rat in de stereotaxische apparaat, past het oor bars, zodat het toont gelijk te lezen aan beide zijden, en plaats opnieuw de luchtslang in de voorkant van het dierdoor de vaststelling van het met de neus bar. Controleer nogmaals of de rat toont een bloedoxygenatie niveau van 90% of hoger. Zo niet, aanpassen of de slang, waardoor deze dichter bij de neus, of verhoging van de toevoer van zuurstof. Bewaken van de bloedoxygenatie niveau en de hartslag gedurende de operatie.
  10. Permanent toezicht op de rat temperatuur met een rectale thermometer (bij voorkeur aangesloten op een verwarmings-pad) en noteer de waarden aan het begin en einde van de operatie. Pas de verwarming pad of gebruik een deken om een ​​lichaamstemperatuur van 37,5 te behouden tot 38,5 ° C.

2. Chirurgie

  1. Injecteer de pijnstillende. We maken gebruik van een peri-operatieve toediening van carprofen (4.0-5.0 mg / kg, subcutaan). Voor verschillende pijnstillende protocollen, zie Hellebrekers et al.. 7.
  2. Reinig het geschoren gebied van thij de huid van het midden naar de haren omtrek drie keer met een desinfecterend middel (bijvoorbeeld chloorhexidine 0,5%) en lokaal een mengsel van lidocaïne (20 mg / ml) en adrenaline (5 mg / ml) geïnjecteerd voor de lokale verdoving en vasoconstrictie (om te voorkomen dat overmatig bloeden).
  3. Maak een anterior-posterior incisie van ongeveer 2,5 cm op de middellijn van de hoofdhuid, gaande van tussen de ogen tot aan de achterkant van de oren. Gebruik 4-6 bulldog klemmen om knijpen van de huid en om de incisie te openen. Verwijder eventuele bindweefsel met een spatel en / of wattenstaafjes en reinig het gebied om de schedel oppervlak bloot te leggen.
  4. Controleer of het hoofd niveau: Zoek eerst Lambda en plaats de gids canule precies over deze locatie, het aanraken van de schedel. Neem de dorso-ventrale coördineren. Plaats vervolgens de gids canule precies over Bregma, het aanraken van de schedel, en neem de dorso-ventrale coördineren. Deze twee coördinaten moeten identiek zijn. Als het verschil> 0,3 mm, pas de neus balk om dit te corrigeren.
  5. Make twee kleine gaten voor de vaststelling van de schedel schroeven met een gesteriliseerde handboor (een ongeveer 5 mm juist voor de canule locatie in een van de hemisferen en de andere 5 mm achter de canule locatie in de contralaterale hemisfeer). Plaats twee steriele schroeven in deze gaten tot ze stevig verankerd zijn, zonder te worden opgenomen volledig in de schedel.
  6. Met de gids canule geplaatst precies op Bregma, noteer de anterior-posterior en lateraal coördinaten. De juiste locatie van gids canule plaatsing voor elk gebied van de hersenen kan worden berekend door het optellen of aftrekken van Bregma, met behulp van een atlas stereotaxische 9-11.
  7. Plaats de gids canule in de juiste locatie, licht aanraken van de schedel. Neem de dorso-ventrale coördineren. Voor de bilaterale canule plaatsing, vinden naast de canule locatie in het andere halfrond, en opnieuw opnemen van de dorso-ventrale coördineren. Beide coördinaten moeten identiek zijn (of anders <0,3 mm).
  8. Markeer de canule locaties op de schedel met een steriele potlood en, met de hand boormeester, maken de braam gaten, het controleren van de grootte en de juiste locatie met behulp van de gids canule. Nadat de gaten zijn gemaakt, gebruik maken van een steriele naald voorzichtig punch de hersenvliezen te zorgen voor onbelemmerd inbrengen van de canule.
  9. Plaats de canule in het eerste gat en voorzichtig zakken totdat hij uiteindelijk terecht bij de ventrale coördineren. Bereid de tandheelkundig cement en royaal toe te passen rond de canule en een of twee schroeven in om de canule op te lossen. Wacht tot het cement volledig is opgedroogd. Daarna, verwijder voorzichtig de canule te ondersteunen door het draaien van de dorso-ventrale bar naar boven.
  10. Plaats de tweede canule in de steun en ga naar de canule locatie in het andere halfrond. Plaats de canule in het gat en herhaal de vorige stap. Bedek de schroeven en een groot oppervlak van de buisjes, met het cement, en voordat het cement droog is, het eventuele overschot verwijderen uit de huid.
  11. Injecteren warm (~ 37 ° C) steriele zoutoplossing (~ 10 ml / kg, sc) te rehydratie te verzekeren.
  12. Nadat het cement volledig is gedroogd, verwijdert u de canule te ondersteunen en plaats een steriele pin in elke canule om obstructie te voorkomen.
  13. Reinig de wond met een steriele zoutoplossing en hechtdraad de voor-en achterkant van de wond.
  14. Verwijder het dier uit de stereotaxische apparaat, het vervangen van de gas-buizen voor zijn neus. Blijf de zuurstofverzadiging niveau en de lichaamstemperatuur te controleren.
  15. Als een injecteerbaar anestheticum met dexmedetomidine wordt gebruikt, injecteren zijn antagonist atipamezol (0,25 mg / kg, sc) en wacht tot het dier wakker wordt (ongeveer 5 minuten).
  16. Zet de rat in een kooi herstel. Om te voorkomen dat onderkoeling, plaats de kooi in een incubator bij 28 ° C of op een verwarmingselement in een plek waar je kunt het dier acht te nemen voor ten minste een uur, voordat hij terugkeerde naar de vivarium kamer.

3. Post-operatieve zorg

  1. Gedurende de eerste 4 dagen na de operatie, toezicht op de rat het herstel door het houden van de dagelijkse administratie van het gewicht en de andere opmerkingen over de toestand van het dier in het laboratorium logboeken of "het welzijn van dieren dagboeken".
  2. Dieren die duidelijke tekenen van ziekte, infectie van de wond, verlies van lichaamsgewicht of andere tekenen van een verminderde welzijn moeten ondergaan speciale zorg geven: bijvoorbeeld een extra dosis pijnstillers tot post-operatieve pijn, een mengsel van poeder voedsel en water te minimaliseren Naast de standaard Chow van de rat de eetlust, en / of een subcutane injectie van zoutoplossing om rehydratie ondersteuning te stimuleren.
  3. Als de rat vertoont geen verbetering na deze ingrepen, of het verlies van lichaamsgewicht is> 15% (in vergelijking met pre-operatie gewicht), offeren het dier met een overdosis van verdoving (humane eindpunt).
  4. Ratten meestal moet gedurende ten minste 7 dagen te herstellen voor de aanvang van gedragsexperimenten.

4. Representatieve resultaten

jove_content "> Om te bepalen of de verschillende wijzigingen aan onze chirurgische procedure, in het bijzonder met betrekking tot toedienen van zuurstof en de continue monitoring van bloedoxygenatie niveaus, hartslag en lichaamstemperatuur, het dier overleven uitgebreid en verbeterd de algemene conditie na een operatie, vergeleken we de niet-overlevingspercentage van 20 cohorten van dieren (bestaande uit 20 ratten per stuk) die geopereerd nadat wij deze wijzigingen uitgevoerd met de niet-overlevingskans van 24 cohorten (20 ratten elk) bediend met het standaard protocol. Zoals weergegeven in figuur 1a , de niet-overleving was significant verminderd in de steekproef van de cohorten die werd bediend met de gewijzigde protocol (P <0,05; Mann-Whitney U test, twee tailed). Bovendien, zoals is weergegeven in figuur 1b, post-operatieve gewichtsverlies van ratten bediend met de gewijzigde protocol was ook significant verminderd in vergelijking met dat van ratten bediend met de standaard procedure (post-operatieve dag 1: P <0,05; post-operatieve dag 2: P <0.01; post-operatieve dag 3: P = 0,17; Student t-tests).

Figuur 1
Figuur 1. Effect van chirurgische wijzigingen op non-overleving en post-chirurgische gewichtsverlies. (A.) Niet-survival rate van ratten bediend met de gewijzigde protocol vergeleken met dat van ratten gebruikt met het standaard protocol. De niet-overleving (mediaan ± interkwartielafstand reeksen) werd berekend als het percentage van de ratten, per cohort van 20 ratten, die niet overleven chirurgie. * P <0,05, Mann-Whitney U test twee tailed (n = 20 cohorten voor de gewijzigde protocol en 24 cohorten voor de standaard-protocol). (B.) Gewichtsverlies (gemiddelde ± SEM als percentage van de pre-operatie gewicht) gedurende de eerste (Pod1), tweede (POD2) en derde (POD3) post-operatieve dag. * P <0,05, ** p <0,01, Student t-test (n = 60 per groep).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

Het belangrijkste doel van deze video presentatie is om gedrag neurowetenschappers vertrouwd te maken met de basisprincipes van stereotaxische chirurgie. Onderzoekers die al het uitvoeren van stereotaxische operatie kan ook profiteren van deze video en overwegen een deel van de procedurele verbeteringen voor gebruik in hun eigen laboratorium. Een steeds toenemende kennis over het optimaliseren van chirurgische technieken 1-3, de ontwikkeling van nieuwe anesthetica en analgetica voor gebruik in de humane en ve...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

De auteurs hebben niets te onthullen.

Dankbetuigingen

De auteurs danken dr. Peter Gerrits voor de tekeningen die in de video.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
Naam van het reagens Vennootschap
Alcohol 70% VWR
Antisedan (atipamezol) Orion
Atropinesulfaat 0,5 Pharmachemie BV
Bulldog hemostatische klem Aesculap
Canules Component Supply Co
Chloorhexidine 0,5% AppepPharma
Reiniging poeder Alconox
Katoen sticks Hartmann BV
Dexdomitor (dexmedetomidine) Orion
Boren Dremel 8000
Duratears Z Alcon
Durogrip Naaldvoerder converseren 130mm Aesculap
Durotip Fijne Schaar ret.sp / st 110 mm Aesculap
Gaas Medicomp (5x5)
Verwarming pad Harvard Apparatuur
Insect pins (stiletten) Entosphinx (Tsjechië)
Ketamine 10% (ketamine) Alfasan
Micro-Halsted rechte tip Aesculap-dierenarts
Molinea Hartmann BV
NaCl 0,9% Baxter
Naalden (25G) Terumo
Oximeter Edan Instruments, Inc
Pentobarbital Apotheek van het UMCG
Rimadyl Pfizer
Scalpel nr. 23 Swann Morton
Scalpelholder NR. 4 133 mm Aesculap
Schroevendraaier conventionele Hardware Store
Simplex Rapid (tandheelkundig cement) Kemdent
Schedel schroeven Component Supply Co
Spatel VWR
Spongestan speciale Johnson & Johnson
Stereotacts Kopf Instruments
Chirurgische tang 100mm Aesculap
Hechtmateriaal Safil 5 / 0 Aesculap
Spuit 10 ml Omnifix
Spuit 1 ml Terumo
Spuit 5ml Omnifix
Xylocaine (lidocaïne / adrenaline) Astra Zeneca

Referenties

  1. Russell, W. M. S., Burch, R. L. The Principles of Humane Experimental Technique. , Methuen, London. (1959).
  2. Richardson, C. A., Flecknell, P. A. Anaesthesia and post-operative analgesia following experimental surgery in laboratory rodents: are we making progress? Altern. Lab Anim. 33, 119-127 (2005).
  3. Stokes, E. L., Flecknell, P. A., Richardson, C. A. Reported analgesic and anaesthetic administration to rodents undergoing experimental surgical procedures. Lab Anim. 43, 149-154 (2009).
  4. Flecknell, P. A. Laboratory Animal Anaesthesia - A Practical Introduction for Research Workers and Technicians. , Academic Press. (2009).
  5. DIRECTIVE 2010/63/EU OF THE EUROPEAN PARLIAMENT AND OF THE COUNCIL of 22 September 2010 on the protection of animals used for scientific purposes. Official Journal of the European Union. , (2010).
  6. Geiger, B. M., Frank, L. E., Caldera-Siu, A. D., Pothos, E. N. Survivable Stereotaxic Surgery in Rodents. J. Vis. Exp. (20), e880-e880 (2008).
  7. Hellebrekers, L. J., Booij, L. H. D. J., Flecknell, P. A. Anaesthesia, analgesia and euthanasia. Principles of Laboratory Animal Science. Van Zutphen, L. F. M., Baumans, V., Beynen, A. C. , Elsevier Science B.V. 277-311 (2001).
  8. Walantus, W., Elias, L., Kriegstein, A. In utero intraventricular injection and electroporation of E16 rat embryos. J. Vis. Exp. (6), e236-e236 (2007).
  9. Paxinos, G., Watson, C. The Rat Brain in Stereotaxic Coordinates. , Academic Press. (1986).
  10. Paxinos, G., Watson, C. The Rat Brain in Stereotaxic Coordinates. , Academic Press/Elsevier. (2007).
  11. Swanson, L. W. Brain Maps: Structure of the Rat Brain. , Elsevier. (1992).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Meer artikelen verkennen

BloedoxygenatieHartslagmonitoringCannule-implantatiePostoperatieve zorgVerbetering van de overlevingskansStereotaxisch apparaatTemperatuurregulatie