Name: Knaagdier stereotaxische Chirurgie en Dierenwelzijn Outcome Verbeteringen voor Behavioral Neuroscience (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-01-30T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 1 s
Description: Leer verbeterde stereotaxische chirurgie voor knaagdieren met monitoring van zuurstof, hartslag en temperatuur. Deze techniek verhoogt de overlevingskans en verbetert het dierenwelzijn aanzienlijk.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

De auteurs danken dr. Peter Gerrits voor de tekeningen die in de video.

Let op: Antiseptische technieken moeten worden gebruikt tijdens de gehele procedure. Alle instrumenten en materialen (katoen-tip wattenstaafjes, gaas, etc.) die gebruikt zullen worden tijdens de operatie moet worden gesteriliseerd door autoclaveren. Een chirurgisch masker, haar muts en steriele handschoenen worden gedragen. Het werkgebied en de stereotaxische apparaat moet grondig worden gereinigd en ontsmet met een 70% ethanol-oplossing. 1. Pre-chirurgische procedures <ol><li> Stel de stereotaxische apparatuur en alle benodigde materialen. Pre-warm de verwarming pad. </li><li> Plaats de canule in haar steun en controleer of het recht. </li><li> Zet het gas systeem - mengsel van lucht en zuurstof (30-35% van de totale stroom moet worden zuurstof). </li><li> Weeg de rat en het beheer van de verdoving. Wij maken gebruik van een mengsel van ketamine (37,5 mg / kg) en dexmedetomidine (0,25 mg / kg) subcutaan geïnjecteerd. Voor verschillende anesthesie-protocollen, zie Flecknell 4 en Hellebrekers et al.. 7. </li><li> Na de rat verloor het bewustzijn, scheer het hoofd gebied gaande van de oren tot net tussen de ogen met een elektrisch scheerapparaat. </li><li> Plaats de rat op de verwarming pad, met zijn neus in de voorkant van de luchtslang. Gebruik een oximeter om ervoor te zorgen dat de rat een adequaat bloedoxygenatie niveau (mag niet vallen &lt;90%) heeft. Volg de instructies van de fabrikant voor een juist gebruik van apparatuur. </li><li> Van toepassing oogcrème (Duratears Z, Alcon) aan beide hoornvliezen om uitdroging te voorkomen. </li><li> Controleer of de rat reflexen (staart reflex of teen-snuifje reflex, zoals aangetoond in Walantus et al.. 8) om ervoor te zorgen dat deze adequaat verdoofd. Als de rat blijft een sterke reflexen, kan suppletie van de anesthesie nodig zijn. </li><li> Als er geen toe-snuifje reflex wordt weergegeven, plaatst u de rat in de stereotaxische apparaat, past het oor bars, zodat het toont gelijk te lezen aan beide zijden, en plaats opnieuw de luchtslang in de voorkant van het dierdoor de vaststelling van het met de neus bar. Controleer nogmaals of de rat toont een bloedoxygenatie niveau van 90% of hoger. Zo niet, aanpassen of de slang, waardoor deze dichter bij de neus, of verhoging van de toevoer van zuurstof. Bewaken van de bloedoxygenatie niveau en de hartslag gedurende de operatie. </li><li> Permanent toezicht op de rat temperatuur met een rectale thermometer (bij voorkeur aangesloten op een verwarmings-pad) en noteer de waarden aan het begin en einde van de operatie. Pas de verwarming pad of gebruik een deken om een ​​lichaamstemperatuur van 37,5 te behouden tot 38,5 ° C. </li></ol> 2. Chirurgie <ol><li> Injecteer de pijnstillende. We maken gebruik van een peri-operatieve toediening van carprofen (4.0-5.0 mg / kg, subcutaan). Voor verschillende pijnstillende protocollen, zie Hellebrekers et al.. 7. </li><li> Reinig het geschoren gebied van thij de huid van het midden naar de haren omtrek drie keer met een desinfecterend middel (bijvoorbeeld chloorhexidine 0,5%) en lokaal een mengsel van lidocaïne (20 mg / ml) en adrenaline (5 mg / ml) geïnjecteerd voor de lokale verdoving en vasoconstrictie (om te voorkomen dat overmatig bloeden). </li><li> Maak een anterior-posterior incisie van ongeveer 2,5 cm op de middellijn van de hoofdhuid, gaande van tussen de ogen tot aan de achterkant van de oren. Gebruik 4-6 bulldog klemmen om knijpen van de huid en om de incisie te openen. Verwijder eventuele bindweefsel met een spatel en / of wattenstaafjes en reinig het gebied om de schedel oppervlak bloot te leggen. </li><li> Controleer of het hoofd niveau: Zoek eerst Lambda en plaats de gids canule precies over deze locatie, het aanraken van de schedel. Neem de dorso-ventrale coördineren. Plaats vervolgens de gids canule precies over Bregma, het aanraken van de schedel, en neem de dorso-ventrale coördineren. Deze twee coördinaten moeten identiek zijn. Als het verschil&gt; 0,3 mm, pas de neus balk om dit te corrigeren. </li><li> Make twee kleine gaten voor de vaststelling van de schedel schroeven met een gesteriliseerde handboor (een ongeveer 5 mm juist voor de canule locatie in een van de hemisferen en de andere 5 mm achter de canule locatie in de contralaterale hemisfeer). Plaats twee steriele schroeven in deze gaten tot ze stevig verankerd zijn, zonder te worden opgenomen volledig in de schedel. </li><li> Met de gids canule geplaatst precies op Bregma, noteer de anterior-posterior en lateraal coördinaten. De juiste locatie van gids canule plaatsing voor elk gebied van de hersenen kan worden berekend door het optellen of aftrekken van Bregma, met behulp van een atlas stereotaxische 9-11. </li><li> Plaats de gids canule in de juiste locatie, licht aanraken van de schedel. Neem de dorso-ventrale coördineren. Voor de bilaterale canule plaatsing, vinden naast de canule locatie in het andere halfrond, en opnieuw opnemen van de dorso-ventrale coördineren. Beide coördinaten moeten identiek zijn (of anders &lt;0,3 mm). </li><li>Markeer de canule locaties op de schedel met een steriele potlood en, met de hand boormeester, maken de braam gaten, het controleren van de grootte en de juiste locatie met behulp van de gids canule. Nadat de gaten zijn gemaakt, gebruik maken van een steriele naald voorzichtig punch de hersenvliezen te zorgen voor onbelemmerd inbrengen van de canule. </li><li> Plaats de canule in het eerste gat en voorzichtig zakken totdat hij uiteindelijk terecht bij de ventrale coördineren. Bereid de tandheelkundig cement en royaal toe te passen rond de canule en een of twee schroeven in om de canule op te lossen. Wacht tot het cement volledig is opgedroogd. Daarna, verwijder voorzichtig de canule te ondersteunen door het draaien van de dorso-ventrale bar naar boven. </li><li> Plaats de tweede canule in de steun en ga naar de canule locatie in het andere halfrond. Plaats de canule in het gat en herhaal de vorige stap. Bedek de schroeven en een groot oppervlak van de buisjes, met het cement, en voordat het cement droog is, het eventuele overschot verwijderen uit de huid. </li><li> Injecteren warm (~ 37 ° C) steriele zoutoplossing (~ 10 ml / kg, sc) te rehydratie te verzekeren. </li><li> Nadat het cement volledig is gedroogd, verwijdert u de canule te ondersteunen en plaats een steriele pin in elke canule om obstructie te voorkomen. </li><li> Reinig de wond met een steriele zoutoplossing en hechtdraad de voor-en achterkant van de wond. </li><li> Verwijder het dier uit de stereotaxische apparaat, het vervangen van de gas-buizen voor zijn neus. Blijf de zuurstofverzadiging niveau en de lichaamstemperatuur te controleren. </li><li> Als een injecteerbaar anestheticum met dexmedetomidine wordt gebruikt, injecteren zijn antagonist atipamezol (0,25 mg / kg, sc) en wacht tot het dier wakker wordt (ongeveer 5 minuten). </li><li> Zet de rat in een kooi herstel. Om te voorkomen dat onderkoeling, plaats de kooi in een incubator bij 28 ° C of op een verwarmingselement in een plek waar je kunt het dier acht te nemen voor ten minste een uur, voordat hij terugkeerde naar de vivarium kamer. </li></ol> 3. Post-operatieve zorg <ol><li> Gedurende de eerste 4 dagen na de operatie, toezicht op de rat het herstel door het houden van de dagelijkse administratie van het gewicht en de andere opmerkingen over de toestand van het dier in het laboratorium logboeken of "het welzijn van dieren dagboeken". </li><li> Dieren die duidelijke tekenen van ziekte, infectie van de wond, verlies van lichaamsgewicht of andere tekenen van een verminderde welzijn moeten ondergaan speciale zorg geven: bijvoorbeeld een extra dosis pijnstillers tot post-operatieve pijn, een mengsel van poeder voedsel en water te minimaliseren Naast de standaard Chow van de rat de eetlust, en / of een subcutane injectie van zoutoplossing om rehydratie ondersteuning te stimuleren. </li><li> Als de rat vertoont geen verbetering na deze ingrepen, of het verlies van lichaamsgewicht is&gt; 15% (in vergelijking met pre-operatie gewicht), offeren het dier met een overdosis van verdoving (humane eindpunt). </li><li> Ratten meestal moet gedurende ten minste 7 dagen te herstellen voor de aanvang van gedragsexperimenten. </li></ol> 4. Representatieve resultaten jove_content "&gt; Om te bepalen of de verschillende wijzigingen aan onze chirurgische procedure, in het bijzonder met betrekking tot toedienen van zuurstof en de continue monitoring van bloedoxygenatie niveaus, hartslag en lichaamstemperatuur, het dier overleven uitgebreid en verbeterd de algemene conditie na een operatie, vergeleken we de niet-overlevingspercentage van 20 cohorten van dieren (bestaande uit 20 ratten per stuk) die geopereerd nadat wij deze wijzigingen uitgevoerd met de niet-overlevingskans van 24 cohorten (20 ratten elk) bediend met het standaard protocol. Zoals weergegeven in figuur 1a , de niet-overleving was significant verminderd in de steekproef van de cohorten die werd bediend met de gewijzigde protocol (P &lt;0,05; Mann-Whitney U test, twee tailed). Bovendien, zoals is weergegeven in figuur 1b, post-operatieve gewichtsverlies van ratten bediend met de gewijzigde protocol was ook significant verminderd in vergelijking met dat van ratten bediend met de standaard procedure (post-operatieve dag 1: P &lt;0,05; post-operatieve dag 2: P &lt;0.01; post-operatieve dag 3: P = 0,17; Student t-tests). <img alt="Figuur 1" src="/files/ftp_upload/3528/3528fig1.jpg" data-altupdatedat="1788238805000" data-alt="Figuur 1"> Figuur 1. Effect van chirurgische wijzigingen op non-overleving en post-chirurgische gewichtsverlies. (A.) Niet-survival rate van ratten bediend met de gewijzigde protocol vergeleken met dat van ratten gebruikt met het standaard protocol. De niet-overleving (mediaan ± interkwartielafstand reeksen) werd berekend als het percentage van de ratten, per cohort van 20 ratten, die niet overleven chirurgie. * P &lt;0,05, Mann-Whitney U test twee tailed (n = 20 cohorten voor de gewijzigde protocol en 24 cohorten voor de standaard-protocol). (B.) Gewichtsverlies (gemiddelde ± SEM als percentage van de pre-operatie gewicht) gedurende de eerste (Pod1), tweede (POD2) en derde (POD3) post-operatieve dag. * P &lt;0,05, ** p &lt;0,01, Student t-test (n = 60 per groep).

<ol><li>Russell, W. M. S., Burch, R. L. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aRussell%2C+WMS+%22The+Principles+of+Humane+Experimental+Technique%22">The Principles of Humane Experimental Technique</a>. , Methuen, London. (1959).</li>
<li>Richardson, C. A., Flecknell, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anaesthesia+and+post-operative+analgesia+following+experimental+surgery+in+laboratory+rodents%3A+are+we+making+progress%3F%5BTitle%5D)+AND+%22Altern.+Lab+Anim%22%5BJournal%5D)">Anaesthesia and post-operative analgesia following experimental surgery in laboratory rodents: are we making progress?</a> Altern. Lab Anim. 33, 119-127 (2005).</li>
<li>Stokes, E. L., Flecknell, P. A., Richardson, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reported+analgesic+and+anaesthetic+administration+to+rodents+undergoing+experimental+surgical+procedures%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Anim%22%5BJournal%5D)">Reported analgesic and anaesthetic administration to rodents undergoing experimental surgical procedures.</a> Lab Anim. 43, 149-154 (2009).</li>
<li>Flecknell, P. A. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aFlecknell%2C+PA+%22Laboratory+Animal+Anaesthesia+-+A+Practical+Introduction+for+Research+Workers+and+Technicians%22">Laboratory Animal Anaesthesia - A Practical Introduction for Research Workers and Technicians</a>. , Academic Press. (2009).</li>
<li><a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DIRECTIVE+2010%2F63%2FEU+OF+THE+EUROPEAN+PARLIAMENT+AND+OF+THE+COUNCIL+of+22+September+2010+on+the+protection+of+animals+used+for+scientific+purposes%5BTitle%5D)+AND+%22Official+Journal+of+the+European+Union%22%5BJournal%5D)">DIRECTIVE 2010/63/EU OF THE EUROPEAN PARLIAMENT AND OF THE COUNCIL of 22 September 2010 on the protection of animals used for scientific purposes.</a> Official Journal of the European Union. , (2010).</li>
<li>Geiger, B. M., Frank, L. E., Caldera-Siu, A. D., Pothos, E. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Survivable+Stereotaxic+Surgery+in+Rodents%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Survivable Stereotaxic Surgery in Rodents.</a> J. Vis. Exp. (20), e880-e880 (2008).</li>
<li>Hellebrekers, L. J., Booij, L. H. D. J., Flecknell, P. A. Anaesthesia, analgesia and euthanasia. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aHellebrekers%2C+LJ+%22Principles+of+Laboratory+Animal+Science%22">Principles of Laboratory Animal Science</a>. Van Zutphen, L. F. M., Baumans, V., Beynen, A. C. , Elsevier Science B.V. 277-311 (2001).</li>
<li>Walantus, W., Elias, L., Kriegstein, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+utero+intraventricular+injection+and+electroporation+of+E16+rat+embryos%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">In utero intraventricular injection and electroporation of E16 rat embryos.</a> J. Vis. Exp. (6), e236-e236 (2007).</li>
<li>Paxinos, G., Watson, C. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aPaxinos%2C+G+%22The+Rat+Brain+in+Stereotaxic+Coordinates%22">The Rat Brain in Stereotaxic Coordinates</a>. , Academic Press. (1986).</li>
<li>Paxinos, G., Watson, C. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aPaxinos%2C+G+%22The+Rat+Brain+in+Stereotaxic+Coordinates%22">The Rat Brain in Stereotaxic Coordinates</a>. , Academic Press/Elsevier. (2007).</li>
<li>Swanson, L. W. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aSwanson%2C+LW+%22Brain+Maps%3A+Structure+of+the+Rat+Brain%22">Brain Maps: Structure of the Rat Brain</a>. , Elsevier. (1992).</li>
</ol>

De auteurs hebben niets te onthullen.

Het belangrijkste doel van deze video presentatie is om gedrag neurowetenschappers vertrouwd te maken met de basisprincipes van stereotaxische chirurgie. Onderzoekers die al het uitvoeren van stereotaxische operatie kan ook profiteren van deze video en overwegen een deel van de procedurele verbeteringen voor gebruik in hun eigen laboratorium. Een steeds toenemende kennis over het optimaliseren van chirurgische technieken 1-3, de ontwikkeling van nieuwe anesthetica en analgetica voor gebruik in de humane en ve...

<table border="1"><tbody><tr><td> Naam van het reagens </td><td> Vennootschap </td></tr><tr><td> Alcohol 70% </td><td> VWR </td></tr><tr><td> Antisedan (atipamezol) </td><td> Orion </td></tr><tr><td> Atropinesulfaat 0,5 </td><td> Pharmachemie BV </td></tr><tr><td> Bulldog hemostatische klem </td><td> Aesculap </td></tr><tr><td> Canules </td><td> Component Supply Co </td></tr><tr><td> Chloorhexidine 0,5% </td><td> AppepPharma </td></tr><tr><td> Reiniging poeder </td><td> Alconox </td></tr><tr><td> Katoen sticks </td><td> Hartmann BV </td></tr><tr><td> Dexdomitor (dexmedetomidine) </td><td> Orion </td></tr><tr><td> Boren </td><td> Dremel 8000 </td></tr><tr><td> Duratears Z </td><td> Alcon </td></tr><tr><td> Durogrip Naaldvoerder converseren 130mm </td><td> Aesculap </td></tr><tr><td> Durotip Fijne Schaar ret.sp / st 110 mm </td><td> Aesculap </td></tr><tr><td> Gaas </td><td> Medicomp (5x5) </td></tr><tr><td> Verwarming pad </td><td> Harvard Apparatuur </td></tr><tr><td> Insect pins (stiletten) </td><td> Entosphinx (Tsjechië) </td></tr><tr><td> Ketamine 10% (ketamine) </td><td> Alfasan </td></tr><tr><td> Micro-Halsted rechte tip </td><td> Aesculap-dierenarts </td></tr><tr><td> Molinea </td><td> Hartmann BV </td></tr><tr><td> NaCl 0,9% </td><td> Baxter </td></tr><tr><td> Naalden (25G) </td><td> Terumo </td></tr><tr><td> Oximeter </td><td> Edan Instruments, Inc </td></tr><tr><td> Pentobarbital </td><td> Apotheek van het UMCG </td></tr><tr><td> Rimadyl </td><td> Pfizer </td></tr><tr><td> Scalpel nr. 23 </td><td> Swann Morton </td></tr><tr><td> Scalpelholder NR. 4 133 mm </td><td> Aesculap </td></tr><tr><td> Schroevendraaier </td><td> conventionele Hardware Store </td></tr><tr><td> Simplex Rapid (tandheelkundig cement) </td><td> Kemdent </td></tr><tr><td> Schedel schroeven </td><td> Component Supply Co </td></tr><tr><td> Spatel </td><td> VWR </td></tr><tr><td> Spongestan speciale </td><td> Johnson &amp; Johnson </td></tr><tr><td> Stereotacts </td><td> Kopf Instruments </td></tr><tr><td> Chirurgische tang 100mm </td><td> Aesculap </td></tr><tr><td> Hechtmateriaal Safil 5 / 0 </td><td> Aesculap </td></tr><tr><td> Spuit 10 ml </td><td> Omnifix </td></tr><tr><td> Spuit 1 ml </td><td> Terumo </td></tr><tr><td> Spuit 5ml </td><td> Omnifix </td></tr><tr><td> Xylocaine (lidocaïne / adrenaline) </td><td> Astra Zeneca </td></tr></tbody></table>

knaagdier stereotaxische chirurgie en dierenwelzijn outcome verbeteringen voor behavioral neuroscience

Rodent Stereotaxic Surgery and Animal Welfare Outcome Improvements for Behavioral Neuroscience

Stereotaxische chirurgie voor de implantatie van canules in specifieke gebieden van de hersenen is al vele decennia lang een zeer succesvolle experimentele techniek om de effecten van lokaal gemanipuleerd neurotransmitter en signaalwegen in wakker, gedragen dieren te onderzoeken. Bovendien heeft de stereotaxische implantatie van elektroden voor elektrofysiologische stimulatie en het opnemen van studies geweest voor ons huidige begrip van neuroplasticiteit en de hersenen netwerken in gedragen dieren. Steeds toenemende kennis over het optimaliseren van chirurgische technieken bij knaagdieren 1-4, voorlichting te geven over het welzijn van dieren en strenge wetgeving (bijvoorbeeld de 2010 EU-richtlijn over het gebruik van proefdieren 5) voor ons aanleiding om deze chirurgische procedures te verfijnen, met name wat betreft de uitvoering van nieuwe procedures voor toedienen van zuurstof en de continue bewaking van bloedoxygenatie en de hartslag niveaus tijdens de operatie alsde invoering van een gestandaardiseerd protocol voor post-operatieve zorg. Onze waarnemingen wijzen erop dat deze wijzigingen geresulteerd in een verhoogde overleving en een verbetering van de algemene conditie van de dieren na de operatie (bijv. minder gewichtsverlies en een meer actieve dier). Deze video presentatie zal geven van de algemene procedures die betrokken zijn bij dit type van stereotaxische chirurgie met speciale aandacht voor onze verschillende wijzigingen. We zullen illustreren deze chirurgische ingrepen bij ratten, maar het is ook mogelijk om dit type van chirurgie uit te voeren in muizen of andere kleine proefdieren met behulp van speciale adapters voor de stereotaxische apparaat 6.

Stereotaxische operatie aan knaagdieren zorgt voor doelgerichte toediening van geneesmiddelen of elektrische stimulatie en opnamen in wakker gedragen dieren. In deze video presentatie zullen we zien de laatste procedurele verfijningen aan deze langdurige procedure die met succes een verbeterde overleving en verminderde post-operatieve gewichtsverlies.

Knaagdier stereotaxische Chirurgie en Dierenwelzijn Outcome Verbeteringen voor Behavioral Neuroscience

Stereotaxische chirurgie voor de implantatie van canules in specifieke hersengebieden is al decennialang een zeer succesvolle experimentele techniek om ...

Het algemene doel van deze presentatie is om de algemene procedures te tonen die betrokken zijn bij de stereotactische chirurgie voor Kenly-implantatie in specifieke hersengebieden. Met bijzondere aandacht voor procedurele verfijningen van deze langlopende procedure, worden deze verbeteringen hoofdzakelijk gerealiseerd door het monitoren en aanvullen van de bloedzuurstofgehaltes, terwijl gedurende de gehele operatie ook de hartslag en lichaamstemperatuur worden gemonitord. Deze procedurele verfijningen leiden tot een verhoogde overlevingskans en een algemene verbetering van het dierenwelzijn. Het belangrijkste voordeel van deze techniek ten opzichte van standaardmethoden voor stereotactische chirurgie is dat, dankzij onze modificatie, de overleving en het welzijn van de dieren aanzienlijk zijn verbeterd.Over het algemeen zouden personen die niet bekend zijn met deze methode moeite hebben met het plaatsen van de rat in het stereotaxische frame en het bepalen van de coördinaten. Na grondige sterilisatie en autoclavering van het stereotaxische apparaat, begint de procedure met de chirurgische instrumenten door de werkruimte in te richten en het verwarmingskussen voor te verwarmen. Zod

rodent-stereotaxic-surgery-animal-welfare-outcome-improvements-for

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Neurowetenschap

De controle van de extracellulaire neurotransmitter niveaus in verschillende gebieden van de hersenen van vrij bewegende dieren biedt inzichten over het verband tussen neurotransmitters en gedrag. In vivo microdialyse gekoppeld met elektrochemische detectie zorgt voor een uitstekende anatomische en chemische resolutie, en informatie over hoe basale neurotransmissie wordt aangepast door farmacologische of fysiologische manipulaties.

Survivable stereotaxische Chirurgie in Knaagdieren

Gerichte ablatie van specifieke gebied van de hersenen (en) via een infuus van een excitotoxin gebruik van stereotaxische coördinaten beschreven. Deze techniek kan ook worden aangepast voor infusie van andere stoffen in de rat.

Stereotaxische Chirurgie voor excitotoxische laesie van specifieke hersengebieden in de Adult Rat

This video demonstrates the detailed procedure for preparing an anesthetized rat for electrophysiological recordings of brain activity from multiple sites. The scalp is dissected to access the skull, and holes are drilled at precise locations to install and secure electrodes. Tungsten microwire electrodes are then inserted into the targeted location to record the data.

In Vivo Electrophysiological Recordings of Brain Activities from Multiple Sites in Rats

The video demonstrates a procedure for implanting a wireless bidirectional multichannel electrode unit into a rat brain to record and stimulate multichannel neural networks.

Implanting a Wireless Bidirectional Microelectrode System in a Rat Brain

Stereotactische injectie van lentivirussen uiten cDNAs of shRNAs kan genexpressie moduleren in specifieke hersengebieden van muizen. Hier presenteren we een protocol om stereotactische injecties te combineren met gedragsproblemen taken, zoals het open veld Test (OFT) en de Gedwongen Swim Test (FST).

Het toepassen van stereotactische injectie techniek om genetische effecten op Animal Gedrag Studie

Knaagdieren zijn een geschikt model om de moleculaire substraten van gedrag en complexe psychiatrische stoornissen te onderzoeken. Hersenmicro-injectie bij wakkere knaagdieren kan worden gebruikt om ziekte-substraten te verduidelijken. Een efficiënte en aanpasbare hersenmicro-injectiemethode evenals de uitvoering van een operante paradigma dat motivatie kwantificeert wordt gepresenteerd.

Knaagdieren Brain Micro-injectie om te studeren Molecular substraten van gemotiveerd gedrag

We hebben aangetoond dat de innesteling van een micro-elektrode in de motorschors van ratten onmiddellijke en duurzame motor tekorten veroorzaakt. De methoden voorgesteld hierin overzicht een micro-elektrode implantatie chirurgie en drie knaagdier gedrags taken ophelderen van eventuele veranderingen in de fijne of grove motorische functie als gevolg van de implantatie-veroorzaakt schade aan de motorische cortex.

Knaagdier gedrags testen om te beoordelen van functionele tekorten veroorzaakt door micro-elektrode inplanting in de motorschors Rat

Hier wordt een stereotactische procedure beschreven die zich kan richten op uitdagende en moeilijk bereikbare hersengebieden (vanwege ruimtelijke beperkingen) met behulp van een schuine coronale benadering. Dit protocol is aanpasbaar aan zowel muis- als rattenmodellen en kan worden toegepast op diverse neurowetenschappelijke toepassingen, waaronder canule-implantatie en micro-injecties van virale constructies.

Aanpasbare schuine stereotactische benadering voor veelzijdige neurowetenschappelijke technieken

Grondige preklinische testen van geneesmiddelen die handelen in het centrale zenuwstelsel gaat vaak gepaard met het beoordelen en vergelijken van drugs biodistributie in associatie met specifieke routes van toediening. Hier zijn drie veel gebruikte methoden van systemische toediening (intraveneus, intraperitoneaal, en mondeling) en een methode voor lokale levering (convectie-enhanced levering) aangetoond in muizen.

Systemische en lokale Drug Delivery voor de behandeling van ziekten van het centrale zenuwstelsel in knaagdiermodellen

Reageert voor voedsel of drug-gepaarde signalen toeneemt in de loop van een periode van onthouding en dit kan betrekking hebben op een verhoogde gevoeligheid voor terugval gedrag. Hier hebben we een detail procedure voor het beoordelen van deze "incubatie van craving" bij ratten die in eigen beheer sucrose hebben.

Een algemene methode voor het evalueren van Incubatie van sucrose Craving in ratten

Leer verbeterde stereotaxische chirurgie voor knaagdieren met monitoring van zuurstof, hartslag en temperatuur. Deze techniek verhoogt de overlevingskans en verbetert het dierenwelzijn aanzienlijk.

Knaagdier stereotaxische Chirurgie en Dierenwelzijn Outcome Verbeteringen voor Behavioral Neuroscience

Meer video's verkennen