De pancreaseilandjes van Langerhans zijn van cruciaal belang voor het beheer van glucosetolerantie gedurende de hele levensduur. Het niet goed afstemmen van de bloedglucosespiegels via het glucoseverlagende hormoon, insuline of het glucoseverhogende hormoon, glucagon, resulteert in diabetes mellitus1. Aanpasbare risicofactoren om het risico op diabetes te minimaliseren, zijn onder meer lichaamsbeweging en voeding. Daarnaast wordt duidelijk dat de voeding van de moeder tijdens de zwangerschap ook effect heeft op de vatbaarheid van het nageslacht voor diabetes op volwassen leeftijd 2,3. Er zijn dus methoden nodig om de effecten van maternale voeding en andere blootstellingen, zoals medicijnen die tijdens de zwangerschap worden gebruikt, op de insulineproducerende bètacellen in modelorganismen tijdens de ontwikkeling te analyseren. Eilandjes van foetale niet-menselijke primaten (NHP) nakomelingen kunnen bijvoorbeeld worden geëvalueerd op de effecten van ontwikkelingsblootstellingen. Net als bij mensen hebben NHP's meestal eenlinggeboorten en variëren ze in hun fysiologische reactie op voeding in westerse stijl4. Hoewel de dracht en foetale ontwikkeling van NHP's veel overeenkomsten vertoont met die van mensen, waardoor ze een zeer relevante soort zijn voor metabole programmeringsstudies, omvatten uitdagingen voor het uitvoeren van vergelijkende bio-informaticatests op NHP-nakomelingen een beperkt paarseizoen en intermitterende monsterverzameling. Daarom zijn benaderingen die langdurige opslag mogelijk maken voorafgaand aan de verwerking en analyse van monsters ideaal. Dit protocol beschrijft de voorbereiding van monsters voor single nucleus RNA-sequencing, ATAC-sequencing en bulk cytoplasmatische metabolomics.
Studies door anderen op het gebied van eilandjesbiologie hebben overlap aangetoond in de genetische handtekeningen die worden waargenomen in monsters die zijn bereid via single-cell RNA-sequencing en single-nucleus RNA-sequencing 5,6. Beide methoden maken het mogelijk om transcripten te identificeren die bijdragen aan het onderscheiden van kenmerken tussen verschillende celtypen binnen de eilandjespopulatie. Door het gebruik van zachte reinigingsmiddelen op snel bevroren weefsel, kunnen intacte kernen tegelijkertijd worden gebruikt voor ATAC-sequencing, waardoor toegankelijke chromatinegebieden kunnen worden bepaald. De combinatie van single-nucleus RNA-sequencing met ATAC-sequencing zorgt voor een betere karakterisering van genregulerende netwerken7.
De voorbereiding van monsters voor metabolomics is van oudsher beperkt door de noodzaak van een hoge monstervolume-input voor vloeistofchromatografie. Bovendien moet zorgvuldig worden nagedacht over de buffers die tijdens de monstervoorbereiding worden gebruikt om valse NMR-pieken in massaspectrometrische gegevens te voorkomen. Gezien het lage aantal monsters dat uitdagend en kostbaar is om te verkrijgen in primatenstudies, kan de toewijzing van eilandjes van verschillende nakomelingen aan transcriptomische versus metabolomische experimenten moeilijk zijn. Dit protocol maakt dus gebruik van de normaal weggegooide cytosolische fractie die wordt gegenereerd tijdens cellulaire fractionering voor experimenten met één kern. Deze methode maakt de gelijktijdige karakterisering mogelijk van transcripten en open chromatineregio's die cellulaire subsets in foetale eilandjes definiëren, terwijl de metabolieten die in eilandjes worden geproduceerd kwantitatief worden gemeten (Figuur 1). Dit protocol is een bewerking van een gedemonstreerd protocol gepubliceerd door 10x genomics voor de isolatie van kernen uit flash-frozen embryonaal muizenhersenweefsel (versie CG000366 Rev D8)7.