Een abonnement op JoVE is vereist om deze inhoud te bekijken. Log in of start vandaag met uw gratis proefperiode.

Methodenartikel

Ex vivo kweken van Whole, Het ontwikkelen van Drosophila Brains

12.8K weergaven

⸱

DOI:

10.3791/4270

⸱

27 juli 2012

In dit artikel

Samenvatting

Dit artikel beschrijft een werkwijze waarbij men kunnen nabootsen In vivo Ontwikkeling van de Drosophila Paddestoel lichaam in een Ex vivo Cultuur-systeem.

Samenvatting

Wij beschrijven een werkwijze voor ex vivo kweken van Drosophila geheel hersenen. Dit kan gebruikt worden als een tegenhanger van chronische genetische manipulaties voor het onderzoeken van de celbiologie en de ontwikkeling van het centrum van hersenstructuren door toe te staan ​​acute farmacologische interventies en live beeldvorming van cellulaire processen. Als voorbeeld van de techniek vóór werken ons laboratorium 1 is gebleken dat een eerder opgenomen subcellulair compartiment ligt tussen het axonale en somatodendritisch compartimenten axonen van Drosophila centrale hersenen. De ontwikkeling van dit compartiment, aangeduid als axon eerste segment (AIS) 2 is getoond genetisch afhankelijk van de neuron-specifieke cycline afhankelijke kinase, Cdk5. We laten hier zien dat ex vivo behandeling van wild-type Drosophila larven hersenen met de Cdk5-specifieke farmacologische remmers roscovitine en olomoucine 3 acute veranderingen in het actine organisatie veroorzaakt, enin de lokalisatie van de cel-oppervlakte-eiwit Fasciclin 2, dat de veranderingen gezien in mutanten die Cdk5 activiteit missen genetisch na te bootsen.

Een tweede voorbeeld van de ex vivo cultuur techniek is bedoeld voor herinrichting van de aansluitingen van de embryonale paddestoel lichaam (MB) gamma-neuronen tijdens metamorfose van larve tot volwassen. De paddestoel lichaam is het centrum van olfactorische leren en geheugen in de vlieg 4, en deze gamma-neuronen hun axonale en dendritische takken te snoeien tijdens de pop ontwikkeling en vervolgens weer uit te breiden takken op een later tijdstip bepaald aan de volwassen innervatie patroon 5 vast te stellen. Snoeien van deze neuronen van de MB is aangetoond gebeuren door plaatselijke degeneratie van neurite takken 6, door een mechanisme dat wordt geactiveerd door ecdyson een steroid hormoon, die op de ecdyson receptor B1 7 en is afhankelijk van de activiteit van de ubiquitine-proteasoom-systeem 6. Onze methode van ex vivo kweken kan be gebruikt om verder te ondervragen het mechanisme van ontwikkeling remodeling. We hebben gevonden dat in de ex vivo cultuur instelling gamma neuronen van de MB het proces van ontwikkeling snoeien samengevat een tijdsverloop vergelijkbaar met die in vivo. Het was echter van essentieel belang om tot 1,5 uur na puparium vorming wachten voordat explanteren van het weefsel, zodat de cellen onherstelbaar te zetten voor metamorfose, dissectie van dieren bij het begin van de verpopping leidde tot weinig of geen metamorfose in cultuur. Zo, met de juiste modificatie, kan de ex vivo cultuur aanpak worden toegepast om te studeren dynamische en steady-state aspecten van de centrale hersenen biologie.

Protocol

A. Bereiding van de Media

  1. Bereid complete media door filter-gesteriliseerd Schneider Drosophila media waaraan 10% foetaal runderserum en 1% penicilline / streptomycine.
  2. De media moeten vers worden bereid per keer. Als alternatief kan een nieuwe hoeveelheid vooraf ingevroren media worden ontdooid voor elk gebruik.
  3. Voorafgaand aan kweken voeg 10 ug / ml insuline en 2 ug / ml ecdyson de media. Drugs werden bereid zoals geconcentreerde voorraden en ingevroren in kleine fracties. Ontdooide porties waren niet ingevroren.
  4. Alle werkoplossingen te handhaven op 25 ° C.

Het kweken van larven Brain....

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

Chronische genetische manipulaties van weefsel structuur en functie, met inbegrip van mutaties en de expressie van transgenen, meestal produceren een combinatie van directe effecten en late indirecte gevolgen dat kan heel moeilijk zijn te scheiden. Als aanvulling op genetische methoden met de farmacologie kan vergemakkelijken ondervraging van de tijd natuurlijk achter een fenotype. Zo is dit een krachtige aanpak voor het ontleden van de bijdragen van verschillende cytoskelet componenten tijdens de spermatogenese i.......

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

Geen belangenconflicten verklaard.

Dankbetuigingen

We willen alle leden van ons lab bedanken voor hun advies, nuttige discussies en commentaar op het manuscript. We zouden ook bijzonder graag Marta Koch en Bassem Hassan bedanken voor de uitstekende suggestie dat wij tot 1,5 uur APF wachten voordat het ontleden van hersenen voor het kweken van in remodeling experimenten. We danken ook de NHGRI imaging faciliteit voor het gebruik van hun confocale microscoop. Dit werk werd ondersteund door de basis Neuroscience Programma van de NINDS Intramurale Research Program, NIH (Z01 NS003106).

....

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
Naam van het reagens Vennootschap Catalogusnummer Eindconcentratie
Schneider Drosophila Media Invitrogen 21720-024
Foetaal runderserum (warmte-geïnactiveerd) Invitrogen 10082-147 10%
Penicilline / streptomycine Invitrogen 15140-122 1%
Insuline Invitrogen 12585-014 10μg/ml
Ecdyson Sigma-Aldrich H5142 2μg/ml
Roscovitine Sigma-Aldrich R7772 100 urn
Olomoucine Sigma-Aldrich O0886 100 urn
Normaal Geit Serum Invitrogen 50062Z 1%
Bovine serum albumine Fisher Scientific M9501 1%
Formaldehyde Sigma-Aldrich D4551 4%
Triton-X 100 Fisher Scientific BP151 0,5%
Fosfaat gebufferde fysiologische zoutoplossing Invitrogen 70011-044 1X
Vectashield Vector Laboratories H1000
Millicell Cell Culture Inserts Millipore PI8P01250
Multidish, 4 goed Thermo Scientific 176740
Dumont # 5 tang Fine Science Tools 11251-20
Microscoop Dia's Fisher Scientific 12-544-7
Afdekglas Fisher Scientific 12-548-5M

Referenties

  1. Trunova, S., Baek, B., Giniger, E. Cdk5 regulates the size of an axon initial segment-like compartment in mushroom body neurons of the Drosophila central brain. J. Neurosci. 31 (29), 10451-10462 (2011).
  2. Nakada, C., et al.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Tags

Hersendissectiemushroom bodyontwikkelingsgerelateerde pruningCdk5-remmerslive imagingimmunokleuringcelkweektime-lapse