Een abonnement op JoVE is vereist om deze inhoud te bekijken. Log in of start vandaag met uw gratis proefperiode.

Methodenartikel

Een ex vivo varkensmodel voor hydrodynamisch testen van experimentele aortaklepprocedures en nieuwe medische hulpmiddelen

1.9K weergaven

⸱

DOI:

10.3791/65885

⸱

25 augustus 2023

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Surgery, Columbia University Medical Center, 2College of Physicians and Surgeons, Columbia University, 3School of Medicine and Surgery, University of Bologna, 4Division of Cardiac, Thoracic, and Vascular Surgery, Section of Pediatric and Congenital Cardiac Surgery, New York-Presbyterian Morgan Stanley Children’s Hospital, Columbia University Medical Center

In dit artikel

Samenvatting

We presenteren een methode voor het monteren van een varkensaortaklep op een pulsduplicator om de hydrodynamische eigenschappen ervan te testen. Deze methode kan worden gebruikt om de verandering in hydrodynamica te bepalen na de toepassing van een experimentele procedure of een nieuw medisch hulpmiddel voorafgaand aan gebruik in een groot diermodel.

Samenvatting

De mogelijkheden voor het testen van nieuwe cardiale procedures en medische hulpmiddelen voor onderzoek voorafgaand aan gebruik in een diermodel zijn beperkt. In deze studie presenteren we een methode voor het monteren van een varkensaortaklep in een pulsduplicator om de hydrodynamische eigenschappen ervan te evalueren. Deze eigenschappen kunnen vervolgens worden geëvalueerd voor en na het uitvoeren van de onderzochte procedure en/of het toepassen van het medische onderzoekshulpmiddel. Het beveiligen van het instroomsegment levert enige problemen op vanwege het ontbreken van omtrekmyocardium in het linkerventrikeluitstroomkanaal. Deze methode lost dat probleem op door het instroomsegment vast te zetten met behulp van het voorste blaadje van de mitralisklep en vervolgens de linkerventrikelvrije wand rond de instroomarmatuur te hechten. Het uitstroomsegment wordt eenvoudig beveiligd door het armatuur in een incisie in het bovenste aspect van de aortaboog te steken. We ontdekten dat monsters significant verschillende hydrodynamische eigenschappen hadden voor en na weefselfixatie. Deze bevinding heeft ons ertoe aangezet om verse monsters te gebruiken bij onze tests en moet worden overwogen bij het gebruik van deze methode. In ons werk gebruikten we deze methode om nieuwe intracardiale patchmaterialen te testen voor gebruik in de kleppositie door een aortaklepneocuspidisatieprocedure (Ozaki-procedure) uit te voeren op de gemonteerde varkensaortakleppen. Deze kleppen werden voor en na de procedure getest om de verandering in hydrodynamische eigenschappen te beoordelen in vergelijking met de oorspronkelijke klep. Hierin rapporteren we een platform voor hydrodynamisch testen van experimentele aortaklepprocedures dat vergelijking mogelijk maakt met de oorspronkelijke klep en tussen verschillende apparaten en technieken die worden gebruikt voor de onderzochte procedure.

Inleiding

Aortaklepaandoeningen vormen een aanzienlijke belasting voor de volksgezondheid, met name aortastenose, die wereldwijd 9 miljoen mensentreft1. Strategieën om deze ziekte aan te pakken zijn momenteel in ontwikkeling en omvatten aortaklepreparatie en aortaklepvervanging. Vooral bij de pediatrische populatie is er een belangrijke prikkel om de klep te repareren in plaats van te vervangen, aangezien de momenteel beschikbare prothesen vatbaar zijn voor structurele klepdegeneratie (SVD) en niet groeitolerant zijn, waardoor heroperatie nodig is voor hervervanging naarmate de patiënt groeit. Zelfs de Ross-procedure, waarbij de zieke aortaklep (AV) wordt vervangen door de oorspronkelijke pulmonaalklep (PV), vereist een prothese of transplantaat in de longpositie die ook onderhevig is aan SVD en vaak beperkte groeitolerantie2. Er worden nieuwe benaderingen van aortaklepaandoeningen ontwikkeld en er is behoefte aan testen in een biologisch relevante context voorafgaand aan toepassing in een groot diermodel.

We hebben een methode ontwikkeld voor het testen van een varkens-AV die inzicht kan geven in de functie van de klep voor en na een onderzoeksprocedure of toepassing van een nieuw medisch hulpmiddel. Door de varkens-AV op een in de handel verkrijgbare pulsduplicatormachine te monteren, kunnen we de hydrodynamische kenmerken vergelijken die gewoonlijk worden gebruikt bij het onderzoek en de uiteindelijke goedkeuring van klepprothesen, waaronder regurgitatiefractie (RF), effectief openingsoppervlak (EOA) en gemiddeld positief drukverschil (PPD)3,4. De interventie kan vervolgens worden verfijnd in een biologisch relevante context voordat deze wordt gebruikt in een groot diermodel, waardoor het aantal dieren dat nodig is om een procedure of prothese te produceren die bij mensen kan worden gebruikt, wordt beperkt. De harten die voor dit experiment worden gebruikt, kunnen worden verkregen uit het plaatselijke slachthuis of uit afvalweefsel van andere experimenten, dus het is niet nodig om een dier te offeren alleen voor dit experiment.

In ons werk hebben we deze methode gebruikt om een nieuw patchmateriaal te ontwikkelen voor het repareren en vervangen van kleppen. We hebben de hydrodynamische functie van verschillende patchmaterialen getest door een neocuspidisatieprocedure voor de aortaklep (Ozaki-procedure 5,6,7) uit te voeren op AV's van varkens en deze voor en na de procedure te testen in de pulsduplicator. Dit stelde ons in staat om het materiaal te verfijnen op basis van zijn hydrodynamische prestaties. Deze methode biedt dus een platform voor hydrodynamisch testen van experimentele procedures en nieuwe medische hulpmiddelen voor gebruik op de AV voorafgaand aan toepassing in een groot diermodel.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Protocol

Al het onderzoek is uitgevoerd in overeenstemming met de institutionele richtlijnen voor de verzorging van dieren.

1. Overwegingen en voorbereidingen voor het experiment

  1. Gebruik een geschikte pulsduplicator (PD) voor de simulatie van het hartminuutvolume via de AV. De PD moet in staat zijn om biologische materialen te bevatten en te kunnen worden gereinigd.
    1. Gebruik PD-instellingen die geschikt zijn voor het testen van de AV: 70 ml verplaatsingsvolume en 70 slagen per minuut (5 l/min cardiale output), 35% van de hartcyclus in systole, 100 mmHg gemiddelde transvalvulaire drukgradiënt, 120 maximale drukgradiënt en 80 minimale drukgradiënt.
    2. Gebruik kamertemperatuur (RT) normale zoutoplossing (0,9% NaCl) als vloeibaar medium.
  2. Zoek of creëer (met behulp van 3D-printen of een vergelijkbare methode) geschikte armaturen voor het monteren van de varkens-AV voor testen op de PD.
    1. Gebruik armaturen die zijn gemodelleerd naar de armaturen die bij de pulsduplicator zijn geleverd met de volgende specificaties: zorg ervoor dat de binnendiameter van de armatuur vergelijkbaar is met de diameter van de AV die wordt bestudeerd, de lengte van het bevestigingselement minimaal 2 cm is en de bruikbare breedte van het hulpstuk minimaal 4 cm is (Figuur 1).
    2. Gebruik rubberen O-ringen als pakkingen aan de uiteinden van de armaturen.
  3. Verkrijg een hartmonster na cardiectomie (Figuur 2A).
    1. Gebruik hartmonsters van varkens uit het slachthuis of afvalweefsel van dieren die verder gezond zijn en geen deel hebben uitgemaakt van experimentele protocollen die hun hart zullen aantasten.
    2. Verkrijg een monster na cardiectomie of voer postmortale cardiectomie uit, inclusief doorsnede van de vena cava superior, vena cava inferior, hoofdlongslagader (PA), alle longaders en aorta aan het distale aspect van de aortaboog.
      OPMERKING: Voor dit experiment moeten verse monsters worden gebruikt, minder dan 6 uur na het mortem of bewaard in steriele zoutoplossing met een 1% antibiotische oplossing (penicilline en streptomycine) in een koelkast van 4 °C gedurende maximaal 7 dagen. Weefsels gefixeerd in formaline of glutaaraldehyde zullen veranderde hydrodynamische resultaten opleveren als gevolg van verhoogde stijfheid.

figure-protocol-1
Afbeelding 1: Op maat gemaakte 3D-geprinte armaturen voor het monteren van de varkensaortakleppen op de pulsduplicator. Zoals vermeld in het protocol, moet de bevestigingslengte minimaal 2 cm zijn en de bruikbare bevestigingsbreedte minimaal 4 cm. Klik hier om een grotere versie van deze afbeelding te bekijken.

2. Resectie van rechtszijdige structuren

  1. Ontleed de PA van de aorta met een Metzenbaum-schaar totdat ventrikelweefsel zichtbaar is (Figuur 2B).
  2. Ontleed en ligate met zijden banden beide kransslagaders aan hun oorsprong uit de aorta-sinussen, en zorg ervoor dat de sinussen niet vernauwen.
  3. Doorsnijd de kransslagaders distaal van de zijden banden.
  4. Snijd de rechterventrikel (RV) tussen de aorta en de PA aan de basis van de pulmonaalklep in met behulp van een Metzenbaum-schaar (Figuur 2C).
  5. Begin naar voren en vervolg de incisie in de omtrek langs het interventriculaire septum om de RV-vrije wand te verwijderen (Figuur 2D, E).
  6. Ga door met de incisie naar achteren door de annulus van de tricuspidalisklep langs het interatriale septum om al het juiste atriale weefsel te verwijderen (Figuur 2F).

figure-protocol-2
Figuur 2: Cardiectomiemonster en resectie van rechtszijdige structuren. (A) Cardiectomiemonster. (B) Hoofdlongslagader ontleed van de aorta totdat ventrikelweefsel zichtbaar is. (C) Insnijden van de rechterhartkamer (RV) aan de basis van de longklep. (D) Voortzetting van de incisie langs het interventriculaire septum anterieur. (E) Het verwijderen van de RV-vrije wand door de incisie in de omtrek langs het interventriculaire septum voort te zetten. (F) Specimen waarvan de rechtszijdige structuren zijn verwijderd. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

3. Voorbereiding van het linkerventrikel-uitstroomkanaal (LVOT) voor canulatie met de PD-armatuur

  1. Snijd het linker atrium (LA) door het ostium van de rechter longader evenwijdig aan de aorta met behulp van een Metzenbaum-schaar (Figuur 3A).
    OPMERKING: Hoewel er beperkte variabiliteit bestaat, eindigt de anatomie van de longader van varkens over het algemeen in twee longaderostia die de LA8 binnenkomen.
  2. Vervolg de incisie in de richting van de anterolaterale commissuur van de mitralisklep (MV), waarbij u ten minste een manchet van 3 mm atriumweefsel aan de aortazijde overlaat.
  3. Snijd overtollig LA-weefsel af, waarbij u de manchet van 3 mm atriumweefsel op de aorta en de MV-annulus in de omtrek handhaaft (Figuur 3B).
  4. Verleng de incisie naar de linker hartkamer (LV) door de anterolaterale commissuur van de MV en zorg ervoor dat de anterolaterale papillaire spier behouden blijft (Figuur 3C).
  5. Verdeel chordae tendineae van de anterolaterale papillaire spier naar het achterste MV-blad, met behoud van de aanhechtingen aan het voorste MV-blad.
  6. Ga door met de incisie naar de top van het hart.
  7. Snijd overtollig LV-weefsel onder de papillaire spieren bij, waarbij beide papillaire spieren behouden blijven (Figuur 3D).

figure-protocol-3
Figuur 3: Voorbereiding van het linkerventrikel-uitstroomkanaal voor canulatie met de pulsduplicatorinrichting. (A) Insnijding van het linker atrium (LA) door het ostium van de rechter longader. (B) Overtollig LA-weefsel bijgesneden, met behoud van ten minste een manchet van 3 mm atriumweefsel op de aorta en met behoud van de mitralisklepannulus in de omtrek. (C) Verlenging van de incisie in de linker hartkamer (LV) door de anterolaterale commissuur van de mitralisklep. (D) Het verwijderen van overtollig LV-weefsel onder de papillaire spieren. Een schaar is zichtbaar in de rechterbovenhoek van de afbeelding. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

4. Voorbereiding van de aorta voor canulatie met de PD-armatuur

  1. Snijd overtollig lymfatisch, bind- of longslagaderweefsel van de aorta af (Figuur 4A).
  2. Snijd het superieure aspect van de aortaboog van de dalende aorta naar de linker subclavia-slagader in met behulp van een Metzenbaum-schaar (Figuur 4B).
  3. Vervolg de incisie aan de bovenkant van de aortaboog van de linker subclavia-slagader naar de brachiocephalische stam (Figuur 4C, D).
    OPMERKING: Vertakkingen van de aortaboog van het varken van distaal naar proximaal omvatten de linker subclavia-slagader en de brachiocephalische stam, die aanleiding geeft tot de rechter subclavia-slagader, de rechter halsslagader en de linker halsslagader9.

figure-protocol-4
Figuur 4: Voorbereiding van de aorta voor canulatie met de pulsduplicatorfix. (A) Aortaboog met overtollig weefsel verwijderd. Let op de twee boogvaten in de aortaboog van het varken, de brachiocephalische stam en de linker subclavia-slagader. (B) Het starten van de incisie langs het bovenste aspect van de aortaboog van de dalende aorta naar de linker subclavia-slagader. (C) Voortzetting van de incisie langs het bovenste aspect van de aortaboog van de linker subclavia-slagader naar de brachiocephalische stam. (D) Voltooide incisie in de aortaboog. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

5. Canulatie van de LVOT met de PD-armatuur

  1. Test de positionering van het armatuur in de LVOT en snijd overtollig LV-weefsel weg.
    1. Plaats het armatuur in de LVOT onder het voorste blad van de MV.
    2. Wikkel de LV-vrije muur om het armatuur.
    3. Knip overtollig LV-weefsel af om een strakke wikkel rond het armatuur te behouden.
    4. Verwijder de helft van de dikte van de LV-vrije wand, beginnend bij het interventriculaire septum, met behoud van ten minste 1 cm epicardium aan de vrije rand om de integriteit van de hechtdraad te behouden (Figuur 5A).
    5. Knip 1 cm weefsel af van de bovenste hoek van de LV-vrije muurfolie (Figuur 5A).
  2. Plaats het armatuur in de LVOT met het bevestigingsgat van de steunstang 1 cm achter de LV-incisie (Figuur 5B).
    1. Zorg ervoor dat u het armatuur niet te ver in de LVOT steekt, zodat de AV-annulus wordt verwijd.
  3. Bevestig het voorste blad van de MV aan het armatuur met behulp van een of twee 6-inch kabelbinders die tussen de chordae tendineae van het blad zijn geplaatst (Figuur 5C).
  4. Hecht de LV-vrije muur rond het armatuur (Figuur 5D).
    1. Begin met het hechten van de manchet van LA-weefsel op de aorta aan de MV-annulus met behulp van een eenvoudige lopende hechting met een taps toelopende naald.
    2. Ga door met de rijgsteek op de LV, zonder het LV-weefsel te scheuren.

figure-protocol-5
Figuur 5: Canulatie van het linkerventrikeluitstroomkanaal met de pulsduplicatorinrichting. (A) De helft van de dikte van de LV-vrije wand wordt verwijderd met 1 cm epicardium aan de vrije rand. De stippellijn geeft het gebied van 1 cm aan dat moet worden verwijderd uit de bovenste hoek van de LV-vrije muurfolie. (B) Bevestigingsgat voor steunstang 1 cm achter de LV-vrije wandincisie. (C) Kabelbinder waarmee de voorste blaad van de MV aan de proximale bevestiging wordt bevestigd. (D) LV-vrije muur gehecht rond het armatuur. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

6. Canulatie van de aorta met PD-armatuur en laatste voorbereiding op PD-testen

  1. Meet de diameter van de AV met behulp van Hegar-dilatatoren om te helpen bij de interpretatie van de resultaten van PD-testen.
  2. Identificeer de neutrale positie van de aorta door het monster van de tafel te tillen door de aorta vast te pakken (Figuur 6A).
  3. Steek de PD-armatuur in de aorta en zorg ervoor dat de bevestigingsgaten van de stang in de neutrale positie van de aorta zijn uitgelijnd.
  4. Controleer de lengte van het preparaat door de steunstangen erin te steken.
  5. Bevestig het PD-armatuur aan de aorta met behulp van een of twee 6-inch kabelbinders (Figuur 6B).
  6. Zet de LVOT vast rond het PD-armatuur met behulp van een of twee 8-inch kabelbinders.
  7. Zet de steunstangen vast met de schroeven die bij de PD-set zijn geleverd.
  8. Plaats het monster in PD en start de test (Figuur 6C, Video 1 en Video 2).
  9. Hecht eventuele lekken indien nodig.

figure-protocol-6
Figuur 6: Canulatie van de aorta en testen in de pulsduplicator. (A) Het monster bij de aorta van de tafel tillen om de neutrale positie van de aorta te bepalen. (B) Distale bevestiging vastgezet in de aorta met kabelbinders. (C) Sample gemonteerd in de pulsduplicator voor hydrodynamische tests. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

7. Voer een experimentele procedure uit

OPMERKING: Voer experimentele procedures uit, zoals de Ozaki-procedure zoals eerder beschreven 5,6,7, en herhaal de PD-test.

  1. Als het weefsel tijdens de procedure is uitgedroogd, trek dan de kabelbinders aan en versterk de hechtdraad indien nodig.

8. Langdurige opslag van het monster (indien gewenst)

  1. Plaats het monster in formaline 10% gedurende 168 uur (1 week)10,11.
  2. Was het monster na weefselfixatie met gedeïoniseerd water en plaats het in ethanol 70% voor langdurige opslag.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Resultaten

De representatieve gegevens die met de pulsduplicator worden verzameld, omvatten regurgitatiefractie (RF), effectief openingsgebied (EOA) en gemiddeld positief drukverschil (PPD). Met name de RF en EOA worden gebruikt in de ISO-normen voor prothetische kleppen (ISO 5840) en zullen belangrijk zijn om te verzamelen als prothetische klepproducten worden onderzocht. De PPD biedt informatie over hoeveel druk er nodig is om de klep te openen en wordt vaak genoemd bij het bespreken van het vervangen van een prothetische klep

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

De hier gepresenteerde methode biedt een platform voor hydrodynamisch testen van de AV om het effect van een experimentele procedure of een nieuw medisch hulpmiddel te onderzoeken. Door de oorspronkelijke aortaklep op een pulsduplicatormachine te monteren, zijn we in staat om het effect van de experimentele procedure op alle hydrodynamische parameters te bepalen die worden gebruikt bij het onderzoek en de goedkeuring van nieuwe klepprothesen (ISO 5840). Dit biedt de mogelijkheid om procedures en prothesen te verfijnen vo...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

De auteurs hebben geen relevante financiële belangenconflicten om bekend te maken.

Dankbetuigingen

We willen het lab van Dr. Gordana Vunjak-Novakovic, waaronder Julie Van Hassel, Mohamed Diane en Panpan Chen, bedanken voor het feit dat we hartafvalweefsel van hun experimenten mochten gebruiken. Dit werk werd ondersteund door de Congenital Heart Defect Coalition in Butler, NJ, en de National Institutes of Health in Bethesda, MD (5T32HL007854-27).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
3D PrinterUltimakerUltimaker S5Gebruikt voor het printen van aangepaste fixtures voor hydrodynamic testen
Crile-Wood NaalddriverEmerald Instruments2.0638.15Gebruikt voor het sutureren van ventrikel
Debakey ForcepsJarit320-110Gebruikt voor dissectie en voorbereiding van monsters (kan meerdere gebruiken als er een assistent is)
Ethanol 200 proofDecon Labs Inc.DSP-MD.43Gebruikt voor vaste weefselopslag
Formalin 10%Epredia5701Gebruikt voor weefselfixatie
Gerald ForcepsJarit285-126Gebruikt voor dissectie en voorbereiding van monsters
GlasmaatjesQAPPDAB07QCP54Z3Gebruikt voor weefselopslag
Glutaraldehyde 25%Electron Microscopy Sciences16400Gebruikt voor weefselfixatie
HEPES 1 M bufferoplossingFisherBP299-100Gebruikt om glutaraldehyde 0.6% te maken
Mayo SchaartjesJarit099-200Gebruikt voor het snijden van hechtingen
Metzenbaum SchaartjesJarit099-262Gebruikt voor dissectie en voorbereiding van monsters
O-ringSterling Seal & Supply Inc.AS568-117Gebruikt als afdichting aan het einde van de 3D geprinte fixtures
Polylactisch zuur resinUltimaker1609Gebruikt voor 3D het printen van fixtures
Polypropleen hechtingsdraadCovidienVP-762-XGebruikt voor het sutureren van ventrikel, taps toelopende naald
Pulse DuplicatorBDC LaboratoriesHDTi-6000Gebruikt voor hydrodynamic testen
Zijde bandjesCovidienS-193Gebruikt voor het ligeren van kransslagaders
Tonsil KlauwAesculapBH957RGebruikt voor dissectie van kransslagader
Zakjes (6 inch)Advanced Cable Ties, Inc.AL-06-18-9-CGebruikt voor het bevestigen van monsters aan fixtures, 157.14 mm lang (6 inches), 2.5 mm breed
Zakjes (8 inch)GTSEGTSE-20025B.1000Gebruikt voor het bevestigen van monsters aan fixtures, 203 mm lang (8 inches), 2.5 mm breed

Referenties

  1. Aluru, J. S., Barsouk, A., Saginala, K., Rawla, P., Barsouk, A. Valvular heart disease epidemiology. Medical Science. 10 (2), Basel, Switzerland. 32(2022).
  2. Herrmann, J. L., Brown, J. W. Seven decades of valved right ventricular outflow tract reconstruction: The most common heart procedure in children. The Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 160 (5), 1284-1288 (2020).
  3. Rotman, O. M., Bianchi, M., Ghosh, R. P., Kovarovic, B., Bluestein, D. Principles of TAVR valve design, modelling, and testing. Expert Review of Medical Devices. 15 (11), 771-791 (2018).
  4. Pibarot, P., et al. Imaging for predicting and assessing prosthesis-patient mismatch after aortic valve replacement. JACC Cardiovascular Imaging. 12 (1), 149-162 (2019).
  5. Ozaki, S., et al. Aortic valve reconstruction using self-developed aortic valve plasty system in aortic valve disease. Interactive Cardiovascular and Thoracic Surgery. 12 (4), 550-553 (2011).
  6. Krane, M., Amabile, A., Ziegelmüller, J. A., Geirsson, A., Lange, R. Aortic valve neocuspidization (the Ozaki procedure). Multimedia Manual of Cardiothoracic Surgery. , (2021).
  7. Ozaki, S., et al. A total of 404 cases of aortic valve reconstruction with glutaraldehyde-treated autologous pericardium. The Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 147 (1), 301-306 (2014).
  8. Vandecasteele, T., et al. The pulmonary veins of the pig as an anatomical model for the development of a new treatment for atrial fibrillation. Anatomia Histollogia Embryologia. 44 (1), 1-12 (2015).
  9. Góes, A. M. O., et al. Comparative angiotomographic study of swine vascular anatomy: contributions to research and training models in vascular and endovascular surgery. Journal Vascular Brasilerio. 20, 20200086(2021).
  10. Hołda, M. K., Klimek-Piotrowska, W., Koziej, M., Piątek, K., Hołda, J. Influence of different fixation protocols on the preservation and dimensions of cardiac tissue. Journal of Anatomy. 229 (2), 334-340 (2016).
  11. Hołda, M. K., Klimek-Piotrowska, W., Koziej, M., Tyrak, K., Hołda, J. Penetration of formaldehyde based fixatives into heart. Folia Medica Cracoviensia. 57 (4), 63-70 (2017).
  12. Spampinato, R. A., et al. Grading of aortic regurgitation by cardiovascular magnetic resonance and pulsed Doppler of the left subclavian artery: harmonizing grading scales between imaging modalities. International Journal of Cardiovascular Imaging. 36 (8), 1517-1526 (2020).
  13. Capps, S. B., Elkins, R. C., Fronk, D. M. Body surface area as a predictor of aortic and pulmonary valve diameter. The Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 119 (5), 975-982 (2000).
  14. Baumgartner, H., et al. Recommendations on the echocardiographic assessment of aortic valve stenosis: a focused update from the European Association of Cardiovascular Imaging and the American Society of Echocardiography. European Heart Journal - Cardiovascular Imaging. 18 (3), 254-275 (2017).
  15. Saisho, H., et al. An ex vivo evaluation of two different suture techniques for the Ozaki aortic neocuspidization procedure. Interactive Cardiovascular and Thoracic Surgery. 33 (4), 518-524 (2021).
  16. Saisho, H., et al. Ex vivo evaluation of the Ozaki procedure in comparison with the native aortic valve and prosthetic valves. Interactive Cardiovascular and Thoracic Surgery. 35 (3), (2022).
  17. Paulsen, M. J., et al. Comprehensive ex vivo comparison of 5 clinically used conduit configurations for valve-sparing aortic root replacement using a 3-dimensional-printed heart simulator. Circulation. 142 (14), 1361-1373 (2020).
  18. Al-Atassi, T., et al. Impact of aortic annular geometry on aortic valve insufficiency: Insights from a preclinical, ex vivo, porcine model. The Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 150 (3), 656-664 (2015).
  19. Sun, M., et al. A biomimetic multilayered polymeric material designed for heart valve repair and replacement. Biomaterials. 288, 121756(2022).
  20. Waller, B. F., McKay, C., Van Tassel, J., Allen, M. Catheter balloon valvuloplasty of stenotic porcine bioprosthetic valves: Part I: Anatomic considerations. Clinical Cardiology. 14 (8), 686-691 (1991).
  21. Crick, S. J., Sheppard, M. N., Ho, S. Y., Gebstein, L., Anderson, R. H. Anatomy of the pig heart: comparisons with normal human cardiac structure. Journal of Anatomy. 193, 105-119 (1998).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Tags

Aortaklep van varkenpolspulsduplicatorexperimentele klepgrepentesten van medische hulpmiddelenneocuspidisatie van de aortaklepOzaki procedureklepvervangingsmodelmaterialen voor bladsubstitutielinker ventriculaire uitstroomtraject
Een ex vivo varkensmodel voor hydrodynamisch testen van experimentele aortaklepprocedures en nieuwe medische hulpmiddelen
Neem contact met ons op
Aanbevelen aan de bibliotheek

Privacy

Gebruiksvoorwaarden

Beleidsoverzicht

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. Alle rechten voorbehouden.