Name: Hydrofobe Salt gemodificeerde Nafion voor enzym immobilisatie en stabilisatie (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-07-11T12:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 16 s
Description: Leer hoe je hydrofoob gemodificeerde Nafion synthetiseert voor enzymimmobilisatie en stabilisatie. Deze methode verbetert de stabiliteit van enzymen tijdens activiteitsassays.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

De auteurs erkennen de Office of Naval Research, Verenigde Soja Board, en de National Science Foundation voor financiering.

1. Wijziging van Nafion met quaternaire ammoniumzouten <ol><li> Schud een fles van 5% w / v Nafion opschorting krachtig gedurende ca. 30 seconden dat Nafion zorgen gelijkmatig gesuspendeerd in oplossing. </li><li> Pipetteer uit 2 ml van het nu opnieuw in suspensie Nafion in een glazen flesje (flacon volume zou kunnen bevatten van 2,5 ml tot 10 ml). </li><li> Meet een 3-voudige molaire overmaat (ten opzichte van de sulfonzuurgroepen aan de Nafion polymeer) van de alkyl ammoniumbromide zout (geschikte massa worden weergegeven in tabel 1) en voeg dit de flacon 2 ml Nafion. </li><li> Vortex de flacon 1500 rpm gedurende 10-15 minuten. </li><li> Giet de viskeuze oplossing in een plastic lade die met een gewicht van ca. 3 x 3 inch, en gebruik een pipet om eventueel resterende oplossing te brengen van het flesje om het weegvlak. </li><li> Laat de oplosmiddelen verdampen uit de wegen boot, waardoor een gele / bruine transparante film op de bodem van de weegvlak (Figuur 2). De snelheid van oplosmiddelverdamping moet zodanig zijn dat het meer dan 6 uur voor oplosmiddel verdampt is. Als het oplosmiddel verdampt te snel, zal een witte, knapperige materiaal in plaats de vorm van een transparante film dat aangeeft dat de micellaire structuur van het polymeer is vernietigd, en je moet opnieuw beginnen met de procedure. Als oplosmiddel verdamping te traag is, kan een de-luchtbevochtiger nodig zijn, omdat er te traag van verdamping meestal leidt tot een kleverig, oranje gel en moet u opnieuw opstarten van de procedure. Typische temperatuurbereik voor verdamping van het oplosmiddel zijn 20 - 37 ° C. De feitelijke omstandigheden voor het drogen zijn afhankelijk van de relatieve vochtigheid en temperatuur in de kamer, maar het is belangrijk dat het drogen wordt langzaam micel structuur te handhaven, maar niet te langzaam om voor gelvorming. </li><li> Vul de wegen boot met 18M Ωcm gedeïoniseerd water (10-20 ml water), dek af en laat het inwerken 12-24 uur om het teveel aan alkyl ammoniumbromide zouten en HBr verwijderen. </li><li&gt; (of pipet) Giet het water en spoel 3 keer met genoeg DI-water om de lade te vullen elke keer. Zorg ervoor dat u een van de polymeerfilm te verliezen tijdens deze stap. </li><li> Laat de weegvlak zitten ontdekt tot het polymeer volledig droog Op dit punt dient het polymeer een duidelijke en enigszins bros folie. Ook als de lucht zeer vochtig, kan ontvochtigingstoestel nodig om de verdamping tijdig vullen. </li><li> Met behulp van een spatel, verwijder voorzichtig de gedroogde film van de weeg-lade en breng deze in een schone glazen flacon. </li><li> Voeg 2 ml ethanol en 3 keramische mengen kralen en vortex 4 uren of totdat de polymeerfilm volledig geresuspendeerd. </li></ol> 2. Immobilisatie van enzymen in TBAB-Modified Nafion voor de activiteit Assays <ol><li> Voor droge enzym weeg 1-10 mg van het enzym in een 1,5 ml microcentrifugebuisje en 1 ml 100 mM pH 7 fosfaatbuffer een 1-10 mg / ml enzym oplossing. For een enzym dat in oplossing gebruiken bicinchoninic zuur (BCA) assay 13 de hoeveelheid eiwit bepalen en voeg een geschikte hoeveelheid van 100 mM fosfaatbuffer het eiwit-concentratie aan 1-10 mg / ml. 1-10 mg / ml komt in principe overeen 1-50 nanomoles / ml. </li><li> 120 pi van 1 mg / ml enzymoplossing, wordt 60 ul van de alkylammonium-gemodificeerde Nafion oplossing en vortex 10 seconden. (Dit mengsel kan worden opgeschaald voor grote aantallen replica. Houd de enzym-to-polymeeroplossing ratio op 2:1.) </li><li> Pipetteer 60 pi van het enzym / polymeeroplossing in de bodem van drie aparte 1 cm2 cuvetten, en laat een nacht drogen. </li></ol> 3. Analyse van geïmmobiliseerde NAD-afhankelijke dehydrogenase-enzym <ol><li> Om de cuvet toevoegen 1,3 ml 50 mM natriumpyrofosfaat (pH 8,8), 1,5 ml 15 mM NAD (vers bereide) en 0,1 ml water. </li><li> Plaats de cuvette in een UV / Vis spectrofotometer (dat wil zeggen ThermoScientific Evolution 260 Bio en Thermo Spectronic Genesys 20) ingesteld op een golflengte van 340 nm. </li><li> Nul de spectrometer, en voeg vervolgens 0,1 ml ethanol. Meng de reagentia door voorzichtig pipetteren de oplossing op en neer 5 keer. Voor een leeg gebruik 0,1 ml van extra water in plaats van 0,1 ml ethanol. </li><li> Neem de absorptie bij 340 nm na 5 minuten na de reagentia werden toegevoegd aan de cuvet en 20 minuten na. Zet de twee gegevens op een helling kan worden gebruikt voor activiteit berekeningen krijgen. </li></ol> 4. Analyse van geïmmobiliseerde PQQ-afhankelijke dehydrogenases <ol><li> Om de cuvet, voeg 1,5 ml natriumfosfaat (pH 7,3) en 200 pi van 600 pM PMS. </li><li> Plaats de cuvette in een UV / Vis spectrofotometer ingesteld op een golflengte van 600 nm, en vervolgens nul de spectrometer. </li><li> Voeg 100 ul van 700 ul DCIP en 200 pi van het substraat van belang (ethanol, aceetaldehyde, glycerol, glucose of glyceraldehyde), en meng de reagentia door voorzichtig pipetteren de solution op en neer 5 keer. Voor een leeg, 200 pl water in plaats van het substraat van belang. </li><li> Neem de absorptie bij 600 nm na 5 minuten na de reagentia werden toegevoegd aan de cuvet en 20 minuten na. </li></ol> 5. Analyse van geïmmobiliseerde glucose-oxidase <ol><li> Om de cuvet toevoegen 2,0 ml van een oplossing die 0,2 M p-hydroxybenzoëzuur, 0,02% (w / v) natriumazide, 128 U peroxidase, 0,3 mM 4-aminoantipyrine, 1 M kaliumfosfaat, en 50 mM glucose. Meng de oplossing en neer te pipetteren 5 maal. </li><li> Plaats de cuvette in een UV / Vis spectrofotometer ingesteld op een golflengte van 510 nm. </li><li> Neem de absorptie bij 510 nm na 5 minuten na de reagentia werden toegevoegd aan de cuvet weer 20 minuten na. </li></ol> 6. Representatieve resultaten De micellaire structuur van de gewijzigde Nafion polymeer kan worden verstoord door het drogen van de oorspronkelijke zout / polymeer co-gegoten film te fast. Figuur 2 toont een zout / polymeermengsel dat gedroogd kunnen resulteert in een transparante, lichtbruine film. Een film die te snel opdroogt kan resulteren in ondoorzichtige witte vlokken polymeer door het feit dat het droogproces kan de micellaire structuur vernietigen. Zodra de gewijzigde Nafion polymeer en enzym zijn gemengd en samen gieten op de bodem van een cuvet, kan enzymatische activiteit metingen worden gebruikt om de stabiliteit van het enzym in de polymeerfilm beoordelen. Tabellen 2-4 tonen testresultaten van twee dehydrogenase enzymen en glucose oxidase geïmmobiliseerd in verschillende gemodificeerde Nafion films, respectievelijk. Let op de hogere activiteit van de enzymen die zijn geïmmobiliseerd opzichte van de enzymen in buffer oplossing blijkt dat gemodificeerde polymeren Nafion feite kan de activiteit van enzymen (de zogenaamde superactivity) te verbeteren. Andere enzymen transport beperkingen die de specifieke activiteit te verminderen wanneer ze immobiliseren in het polymeer (ie cellulases en amylasen, waarvan substraten zijn vrij grote macromoleculen). <table border="1"><tbody><tr><td> Gebruikte quaternaire ammoniumzout </td><td> 3 voudige overmaat </td></tr><tr><td> T3A (tetrapropylammonium bromide) </td><td> 32,37 mg / ml </td></tr><tr><td> TBAB (tetrabutylammoniumbromide) </td><td> 39,19 mg / ml </td></tr><tr><td> TPAB (tetrapentylammonium bromide) </td><td> 46,01 mg / ml </td></tr><tr><td> Teha (triethylhexylammonium bromide) </td><td> 32,37 mg / ml </td></tr><tr><td> TMHA (trimethylhexylammonium bromide) </td><td> 27,25 mg / ml </td></tr><tr><td> TMOA (trimethyloctylammonium bromide) </td><td> 30,66 mg / ml </td></tr><tr><td> TMDA (trimethyldecylammonium bromide) </td><td> 34,07 mg / ml </td></tr><tr><td> TMDDA (trimethyldodecylammonium bromide) </td><td> 37,48 mg / ml </td></tr><tr><td> TMTDA (trimethyltetradecylammonium bromide) </td><td&gt; 40.89 mg / ml </td></tr><tr><td> TMHDA (trimethylhexadecylammonium bromide) </td><td> 44,31 mg / ml </td></tr><tr><td> TMODA (trimethyloctadecylammonium bromide) </td><td> 47,71 mg / ml </td></tr></tbody></table> Tabel 1. Hoeveelheden tetra-alkyl ammoniumzouten te gebruiken voor Nafion polymeermodificatie. <table border="1"><tbody><tr><td> Type Nafion </td><td> Enzym-activiteit (U / g) </td></tr><tr><td> Buffer (geen polymeer) </td><td> 16,63 ± 8,11 </td></tr><tr><td> Nafion (un-mod.) </td><td> 9,25 ± 2,21 </td></tr><tr><td> TMTDA </td><td> 3,23 ± 2,92 </td></tr><tr><td> TBAB </td><td> 3,93 ± 3,33 </td></tr><tr><td> TMDDA </td><td> 4,19 ± 1,04 </td></tr><tr><td> TMOA </td><td> 3,51 ± 1,11 </td></tr><tr><td> TMDA </td><td> 8,00 ± 4,53 </td></tr><tr><td> TMHA </td><td> 1,68 ± 1,39 </td></tr><tr><td> TMHDA </td><td> 4,83 ± 0,99 </td></tr><tr><td> TMODA </td><td> 10,45 ± 3,20 </td></tr></tbody></table> Tabel 2 NAD-afhankelijke glucosetransportsysteem dehydrogenase activiteit geïmmobiliseerd in geselecteerde gemodificeerde polymeren Nafion (opmerking: geïmmobiliseerd activiteit is een functie van eerste specifieke activiteit van het enzym).. <table border="1"><tbody><tr><td> Type Nafion </td><td> Enzymactiviteit (mU / g) </td></tr><tr><td> Buffer (geen polymeer) </td><td> 7,18 ± 0,51 </td></tr><tr><td> Nafion (un-mod.) </td><td> 70,1 ± 0,5 </td></tr><tr><td> TMTDA </td><td> 133 ± 6 </td></tr><tr><td> TBAB </td><td> 244 ± 4 </td></tr><tr><td> TMDDA </td><td> 221 ± 6 </td></tr><tr><td> TMOA </td><td> 1,78 ± 0,63 </td></tr><tr><td> TMDA </td><td> 206 ±5 </td></tr><tr><td> Teha </td><td> 40,1 ± 50,6 </td></tr><tr><td> TMHDA </td><td> 0 </td></tr><tr><td> TMODA </td><td> 1,45 ± 0,06 </td></tr></tbody></table> Tabel 3 PQQ-afhankelijk glucose dehydrogenase activiteit geïmmobiliseerd in geselecteerde gemodificeerde polymeren Nafion (opmerking: geïmmobiliseerd activiteit is een functie van eerste specifieke activiteit van het enzym).. <table border="1"><tbody><tr><td> Type Nafion </td><td> Enzym-activiteit (U / g) </td></tr><tr><td> Buffer (geen polymeer) </td><td> 103,61 ± 3,15 </td></tr><tr><td> Nafion (un-mod.) </td><td> 19,93 ± 10,10 </td></tr><tr><td> TMTDA </td><td> 247,25 ± 12,49 </td></tr><tr><td> TBAB </td><td> 152,27 ± 5,29 </td></tr><tr><td> TMDDA </td><td> 262,05 ± 6,26 </td></tr><tr><td> TMOA </td><td> 129,18 ± 2,31 </td></tr&gt; <tr><td> TMDA </td><td> 141,23 ± 1,97 </td></tr><tr><td> TMHA </td><td> 131,75 ± 2,89 </td></tr><tr><td> TMHDA </td><td> 132,50 ± 1,18 </td></tr><tr><td> TMODA </td><td> 136,50 ± 0,96 </td></tr></tbody></table> . Tabel 4 Representatieve glucoseoxidase specifieke activiteit geïmmobiliseerd in geselecteerde gemodificeerde polymeren Nafion (opmerking: geïmmobiliseerd activiteit is een functie van eerste specifieke activiteit van het enzym). <img alt="Figuur 1" src="/files/ftp_upload/3949/3949fig1.jpg" /> Figuur 1. Schematische voorstelling van TBAB opname in Nafion polymeer en het daaropvolgende gebruik in enzym-immobilisatie. <img alt="Figuur 2" src="/files/ftp_upload/3949/3949fig2.jpg" /> Figuur 2. Optische foto van de eerste co-cast films van Nafion en TBAB. Langzaam drogen levert een transparant, lichtbruin film die de bottom van de weging lade.

<ol><li>Calabrese-Barton, S., Gallaway, J., Atanassov, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enzymatic+biofuel+cells+for+implantable+and+microscale+devices+Chem%5BTitle%5D)+AND+%22Rev%22%5BJournal%5D)">Enzymatic biofuel cells for implantable and microscale devices Chem.</a> Rev. 104, 4867-4886 (2004).</li>
<li>Cracknell, J. A., Vincent, K. A., Armstrong, F. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enzymes+as+Working+or+Inspirational+Electrocatalysts+for+Fuel+Cells+and+Electrolysis%5BTitle%5D)+AND+%22Chem.+Rev%22%5BJournal%5D)">Enzymes as Working or Inspirational Electrocatalysts for Fuel Cells and Electrolysis.</a> Chem. Rev. 108, 2439-2461 (2008).</li>
<li>Minteer, S. D., Liaw, B. Y., Cooney, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enzyme-Based+Biofuel+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Opin.+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Enzyme-Based Biofuel Cells.</a> Curr. Opin. Biotechnol. 18, 228-234 (2007).</li>
<li>Callahan, J. W., Kosicki, G. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Effect+of+Lipid+Micelles+on+Mitochondrial+Malate+Dehydrogenase%5BTitle%5D)+AND+%22Canadian+Journal+of+Biochemistry%22%5BJournal%5D)">The Effect of Lipid Micelles on Mitochondrial Malate Dehydrogenase.</a> Canadian Journal of Biochemistry. 45, 839-851 (1967).</li>
<li>Martinek, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modeling+of+the+Membrane+Environment+of+Enzymes%3A+Superactivity+of+Laccase+Entrapped+into+Surfactant+Reversed+Micelles+in+Organic+Solvents%5BTitle%5D)+AND+%22Biokhimiya%22%5BJournal%5D)">Modeling of the Membrane Environment of Enzymes: Superactivity of Laccase Entrapped into Surfactant Reversed Micelles in Organic Solvents.</a> Biokhimiya. 53, 1013-1016 (1988).</li>
<li>Moore, C. M., Akers, N. L., Hill, A. D., Johnson, Z. C., Minteer, S. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improving+the+Environment+for+Immobilized+Dehydrogenase+Enzymes+by+Modifying+Nafion+with+Tetraalkylammonium+Bromides%5BTitle%5D)+AND+%22Biomacromolecules%22%5BJournal%5D)">Improving the Environment for Immobilized Dehydrogenase Enzymes by Modifying Nafion with Tetraalkylammonium Bromides.</a> Biomacromolecules. 5, 1241-1247 (2004).</li>
<li>Schrenk, M. J., Villigram, R. E., Torrence, N. J., Brancato, S. J., Minteer, S. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+Mixture+Casting+Nafion+with+Quaternary+Ammonium+Bromide+Salts+on+the+Ion-Exchange+Capacity+and+Mass+Transport+in+the+Membranes%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Membr.+Sci%22%5BJournal%5D)">Effects of Mixture Casting Nafion with Quaternary Ammonium Bromide Salts on the Ion-Exchange Capacity and Mass Transport in the Membranes.</a> J. Membr. Sci. 205, 3-10 (2002).</li>
<li>Akers, N. L., Moore, C. M., Minteer, S. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+Alcohol%2FO2+Biofuel+Cells+Using+Salt-Extracted+Tetrabutylammonium+Bromide%2FNafion+Membranes+to+Immobilize+Dehydrogenase+Enzymes%5BTitle%5D)+AND+%22Electrochim.+Acta%22%5BJournal%5D)">Development of Alcohol/O2 Biofuel Cells Using Salt-Extracted Tetrabutylammonium Bromide/Nafion Membranes to Immobilize Dehydrogenase Enzymes.</a> Electrochim. Acta. 50, 2521-2525 (2005).</li>
<li>Sokic-Lazic, D., Minteer, S. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Citric+Acid+Cycle+Biomimic+on+a+Carbon+Electrode%5BTitle%5D)+AND+%22Biosens.+Bioelectron%22%5BJournal%5D)">Citric Acid Cycle Biomimic on a Carbon Electrode.</a> Biosens. Bioelectron. 24, 939-944 (2008).</li>
<li>Arechederra, R. L., Minteer, S. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Complete+Oxidation+of+Glycerol+in+an+Enzymatic+Biofuel+Cell%5BTitle%5D)+AND+%22Fuel+Cells%22%5BJournal%5D)">Complete Oxidation of Glycerol in an Enzymatic Biofuel Cell.</a> Fuel Cells. 9, 63-69 (2009).</li>
<li>Germain, M., Arechederra, R. L., Minteer, S. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nitroaromatic+Actuation+of+Mitochondrial+Bioelectrocatalysis+for+Self-Powered+Explosive+Sensors%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Am.+Chem.+Soc%22%5BJournal%5D)">Nitroaromatic Actuation of Mitochondrial Bioelectrocatalysis for Self-Powered Explosive Sensors.</a> J. Am. Chem. Soc. 130, 15272-15273 (2008).</li>
<li>Addo, P. K., Arechederra, R. L., Minteer, S. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluating+Enzyme+Cascades+for+Methanol%2FAir+Biofuel+Cells+Based+On+NAD%2B-Dependent+Enzymes%5BTitle%5D)+AND+%22Electroanalysis%22%5BJournal%5D)">Evaluating Enzyme Cascades for Methanol/Air Biofuel Cells Based On NAD+-Dependent Enzymes.</a> Electroanalysis. 22, 807-812 (2010).</li>
<li>Smith, P. K., Krohn, R. I., Hermanson, G. T., Mallia, A. K., Gartner, F. H., Provenzano, M. D., Fujimoto, E. K., Goeke, N. M., Olson, B. J., Klenk, D. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Measurement+of+protein+using+bicinchoninic+acid%5BTitle%5D)+AND+%22Analytical+Biochemistry%22%5BJournal%5D)">Measurement of protein using bicinchoninic acid.</a> Analytical Biochemistry. 150, 76-85 (1985).</li>
</ol>

Geen belangenconflicten verklaard.

In de beschreven procedure worden tetra-alkyl ammoniumzouten gebruikt om commerciële Nafion wijzigen om micellaire polymeren die kunnen worden gebruikt immobiliseren en stabiliseren enzymen te maken. De assays beschreven in de procedure zien dat het polymeer kan worden gebruikt om een ​​groot aantal enzymen te immobiliseren met een hoge retentie activiteit. Als het enzym van belang heeft een zeer lage activiteit of onzuiver is, kan een hogere concentratie nodig zijn en mag geen invloed hebben op de immobilisatie proces,...

<table border="1"><tbody><tr><td> Naam van het serum </td><td> Vennootschap </td><td> Catalogusnummer </td></tr><tr><td> Nafion </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> 70160 </td></tr><tr><td> Tetra alkylammonium bromide zouten </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> n / a </td></tr><tr><td> Alcoholdehydrogenase </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> A3263 </td></tr><tr><td> Nicotinamide adenine dinucleotide (NAD) </td><td> Simga-Aldrich </td><td> N7004 </td></tr><tr><td> Natriumpyrofosfaat </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> P8010 </td></tr><tr><td> Fenazine methosulfaat (PMS) </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> P9625 </td></tr><tr><td> 2,6-Dichloroindophenol (DCIP) </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> D1878 </td></tr><tr><td> Glucoseoxidase </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> G7141 </td></tr><tr><td> 4-hydroxybenzoëzuur </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> 240141 </td></tr><tr><td> Natriumazide </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> S8032 </td></tr><tr><td> Peroxidase </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> P8375 </td></tr><tr><td> 4-aminoantipyrine </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> 06800 </td></tr><tr><td> UV / Vis spectrofotometer </td><td> Thermo </td><td> Evolution 260 Bio-of Spectronic Genesys 20 </td></tr><tr><td> Vortex Genie </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Analytische balans </td><td></td><td></td></tr></tbody></taBLE&gt;

hydrofobe salt gemodificeerde nafion voor enzym immobilisatie en stabilisatie

Hydrophobic Salt-modified Nafion for Enzyme Immobilization and Stabilization

In de afgelopen tien jaar is er een schat aan aanvraag voor geïmmobiliseerde enzymen en gestabiliseerd inclusief biokatalyse, biosensoren, en biobrandstof cellen. 1-3 In de meeste bioelectrochemical toepassingen worden enzymen of organellen geïmmobiliseerd op een elektrode-oppervlak met het gebruik van een soort van polymeermatrix. Dit polymeer steiger te houden enzymen stabiel zijn voor de gemakkelijke diffusie van moleculen en ionen in en uit de matrix. De polymeren die voor dit type immobilisatie gebaseerd op polyaminen of polyalcoholen - polymeren die de natuurlijke omgeving van de enzymen die Zij bevatten en stabiliseren het enzym door waterstof of ionische bindingskracht nabootsen. Een andere methode voor het stabiliseren enzymen is het gebruik van micellen die hydrofobe gebieden die ingekapseld en stabiliseren enzymen bevatten. 4,5 name heeft de Minteer groep een micellaire polymeer gebaseerd op commercieel verkrijgbare Nafion. 6,7 Nafionzelf een micellaire polymeer waarmee het kanaal ondersteunde diffusie van protonen en andere kleine kationen, maar de micellen en kanalen zeer klein en het polymeer is erg zuur door sulfonzuur zijketens die ongunstig is voor enzyme immobilisatie. Wanneer echter Nafion wordt gemengd met een overmaat van het hydrofobe alkyl ammoniumzouten zoals tetrabutylammoniumbromide (TBAB), de quaternaire ammonium kationen vervangen protonen en wordt de tegenionen van de sulfonaatgroepen van het polymeer zijketens (figuur 1). Dit resulteert in grotere micellen en kanalen in het polymeer waarmee de verspreiding van grote substraten en ionen die nodig zijn voor enzymatische functie zoals nicotinamide adenine dinucleotide (NAD). Deze gewijzigde Nafion polymeer werd gebruikt om verschillende soorten enzymen en mitochondriën immobiliseren voor gebruik in biosensoren en biobrandstof cellen. 8-12 Dit document beschrijft een nieuwe procedure voor deze micellar polymeer enzym immobilisatie membraan dat kan stabiliseren enzymen. De synthese van de micellaire enzym immobilisatie membraan de procedure voor het immobiliseren enzymen in het membraan en de assays voor het bestuderen enzymatische specifieke activiteit van het geïmmobiliseerde enzym worden hieronder beschreven.

Dit artikel beschrijft de procedure voor het synthetiseren een hydrofobisch gemodificeerd Nafion enzym immobilisatie membraan en hoe eiwitten en / of enzymen te immobiliseren in de membraan en testen hun specifieke activiteit.

Hydrofobe Salt gemodificeerde Nafion voor enzym immobilisatie en stabilisatie

In het afgelopen decennium is er een overvloed aan toepassingen gevonden voor geïmmobiliseerde en gestabiliseerde enzymen, waaronder biocatalyse, biosensoren en biobrandstoffen ...

Het algemene doel van deze procedure is het synthetiseren van een polymeer voor enzymimmobilisatie en -stabilisatie. Om dit te bereiken, combineert u eerst de nafion-suspensie met het ammoniumbromidezout en vortexde het mengsel om de geprotoneerde vorm van nafion uit te wisselen voor ammoniumzouten. De tweede stap is het drogen van het resulterende polymeer door het mengsel in een weegbootje te gieten en de oplosmiddelen te laten verdampen.Week vervolgens het polymeer in gedeïoniseerd water gedurende 12 tot 24 uur om overtollig zout te verwijderen. Spoel na de zoutextractie het polymeer af met water en laat het polymeer vervolgens volledig drogen door verdamping. De laatste stap is om het polymeer over te brengen naar een schoon vial en het opnieuw op te lossen in oplosmiddel voor gebruik bij enzymimmobilisatie. Uiteindelijk wordt dit polymeer voor enzymimmobilisatie gebruikt om de stabiliteit van enzymen in activiteitsassays te verbeteren.Over het algemeen zullen mensen die nieuw zijn met deze methode moeite hebben omdat deze procedure uiterst eenvoudig lijkt, maar de droogprocedure is cruciaal voor de fabricage van een functioneel polymeer. De procedure zal worden gedemonstreerd

hydrophobic-salt-modified-nafion-for-enzyme-immobilization

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Bio-engineering

We presenteren de synthese van een split-inteïne gemedieerde proteïne hydrogel. De bouwstenen van deze hydrogel twee eiwitten copolymeren elk een subeenheid van een trimere eiwit dat fungeert als een verknopingsmiddel en een helft van een gespleten intein. Menging van de twee copolymeren eiwit activeert een inteïne trans-splicing reactie, waarbij een polypeptide eenheid die zelf-assembleert een hydrogel. Deze hydrogel is zeer pH-en temperatuur-stabiele compatibel met organische oplosmiddelen...

Synthese van een inteïne gemedieerde Kunstmatige Protein Hydrogel

Cel-adhesiviteit is essentieel voor veel benaderingen in biomateriaalonderzoek en weefselengineering. Er wordt een stapsgewijze techniek gepresenteerd die gebruik maakt van natte chemie voor de oppervlaktemodificatie van het belangrijke polymeer PTFE met peptiden.

Natte Chemie en Peptide immobilisatie op Polytetrafluoroethyleen voor betere Cel-adhesie

Dit artikel beschrijft praktische methoden om hydrogels te bereiden in vrijstaande films en geïmpregneerde membranen en om hun fysische eigenschappen te karakteriseren, inclusief watertransporteigenschappen.

Synthese van Hydrogels met Antifouling eigenschappen membranen voor waterzuivering

Een efficiënte methode voor de snelle en ion-selectieve ontzilting van radioactief jodium in verschillende waterige oplossingen wordt beschreven met behulp van de gouden nanodeeltjes-geïmmobiliseerd celluloseacetaat membraanfilters.

Een efficiënte methode voor selectief ontzilting van radioactief jodium anionen met behulp van de gouden nanodeeltjes-Embedded membraanfilter

Dit protocol beschrijft de covalente immobilisatie van eiwitten met een heterobifunctional silane koppelmiddel op siliciumoxide oppervlakken ontworpen voor de atomaire kracht microscopie gebaseerd enkel molecuul kracht spectroscopie die wordt geïllustreerd door de interactie van RrgA (pilus-1 tip antistoffen van S. pneumoniae) met fibronectine.

Covalente immobilisatie van eiwitten voor de enkel molecuul Force spectroscopie

Een eenvoudige, reproduceerbare en veelzijdige aanpak voor de synthese van intergrown, polykristallijne metaal-organische kader membranen op een breed scala van ongewijzigde poreuze en niet-poreuze ondersteunt wordt gepresenteerd.

Elektroforetische kristallisatie van ultradunne High-performance metaal-organische kader membranen

Flash NanoPrecipitation (FNP) is een schaalbare benadering voor de productie van polymere core-shell nanodeeltjes. Lab-schaal formuleringen voor de inkapseling van hydrofobe of hydrofiele therapeutics worden beschreven.

NanoPrecipitation Flash voor de inkapseling van hydrofobe en hydrofiele stoffen in polymere nanodeeltjes

Expressie en zuivering van fumarylacetoacetate hydrolase domein-bevattende eiwitten wordt beschreven met voorbeelden (expressie in E. coli, FPLC). De gezuiverde proteïnen worden gebruikt voor kristallisatie en antilichamenproductie en in dienst genomen voor enzym analyses. De geselecteerde fotometrische analyses worden voorgesteld om de multi-functionaliteit van FAHD1 als Oxaloacetaat decarboxylase en acylpyruvate hydrolase te tonen.

Expressie, zuivering, kristallisatie, en enzym assays van Fumarylacetoacetate hydrolase domein-bevattende eiwitten

Deze studie beschrijft klassieke hydratatie met behulp van de dunne lipide-film methode voor de bereiding van nanoliposome gevolgd door nanodeeltjes karakterisatie. Een 47 kDa-hydrofiele en bolvormige proteïne, Tarin, is met succes ingekapseld als een strategie om de stabiliteit te verbeteren, snelle klaring te voorkomen en gecontroleerde afgifte te bevorderen. De methode kan worden aangepast aan hydrofobe moleculen inkaping.

Voorbereiding en karakterisering van Nanoliposomes voor de Entrapment van bioactieve hydrofiele bolvormige eiwitten

Deze studie beschrijft de procedure voor het reconstitueren van het membraaneiwit TWIK-gerelateerd zuurgevoelig K+ -kanaal 2 (Task2) in nanodiscs. De succesvolle assemblage werd bevestigd door single-particle cryo-elektronenmicroscopie, die goed gedefinieerde tweedimensionale klassegemiddelden opleverde.

Een techniek voor het stabiliseren van membraaneiwitten in nanodiscs

Dit protocol beschrijft een reproduceerbare methodologie voor de fabricage van duurzame metaal-organische raamwerk/polymeer-gemengde matrixmembranen en nauwkeurige meting van hun in-vlak protongeleidbaarheid onder variabele temperatuur en vochtigheid met behulp van elektrochemische impedantiespectroscopie, wat nuttig kan zijn voor protonuitwisselingsmembraanbrandstofcellen (PEMFC's).

Het meten van protongeleidbaarheid in MOF-gebaseerde gemengde matrixmembranen met elektrochemische impedantiespectroscopie

Leer hoe je hydrofoob gemodificeerde Nafion synthetiseert voor enzymimmobilisatie en stabilisatie. Deze methode verbetert de stabiliteit van enzymen tijdens activiteitsassays.

Hydrofobe Salt gemodificeerde Nafion voor enzym immobilisatie en stabilisatie

Meer video's verkennen