Name: Direct Inductie van Human neurale stamcellen uit perifeer bloed hematopoïetische voorlopercellen (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-01-28T15:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 6 s
Description: Leer hoe je neurale stamcellen direct induceert uit hematopoëtische voorlopercellen uit perifeer bloed. Deze methode gebruikt CD34+ celverrijking en Sendai-virus transfectie om neuronen, astroglia en oligodendrocyten te genereren.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

De auteurs hebben geen belangenconflicten te melden.

1. Verrijking van hematopoëtische stamcellen uit volwassen volbloed OPMERKING: Hematopoietische voorlopercellen of CD34 + cellen kunnen worden gezuiverd uit perifeer bloed mononucleaire cellen (PBMC) verkregen uit diverse bronnen waaronder navelstrengbloed, leukaferese materiaal en volbloed met dichtheidsgradiënt centrifugatie gebaseerde methoden. De methode die hier wordt vermeld gebruikt volbloed als voorbeeld. <ol><li> Isolatie van PBMC uit volbloed: <ol><li> Voeg 4,5 ml van lymfocyt scheiding medium om de SepMate buis door pipetteren het door de centrale opening van het inzetstuk. </li><li> Verdun het bloedmonster met een gelijk volume steriele DPBS met 2% humaan serum (v / v). Bijvoorbeeld, verdun 5 ml monster met 5 ml van DPBS + 2% humaan serum. </li><li> Voeg het verdunde monster door pipetteren beneden de zijkant van de buis. Zorg ervoor dat u het monster direct giet door het centrale gat. </li><li> Centrifugeer bij 1200 xg gedurende 10 min bij kamertemperatuur. </li><li> Verwijder de bovenstaande vloeistof boven de PMBC laag zorgvuldig. </li><li> Verzamel de PBMC laag (troebel) in een nieuwe buis. </li><li> Voeg 15 ml Dulbecco&#39;s fosfaat-gebufferde zoutoplossing (DPBS) met 2% humaan serum in de buis en centrifugeer bij 150 xg gedurende 10 min bij kamertemperatuur met de rem uitgeschakeld. </li><li> Verwijder het supernatant en resuspendeer de pellet in 15 ml van DPBS met 2% humaan serum. Tel het aantal cellen. </li><li> Centrifugeer bij 690 xg gedurende 10 min bij kamertemperatuur. Verwijder al de bovenstaande vloeistof uit de tube. </li><li> Resuspendeer cellen bij 1 x 10 7 cellen per 15 ml van Iscove&#39;s gemodificeerd Dulbecco&#39;s medium (IMDM) met 1% antibiotica (v / v) en 10% humaan serum (v / v). </li><li> Incubeer de cellen O / N bij 37 ° C in 5% CO2 incubator voor het isoleren van CD34 + cellen. </li></ol></li><li> Positieve selectie van CD34 + cellen uit PBMC met CD34 Multisort Kit: OPMERKING: Werk snel en gebruik voorgekoeld oplossingen aan cellen koud te maken en het afdekken voorkomenvan antilichamen aan het celoppervlak en niet-specifieke cellen per labeling kit instructie. <ol><li> Verzamel alle PMBC&#39;s in een 50 ml buis en tel het totaal aantal cellen in het medium. </li><li> Centrifugeer de cellen bij 300 g gedurende 10 min. Verwijder al het bovenstaande volledig. </li><li> Resuspendeer tot 10 8 cellen per 300 pl in bead buffer (DPBS met 0,5% humaan serum (v / v) en 2 mM EDTA). </li><li> Voeg 100 ul van FcR Blocking reagens en voeg 100 ul van CD34 MultiSortMicroBeads. </li><li> Meng goed en incubeer gedurende 30 minuten in de koelkast (2 - 8 ° C). </li><li> Was de cellen door toevoeging van 2 ml buffer per kraal 10 8 cellen en centrifugeer bij 300 xg gedurende 10 min bij kamertemperatuur. Verwijder supernatant volledig. </li><li> Resuspendeer tot 10 8 cellen in 500 pi buffer. </li><li> Plaats MACS LS kolom in het magnetisch veld van een MACS Separator en kolom bereiden door spoelen met 3 ml buffer kraal. </li><li> Solliciteer celsuspensie op de center van de kolom. Ongelabelde cellen zullen stromen door die kan worden verzameld indien gewenst. </li><li> Waskolom driemaal met 3 ml buffer kraal. </li><li> Verwijder de kolom uit de afscheider en plaats het op een buis van 15 ml. </li><li> Voeg 5 ml van de kraal buffer op de kolom en onmiddellijk spoelen van de magnetisch gelabelde cellen door het indrukken van de zuiger in de kolom. </li><li> Voeg 20 ul van Multisort release Reagens per 1 ml celsuspensie. Meng goed en incubeer gedurende 10 minuten in de koelkast (2 - 8 ° C). </li><li> Voeg 1-2 ml buffer per kraal 10 7 cellen en de cellen gecentrifugeerd bij 300 g gedurende 10 minuten bij kamertemperatuur. Verwijder supernatant volledig. </li><li> Resuspendeer cellen in 50 ui buffer per kraal 10 7 cellen. </li><li> Voeg 30 ul van Multisort stopreagens per 10 7 cellen en incubeer gedurende 15 minuten in de koelkast. </li><li> Voeg 5 ml kralen buffer en centrifugeer de cellen bij 300 g gedurende 10 minuten bij kamertemperatuur. Verwijder het supernatant. </li></ol></li></ol> 2. Afleiding van geïnduceerde neurale stamcellen uit CD34 + cellen <ol><li> CD34 + cellen cultuur: OPMERKING: Vers bereide medium dient binnen 7 dagen te worden gebruikt wanneer ze worden bewaard in de koelkast. Significant CD34 cellen schade kan worden waargenomen na 24 uur maar significante proliferatie van cellen worden gevoeld, vooral na dag 5. Indien het aantal cellen continu afneemt of geen proliferatie, het impliceert ook slechte kwaliteit drager of CD34 cellen en de cellen mag niet worden gebruikt voor de volgende stap. <ol><li> Resuspendeer en cultuur CD34 + cellen in CD34 handhaven medium (StemSpan SFEM medium met humaan trombopoietine (TPO, 100 ng / ml), fms-achtige tyrosine kinase 3 (Flt-3) ligand (100 ng / ml) en stamcelfactor (SCF, 100 ng / ml), interleukine-6 ​​(IL-6, 20 ng / ml) en interleukine-7 (IL-7, 20 ng / ml)) in een 24-well plaat (maximaal 3 x 10 5 / putje in 1 ml medium per putje) bij 37 ° C in 5% CO2 incubator. </li><li> After 24 uur, het verzamelen van de drijvende cellen en centrifuge de cellen op 110 xg bij RT om zich te ontdoen van alle aangesloten cellen en celresten. Verwijder het supernatant en resuspendeer de cellen in 1 ml vers medium en CD34 handhaven zaad in een nieuwe plaat met 24 putjes (1 x 10 5 / putje) bij 37 ° C in 5% CO2 incubator gedurende 5 dagen. </li><li> Vervang de helft van het medium elke andere dag door voorzichtig opzuigen de bovenste helft van supernatant terwijl de CD34 + cellen drijven op de bodem van de putjes (figuur 1A). </li></ol></li><li> Sendaivirus transfectie: <ol><li> Op dag 5, verzamel CD34 cellen en centrifugeer de cellen bij 170 xg gedurende 10 min bij kamertemperatuur. Verwijder het supernatant. </li><li> Resuspendeer de cellen in vers medium met 1 x 10 5 / putje in een 24 putjes plaat in 1 ml medium. </li><li> Ontdooi een cytotune-iPS Sendai herprogrammering kit door eerst onderdompelen van de bodem van de buizen in een 37 ° C waterbad gedurende 10 seconden en vervolgens volledig ontdooien eent RT. Kort centrifuge de buizen en leg ze op ijs. Bereid de Sendai virus mengsel door het mengen van de aanbevolen hoeveelheid van elk genoteerd op het Certificate of Analysis (COA) voor de overeenkomstige veel virus. MOI 15 wordt aanbevolen. </li><li> Voeg Sendai virus mix aan elk putje van CD34-cellen. Meng de putten door zachtjes te schudden. Incubeer de cellen bij 37 ° C in 5% CO2 incubator. </li><li> Let op de transfectie-efficiëntie na 24 uur. Merk op dat celaggregaten en bol vorming, zijn indicatoren voor een succesvolle transfectie (Figuur 1B). </li><li> Wijzig de helft van het medium door voorzichtig overdracht van de bovenste helft van het medium naar het andere goed. Als er cel bollen in de nieuwe well dezelfde hoeveelheid vers medium. </li><li> Veranderen medium elke andere dag, herhaalt u stap 2.2.6. </li></ol></li><li> Neurale stamcellen inductie: Opmerking: Afhankelijk van de cel omstandigheden ongeveer 5 of 7 dagen na transfectie, wordt monolaag hechtende cellen te bereiken 30 -50% confluentie (figuur 1C). <ol><li> Verwijder de supernatanten die drijvende cellen en bollen en voeg 1 ml van neurale medium (Dulbecco&#39;s Modified Eagle Medium: Nutrient Mixture F-12 (DMEM / F12), bestaande uit 1x N2 supplement, 0,1% (w / v) runderserumalbumine ( BSA), 1% (v / v) antibiotica, 20 ng / ml basische fibroblast groeifactor (bFGF), en 20 ng / ml epidermale groeifactor (EGF)) in de hechtende cellen. </li><li> Eventueel dissociëren de cel sferen door voorzichtig pipetteren en centrifugeer de cellen bij 170 xg gedurende 10 min. Verwijder het supernatant en resuspendeer de cellen in 1 ml progenitorceltransplanten medium in een nieuwe plaat met 24 putjes bekleed met Matrigel per instructie als back-up. </li><li> Verander het medium om de andere dag tot in de cellen te bereiken 60-80% samenvloeiing, meestal na 1 week. </li><li> Verwijder het supernatant en voeg in 1 ml van neurale stamcellen medium (serum-vrij medium, NSC SFM). Distantiëren de cellen met een cel schraper gevolgddoor zeer zacht pipetteren. </li><li> Verwijder de cellen en zaden allemaal in één putje van een 6-wells plaat. Voeg nog 1 ml van neurale stamcellen medium tot 2 ml media te maken voor elk putje. Incubeer de cellen bij 37 ° C in 5% CO2 incubator. </li><li> Veranderen medium elke andere dag. </li><li> Wanneer cellen bereikte 60% samenvloeiing, distantiëren en replate de cellen op 1: 3 verhouding van de stappen in 2.3.4 en 2.3.6. </li></ol></li><li> Bevriezing van neurale stamcellen: <ol><li> Bereid neurale stamcellen invriesmedium door toevoeging van 20% dimethylsulfoxide (DMSO) in de neurale stamcellen medium. Houd de bevriezing medium op ijs. </li><li> Distantiëren cellen in een 6-well plaat, met celschraper gevolgd door voorzichtig pipetteren. Tel de cellen. Centrifugeer de cellen bij 170 xg gedurende 10 min bij kamertemperatuur. Verwijder het supernatant. </li><li> Resuspendeer de cellen in neurale stamcellen medium met 1 x 10 6 / ml. Voeg hetzelfde volume ijskoud medium aan de cellen. </li><li> Voeg 1 ml (5 x 10 5 totaal cellen) van cellen in een cryovial. Bevries de cellen met behulp van een Mr. Froster bevriezing container volgens de instructies. </li></ol></li></ol> 3. neurale celdifferentiatie <ol><li> Neuronale cellen differentiatie: <ol><li> Wanneer neurale stamcellen oplopen tot 80% samenvloeiing, maak de neurale stamcellen met een rubberen politieman en vervolgens distantiëren door de pipet voorzichtig. </li><li> Tel de cellen en de concentratie tot 1 x 10 5 / ml passen neurale stamcellen medium. </li><li> Voor neuronale differentiatie, plaat de cellen op poly-D-lysine / laminine beklede dekglaasjes in platen met 24 putjes bij 1 x 10 5 / putje. Incubeer de cellen bij 37 ° C in 5% CO2 incubator. </li><li> Vervang het medium met neurale differentiatie medium (DMEM / F12 met 1x N2 supplement, 1x B27 supplement, 300 ng / ml cAMP, 0,2 mM vitamine C, 10 ng / ml hersenen afgeleide neurotrofe factor (BDNF) en 10 ng / ml gliale cel afgeleide neurotrofe factor (GDNF)) after 24 uur. Incubeer de cellen bij 37 ° C in 5% CO2 incubator. </li><li> Verander neurale differentiatie medium tweemaal per week gedurende 2 weken. </li></ol></li><li> Astrogliale differentiatie: <ol><li> Distantiëren van de neurale stamcellen door pipetteren. </li><li> Tel de cellen en pas de celconcentratie tot 5 x 10 4 cellen / ml. Zaad de cellen op platen met 24 putjes. Incubeer de cellen bij 37 ° C in 5% CO2 incubator. </li><li> Vervang het medium met DMEM / F12 met 10% foetaal runderserum (FBS) en incubeer de cellen bij 37 ° C in 5% CO2 incubator. </li><li> Verander medium tweemaal per week gedurende 2 weken. Als cellen te bereiken samenvloeiing voor 2 weken, replate de cellen volgende stappen 3.2.1 en 3.2.2. </li></ol></li><li> Oligodendrocyte differentiatie: <ol><li> Distantiëren van de neurale stamcellen door pipetteren. </li><li> Tel de cellen en zaad 1 x 10 5 cellen op met poly-L-ornithine beklede platen met 24 putjes in 1 ml oligodendrocyt verscatie medium dat bestaat uit DMEM / F12 met N2 supplement, 10 ng / ml van bloedplaatjes afgeleide groeifactor-AA (PDGF-AA), 2 ng / ml neurotrofine-3 (NT-3), 2 ng / ml sonic hedgehog ( Shh), en 3 nM van triiodothyronine (T3). Incubeer de cellen bij 37 ° C in 5% CO2 incubator. </li><li> Verander medium tweemaal per week gedurende 2 weken. </li><li> Vervang het medium met DMEM / F12 met 1xN2 supplement en 3 nM van T3 en de cultuur van de cellen voor een extra week voor myelinebasiseiwit (MBP) productie. </li></ol></li></ol> 4. Immunofluorescentie kleuring <ol><li> Vervang medium met 4% paraformaldehyde (PFA). Incubeer gedurende 10 minuten bij kamertemperatuur. </li><li> Gooi PFA en wassen met PBS dat 0,1% Triton X-100 (PBS-T) 3 keer 5 minuten elke keer. </li><li> Permeabilize cellen met PBS dat 0,5% Triton X-100 gedurende 10 minuten bij kamertemperatuur. </li><li> Blokkeer de cellen met PBS-T bevattende 4% geit serum gedurende 20 minuten bij kamertemperatuur. </li><li> Incubeer de cellen met bijbehorende primaire Antibosterft verdund in PBS-T met 0,1% BSA gedurende 2 uur bij KT of O / N in koude kamer. </li><li> Was de cellen 3 maal met PBS-T, 5 minuten elke keer. Incubeer de cellen met overeenkomstige secundaire antilichamen gekoppeld aan een fluorochroom met 1: 400 verdunning in PBS-T met 0,1% BSA gedurende 1 uur op een schudder in het donker. </li><li> Was de cellen met PBS-T met 4 &#39;, 6-diamidino-2-fenylindool (DAPI) gedurende 10 min bij kamertemperatuur. </li><li> Was de cellen twee keer met PBS-T gedurende 5 min elk bij kamertemperatuur. </li><li> Let op de gelabelde cellen met behulp van een microscoop en foto&#39;s nemen (figuur 3). </li></ol>

<ol><li>Azari, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Purification+of+immature+neuronal+cells+from+neural+stem+cell+progeny%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">Purification of immature neuronal cells from neural stem cell progeny.</a> PLoS ONE. 6, e20941(2011).</li>
<li>Azari, H., Sharififar, S., Fortin, J. M., Reynolds, B. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+neuroblast+assay%3A+an+assay+for+the+generation+and+enrichment+of+neuronal+progenitor+cells+from+differentiating+neural+stem+cell+progeny+using+flow+cytometry%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">The neuroblast assay: an assay for the generation and enrichment of neuronal progenitor cells from differentiating neural stem cell progeny using flow cytometry.</a> J Vis Exp. (62), (2012).</li>
<li>Takahashi, K., Yamanaka, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+of+pluripotent+stem+cells+from+mouse+embryonic+and+adult+fibroblast+cultures+by+defined+factors%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Induction of pluripotent stem cells from mouse embryonic and adult fibroblast cultures by defined factors.</a> Cell. 126 (4), 663-676 (2006).</li>
<li>Takahashi, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+of+pluripotent+stem+cells+from+adult+human+fibroblasts+by+defined+factors%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Induction of pluripotent stem cells from adult human fibroblasts by defined factors.</a> Cell. 131 (5), 861-872 (2007).</li>
<li>Zhang, N., An, M. C., Montoro, D., Ellerby, L. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+Human+Huntington%27s+Disease+Cell+Model+from+Induced+Pluripotent+Stem+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22PLoSCurr%22%5BJournal%5D)">Characterization of Human Huntington's Disease Cell Model from Induced Pluripotent Stem Cells.</a> PLoSCurr. 2, RRN1193(2010).</li>
<li>Park, I. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Disease-Specific+Induced+Pluripotent+Stem+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Disease-Specific Induced Pluripotent Stem Cells.</a> Cell. 134 (5), 877-886 (2008).</li>
<li>Song, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neural+differentiation+of+patient+specific+iPS+cells+as+a+novel+approach+to+study+the+pathophysiology+of+multiple+sclerosis%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cell+Research%22%5BJournal%5D)">Neural differentiation of patient specific iPS cells as a novel approach to study the pathophysiology of multiple sclerosis.</a> Stem Cell Research. 8 (2), 259-273 (2012).</li>
<li>Vierbuchen, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+conversion+of+fibroblasts+to+functional+neurons+by+defined+factors%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Direct conversion of fibroblasts to functional neurons by defined factors.</a> Nature. 463 (7284), 1035-1041 (2010).</li>
<li>Pfisterer, U., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+conversion+of+human+fibroblasts+to+dopaminergic+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences%22%5BJournal%5D)">Direct conversion of human fibroblasts to dopaminergic neurons.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences. 108, 10343-10348 (2011).</li>
<li>Lee, S. -T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+Generation+of+Neurosphere-Like+Cells+from+Human+Dermal+Fibroblasts%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">Direct Generation of Neurosphere-Like Cells from Human Dermal Fibroblasts.</a> PLoS ONE. 6, e21801(2011).</li>
<li>Thier, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+Conversion+of+Fibroblasts+into+Stably+Expandable+Neural+Stem+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">Direct Conversion of Fibroblasts into Stably Expandable Neural Stem Cells.</a> Cell Stem Cell. 10 (4), 473-479 (2012).</li>
<li>Lujan, E., Chanda, S., Ahlenius, H., Südhof, T. C., Wernig, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+conversion+of+mouse+fibroblasts+to+self-renewing%2C+tripotent+neural+precursor+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences%22%5BJournal%5D)">Direct conversion of mouse fibroblasts to self-renewing, tripotent neural precursor cells.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences. 109, 2527-2532 (2012).</li>
<li>Wang, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Derivation+of+neural+stem+cells+from+human+adult+peripheral+CD34%2B+cells+for+an+autologous+model+of+neuroinflammation%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">Derivation of neural stem cells from human adult peripheral CD34+ cells for an autologous model of neuroinflammation.</a> PLoS ONE. 8, e81720(2013).</li>
<li>Jin, C. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recombinant+Sendai+virus+provides+a+highly+efficient+gene+transfer+into+human+cord+blood-derived+hematopoietic+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Gene+Ther%22%5BJournal%5D)">Recombinant Sendai virus provides a highly efficient gene transfer into human cord blood-derived hematopoietic stem cells.</a> Gene Ther. 10 (3), 272-277 (2003).</li>
<li>Ban, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficient+generation+of+transgene-free+human+induced+pluripotent+stem+cells+%28iPSCs%29+by+temperature-sensitive+Sendai+virus+vectors%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences%22%5BJournal%5D)">Efficient generation of transgene-free human induced pluripotent stem cells (iPSCs) by temperature-sensitive Sendai virus vectors.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences. 108, 14234-14239 (2011).</li>
<li>Goolsby, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hematopoietic+progenitors+express+neural+genes%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences%22%5BJournal%5D)">Hematopoietic progenitors express neural genes.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences. 100, 14926-14931 (2003).</li>
</ol>

De studie wordt gefinancierd door NIH intramurale fondsen.

Een gedetailleerd protocol direct genereren neurale stamcellen uit perifeer hematopoïetische voorlopercellen voorzien. Vergeleken met fibroblastcellen, humane perifeer bloed toegankelijker. De gepresenteerde protocol meer dan 1 x 10 5 hematopoïetische progenitorcellen, of CD34 positieve cellen kunnen worden verrijkt 10 ml volbloed. Hoewel verontreiniging met bloedplaatjes gewoonlijk niet voorkomen, kan het gemakkelijk worden verminderd door lagere snelheid te centrifugeren en het ...

In vitro neuronale culturen gebruikt als een fundamenteel instrument voor studies van neurologische aandoeningen. Primaire dier (meestal knaagdier) neurale cultures 1, 2 en humane neurale cellijnen afgeleid van gliomen of andere tumoren zijn de meest gebruikt in dergelijke studies. Er is echter erkend dat er aanzienlijke verschillen tussen knaagdieren en menselijke cellen. Veel bevindingen op basis van knaagdieren kan niet worden vertaald naar de mens. Bovendien, met de snelle ontwikkelingen in het analyseren van massale genomische informatie en de relatief gemakkelijke gen bewerken en whole genome sequencing, de trend is steeds meer gericht op het ontdekken van de ziekte vatbaar genen en het afbakenen van hun functies en rollen in specifieke ziekten, die de weinige menselijke neuronale maakt cellijnen hebben slechts beperkte gebruik. Theoretisch, humane primaire neurale culturen afkomstig van monsters van de patiënt zenuwstelsel zijn de beste keuze, maar ze zijn onmogelijk te verkrijgen; vandaar alternatief methODS zijn noodzakelijk. De afgelopen jaren zijn enkele benaderingen nagestreefd, met twee het meest onderscheiden. Na de ontwikkeling van de techniek van het genereren van geïnduceerde pluripotente stamcellen (iPSC) met muis en humane somatische cellen 3, 4, neurale cellen kunnen verder worden gedifferentieerd van hen 5-7. Echter, het genereren en karakteriseren iPSC eist arbeidsintensief, technieken en tijd invoeren, soms zelfs onbetaalbaar. Kort daarna werd een andere benadering ontwikkeld direct transformeren neuronale cellen van somatische cellen 8, 9. Aangezien de resulterende neuronen niet-proliferatieve, beperkt het de toepassing in de intensieve studies en geneesmiddelscreening, die een grote hoeveelheid cellen vereist. Om de voordelen van beide technieken, directe afleiding van neurale stamcellen te nemen / heeft stamcellen uit somatische cellen onderzocht door verschillende groepen 10-12, waarin het moeizame proces van iPSC generatie en karakterisering, maar nog steeds provi omzeiltdes een fatsoenlijk aantal neurale stamcellen voor later neurale differentiatie. We hebben eerder aangetoond dat na de invoering van de Yamanaka transcriptiefactoren in hematopoietische progenitorcellen, neurale stamcellen kunnen direct gegenereerd met een neurale cel selecteren medium 13. Hier melden wij de methode in detail.

<table><tbody><tr><td>Lymphocyte separation medium</td><td>Lonza</td><td>17-829E</td><td>1x</td></tr><tr><td>SepMate</td><td>Stemcell Technologies</td><td>15415</td><td>15 ml</td></tr><tr><td>Human serum</td><td>Invitrogen</td><td>34005-100</td><td></td></tr><tr><td>Antibiotics</td><td>Gibco</td><td>15240-062</td><td>1%</td></tr><tr><td>CD34 MultiSort Kit</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-056-701</td><td></td></tr><tr><td>EDTA</td><td>Cellgro</td><td>46-034-Cl</td><td>2 mM</td></tr><tr><td>MACS LS column</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-042-401</td><td></td></tr><tr><td>StemSpan SFEM medium</td><td>Stemcell Technologies</td><td>9650</td><td>1x</td></tr><tr><td>IMDM</td><td>Quality Biologicals</td><td>112-035-101</td><td>1x</td></tr><tr><td>TPO</td><td>Peprotech</td><td>300-18</td><td>100 ng/ml</td></tr><tr><td>Flt-3</td><td>Peprotech</td><td>300-19</td><td>100 ng/ml</td></tr><tr><td>SCF</td><td>Peprotech</td><td>300-07</td><td>100 ng/ml</td></tr><tr><td>IL-6</td><td>Peprotech</td><td>200-06</td><td>20 ng/ml</td></tr><tr><td>IL-7</td><td>Peprotech</td><td>200-07</td><td>20 ng/ml</td></tr><tr><td>IPS Sendai Reprogramming Kit</td><td>Life Technologies</td><td>A1378001</td><td></td></tr><tr><td>Cell scraper</td><td>Sarstedt</td><td>83.183</td><td></td></tr><tr><td>DMSO</td><td>Sigma</td><td>D2650</td><td></td></tr><tr><td>CryoTube vials</td><td>Thermo</td><td>368632</td><td></td></tr><tr><td>Mr. Frosty container</td><td>Thermo</td><td>5100-0001</td><td></td></tr><tr><td>DMEM/F12</td><td>Life Technologies</td><td>12400-024</td><td>1x</td></tr><tr><td>N2 supplement</td><td>Life Technologies</td><td>17502-048</td><td>1x</td></tr><tr><td>Bovine serum albumin</td><td>Sigma</td><td>A2934</td><td>0.1% (w/v)</td></tr><tr><td>bFGF</td><td>Peprotech</td><td>100-18B</td><td>20 ng/ml</td></tr><tr><td>EGF</td><td>Peprotech</td><td>AF-100-15</td><td></td></tr><tr><td>B27 supplement</td><td>Life Technologies</td><td>17504-044</td><td>1x</td></tr><tr><td>NSC serum free medium</td><td>Life Technologies</td><td>A1050901</td><td>1x</td></tr><tr><td>Poly-D-lysine/laminin coated cover slips</td><td>BD Bioscences</td><td>354087</td><td></td></tr><tr><td>cAMP</td><td>Sigma</td><td>A9501</td><td>300 ng/ml</td></tr><tr><td>Vitamin C</td><td>Sigma</td><td>A0278</td><td>0.2 mM</td></tr><tr><td>BDNF</td><td>Peprotech</td><td>450-02</td><td>10 ng/ml</td></tr><tr><td>GDNF</td><td>Peprotech</td><td>450-10</td><td>10 ng/ml</td></tr><tr><td>Poly-L-ornithine</td><td>Sigma</td><td>P4957</td><td>1x</td></tr><tr><td>PDGF-AA</td><td>Peprotech</td><td>100-13A</td><td>10 ng/ml</td></tr><tr><td>NT-3</td><td>Peprotech</td><td>450-03</td><td>2 ng/ml</td></tr><tr><td>Shh</td><td>Peprotech</td><td>1314-SH/CF</td><td>2 ng/ml</td></tr><tr><td>T3</td><td>Sigma</td><td>T6397</td><td>3 nM</td></tr><tr><td>PFA</td><td>Sigma</td><td>P6148</td><td>4%</td></tr><tr><td>PBS</td><td>Quality Biological</td><td>119-069-101</td><td>1x</td></tr><tr><td>Goat serum</td><td>Sigma</td><td>G9023</td><td>4%</td></tr><tr><td>TritonX-100</td><td>Sigma</td><td>T9284</td><td></td></tr><tr><td>Mouse monoclonal anti-Nestin</td><td>Millipore</td><td>AB5922</td><td>1:1,000 dilution</td></tr><tr><td>Anti-SOX2 antibody</td><td>Applied Stemcell</td><td>ASA0120</td><td>Ready to use</td></tr><tr><td>Mouse anti-βIII-tubulin antibody</td><td>Promega</td><td>G712A</td><td>1:1,000 dilution</td></tr><tr><td>Rabbit anti-GFAP antibody</td><td>Sigma</td><td>G4546</td><td>1:100 dilution</td></tr><tr><td>Anti-O4 antibody</td><td>R&amp;D Systems</td><td>MAB1326</td><td>IgM; 1 ng/ml</td></tr><tr><td>Alexa Fluor 594 goat anti-rabbit antibody</td><td>Life techniologies</td><td>A11012</td><td>1:400 dilution</td></tr><tr><td>Alexa Fluor 488 goat anti-mouse antibody</td><td>Life techniologies</td><td>A11001</td><td>1:400 dilution</td></tr><tr><td>Alexa Fluor 488 goat anti-mouse IgM antibody</td><td>Life techniologies</td><td>A21042</td><td>1:250 dilution</td></tr><tr><td>DAPI</td><td>Sigma</td><td>D9542</td><td>1 µg/ml</td></tr></tbody></table>

direct inductie van human neurale stamcellen uit perifeer bloed hematopoïetische voorlopercellen

Direct Induction of Human Neural Stem Cells from Peripheral Blood Hematopoietic Progenitor Cells

Menselijke ziektespecifieke neuronale cultures zijn essentieel voor het opwekken van in vitro modellen voor menselijke neurologische ziekten. Echter, het gebrek aan toegang tot primaire menselijke adulte neurale culturen verhoogt unieke uitdagingen. Recente ontwikkelingen in geïnduceerde pluripotente stamcellen (iPSC) biedt een alternatieve benadering om neurale culturen uit de huid fibroblasten af ​​te leiden door de patiënt specifieke iPSC, maar dit is een arbeidsintensief proces, vraagt ​​een specifieke deskundigheid en grote hoeveelheden van de middelen, en kan enkele maanden duren. Dit voorkomt de brede toepassing van deze technologie voor de studie van neurologische aandoeningen. Om deze problemen te overwinnen, hebben wij een methode om neurale stamcellen vloeien rechtstreeks voort uit humane volwassen perifeer bloed ontwikkeld en wordt het iPSC afleiding proces. Hematopoietische stamcellen verrijkt humane volwassen perifeer bloed werden in vitro gekweekt en getransfecteerd met Sendai-virus vectoren die transcriptionele factoren Sox2, oktober04/03, Klf4, en c-Myc. De transfectie resultaten morfologische veranderingen in de cellen die verder met humane neurale medium bevattende basische fibroblastgroeifactor (bFGF) en vasculaire endotheliale groeifactor (VEGF) worden geselecteerd. De resulterende cellen worden gekenmerkt door de expressie van neurale stamcel markers, zoals nestine en SOX2. Deze neurale stamcellen kunnen verder worden gedifferentieerd om neuronen, astroglia en oligodendrocyten in bepaalde differentiatie media. Met gemakkelijk toegankelijke humane perifere bloedmonsters, kan deze werkwijze worden toegepast om neurale stamcellen voor verdere differentiatie neurale cellen in vitro modellen van neurologische aandoeningen afgeleid en kunnen studies met betrekking tot de pathogenese en behandeling van deze ziekten bevorderen.

<html> De kwaliteit van CD34 cellen is cruciaal voor het succes van neurale stamcellen transductie. Hoge kwaliteit CD34 cellen woekeren tijdens de eerste paar dagen van de cultuur en verschijnen als niet-klevende, homogeen ronde cellen, zweven net boven de bodem van de cultuur schepen (Figuur 1A). De succesvolle infectie resultaten in cel aggregaten, die zich uitstrekt over de tijd (Figuur 1B), terwijl de niet-specifieke celaggregaten kan optreden tijdens celkweek, die uit te breiden en ...

Een werkwijze werd ontwikkeld om direct voort humane neurale stamcellen van hematopoïetische progenitorcellen verrijkte uit perifere bloedcellen.

Direct Inductie van Human neurale stamcellen uit perifeer bloed hematopoïetische voorlopercellen

Human disease specific neuronal cultures are essential for generating in vitro models for human neurological diseases. However, the lack of access to ...

Het algemene doel van deze procedure is om neurale stamcellen direct te induceren vanuit bloedcellen. Dit wordt bereikt door eerst CD 34 positieve hematopoëtische progenitorcellen uit bloed te verrijken. De tweede stap is het transfecteren van CD 34 cellen met sendi-virus dat transcriptionele factoren bevat.Vervolgens worden de neurale stamcellen verkregen met behulp van selectief medium. De laatste stap is het differentiëren van de geïnduceerde neurale stamcellen tot neuronen, astroglia en oligodendrocyten. Ten slotte wordt immunofluorescentiemicroscopie gebruikt om de resulterende cellen te karakteriseren.Het belangrijkste voordeel van deze techniek ten opzichte van bestaande methoden, zoals de directe differentiatie van neuronen uit fibroblasten of de generatie van iPS-cellen, is dat deze methode het tijdrovende proces van iPS-generatie en cultivatie omzeilt, terwijl er nog steeds een grote hoeveelheid neuronale cellen worden verkregen die kunnen differentiëren tot neuronen. Ik kreeg voor het eerst het idee voor deze methode toen ik merkte dat gehechte, getransfecteerde CD34-cellen eigenlijk zeer sterk leken op primair gecultiveerde neurogene progenitorcellen, wat aantoont dat de procedure effectief is; dit werd bevestigd door Marines, een technicus uit mijn laboratorium. Nadat de CD34-cellen uit perifere mononucleaire bloedcellen zijn geïsoleerd volgens de instructies in het tekstprotocol, wordt gestart met het cultiveren van de CD34-cellen door de CD34-cellen te resuspenderen in CD34-medium en de cellen vervolgens uit te zaaien in een 24-wellplaat met 3 × 10⁵ cellen per well in 1 mL medium.Na incubatie gedurende 24 uur in een weefselkweekincubator bij 37 °C met 5% CO2, worden de drijvende cellen verzameld en wordt de celsuspensie gecentrifugeerd bij 110 ×g bij kamertemperatuur. Verwijder vervolgens het supernatant en resuspendeer de cellen in vers CD34-onderhoudmedium. Zaai een nieuwe 24-wells plaat met 1 × 10⁵ cellen per well in 1 mL medium, incubeer bij 37 °C in een 5% CO2-incubator gedurende vijf extra dagen, waarbij om de dag de helft van het medium wordt vervangen.Aspire zorgvuldig de bovenste helft van het supernatant terwijl de CD 34-cellen zich op de bodem van de putjes bevinden, zoals hier getoond op de vijfde dag. Verzamel na het uitplaten de CD 34-cellen en centrifugeer de cellen gedurende 10 minuten bij 170 ×g bij kamertemperatuur, verwijder het supernatant, resuspendeer de cellen zoals voorheen en zaai een nieuwe 24-wells plaat in met 1 × 10⁵ cellen per putje in 1 mL medium. Ontdooi vervolgens een CytoTune IPS Sendai reprogramming kit.Dompel eerst de onderkant van de buisjes 10 seconden onder in een waterbad van 37 °C en ontdooi ze vervolgens volledig bij kamertemperatuur. Centrifugeer de buisjes kort en plaats ze op ijs. Bereid het Sendai-virusmengsel door het aanbevolen volume van elk virus te mengen, zoals vermeld op het analysecertificaat van het betreffende lot.Een multipliciteit van infectie van 15 wordt aanbevolen. Voeg de Sendai-virusmix toe aan elke put met CD 34-cellen. Meng de putten vervolgens door de plaat voorzichtig te schudden.Incubeer de cellen na 24 uur bij 37 °C in een incubator met 5% koolstofdioxide. Observeer de transductie-efficiëntie. Let op dat celaggregaten en sferen, zoals hier getoond, indicatoren zijn voor een succesvolle transductie.Incubeer de cellen vervolgens gedurende vijf tot zeven dagen in de weefselkweekincubator, zoals hier om de dag wordt getoond, totdat er gehechte cellen verschijnen en deze een confluentie van 30 tot 50% bereiken. Vervang de helft van het medium door de bovenste helft van het medium voorzichtig over te brengen naar een andere well. Indien er celsferen naar de nieuwe well zijn overgebracht, voeg dan een gelijke hoeveelheid vers medium toe.Controleer de confluentie van de cellen met de geïnverteerde microscoop. Wanneer de cellen 30 tot 50% confluent zijn, aspireer dan het supernatant en bewaar dit; voeg vervolgens één milliliter neuraal progenitor-medium toe aan elke well om een reserveplaat te maken. Centrifugeer het bewaarde supernatant met de sferen bij 170 ×g gedurende 10 minuten. Aspireer vervolgens het supernatant en resuspendeer het pellet in neuraal progenitor-medium; zaai dit uit in een met Matrigel gecoate 24-well plaat.Vervang, zoals voorheen, om de dag het medium in elke plaat met cellen totdat de cellen een confluentie van 60 tot 80% bereiken. Dit gebeurt gewoonlijk na één week. Zodra de cellen de vereiste confluentie hebben bereikt, wordt het supernatant afgezogen en wordt aan elke plaat één milliliter neuraal stamcelmedium toegevoegd.Dissocieer vervolgens de cellen met een celschraper, gevolgd door zeer voorzichtig pipetteren. Breng daarna de cellen over van één well van de 24-wells plaat naar één well van een 6-wells plaat.Voeg nog een milliliter medium toe aan de put en plaats, nadat de procedure voor alle putten is herhaald, de zes-putsplaat in de incubator bij 37 °C en 5% CO2. Vervang om de dag het volledige volume medium totdat de cellen een confluentie van 60% bereiken, waarna de cellen gedissocieerd en opnieuw geplaatst worden in een verhouding van 1:3, zoals zojuist getoond, om een deel van de ongedifferentieerde neurale stamcellen te invriezen. Bereid eerst het vriesmedium voor stamcellen voor door 20% dimethylsulfoxide of DMSO toe te voegen aan het neurale stamcelmedium en plaats dit op ijs.Dissocieer vervolgens de cellen in de zeswellplaat met behulp van een celscraper en voorzichtig pipetteren. Bewaar een aliquot van de suspensie voor een cel telling en centrifugeer de cellen daarna 10 minuten bij 170 ×g bij kamertemperatuur. Terwijl de cellen centrifugeren, telt u de cellen in de aliquot suspensie met een hemocytometer of een automatische cel teller en berekent u het volume medium dat nodig is om een celconcentratie van 1 × 10⁶ cellen per milliliter te verkrijgen.Nadat het centrifugeren is voltooid, wordt het supernatant weggegooid en wordt het pellet opnieuw gesuspendeerd in neuraal stamcelmedium op een concentratie van 1 × 10⁶ cellen per milliliter. Voeg vervolgens een gelijk volume vriesmedium toe, pipetteer 5 × 10⁵ cellen in een volume van 1 milliliter in een cryovial en vries de cellen in een vriescontainer in volgens de instructies van de fabrikant. Wanneer de neurale stamcellen in de zes-wellsplaat een confluentie van 80% bereiken, worden ze losgemaakt met een rubberen policeman en vervolgens gedissocieerd door voorzichtig pipetteren.Breng de cel-suspensie over in een steriele buis. Tel de cellen met een hemocytometer of een automatische cel teller en pas de concentratie van de cel-suspensie aan tot 1 × 10⁵ cellen per milliliter met neurale stamcelmedium. Pipetteer vervolgens één milliliter van de cel-suspensie op een met poly-D-lysine en laminine gecoat dekglas in één putje van een 24-wells plaat, nadat deze procedure is herhaald voor het gewenste aantal putjes.Incubeer zoals voorheen gedurende 24 uur. Nadat de incubatietijd is verstreken, wordt het medium geaspireerd en vervangen door neuraal differentiemedium. Incubeer gedurende twee weken bij 37 °C en 5% CO2, waarbij het medium tweemaal per week wordt ververst. Na twee weken.De neurale stamcellen moeten volledig gedifferentieerd zijn, zoals hier getoond, en gereed zijn voor downstream-toepassingen zoals immunofluorescentiekleuring. De eerste twee afbeeldingen tonen aan dat neurale stamcellen nestin en SOX2 tot expressie brengen. Terwijl de derde afbeelding aantoont dat OCT4 niet tot expressie komt, wordt DAPI gebruikt als kernmarker en de schaalbalk representeert 200 microns.Na het volgen van het in de video beschreven differentiatieprotocol, brengen de gedifferentieerde neuronen de neuronale marker beta drie tubuline tot expressie. De menselijke neurale stamcellen kunnen ook worden gedifferentieerd tot gliacellen. Bij differentiatie tot astrocyten brengen de cellen de astrocytaire marker GFAP tot expressie.Ten slotte zijn in deze afbeelding de cellen gedifferentieerd tot oligodendrocyten en brengen zij de oligodendrocytmarker O4 tot expressie. Zodra de methode onder de knie is, kan de generatie van geïnduceerde menselijke neurale stamcellen uit perifeer bloed in ongeveer drie weken worden voltooid.Indien correct uitgevoerd, kunnen de neurale stamcellen verder differentiëren tot neuronen; deze methode omzeilt de langdurige en complexe processen voor de generatie van iPS-cellen en kan na ontwikkeling een eenvoudige optie vormen voor het genereren van patiëntspecifieke neuronale culturen. Deze techniek biedt onderzoekers in het veld van de neurowetenschappen de mogelijkheid om individuele celcultuurmodellering voor diverse neurologische aandoeningen te verkennen, wat de genetische verschillen bij specifieke aandoeningen, in het bijzonder bij monsters van individuele patiënten, beter zou kunnen representeren.

direct-induction-human-neural-stem-cells-from-peripheral-blood

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

Ontwikkelingsbiologie

We hebben een protocol voor de inductie van neuroblasts rechtstreeks van pluripotente menselijke embryonale stamcellen gehouden onder bepaalde voorwaarden met kleine moleculen, die afleiding van een groot aanbod van menselijke neurale voorouders en neuronale celtypes in het ontwikkelen van CNS voor neurale reparatie mogelijk maakt.

Efficiënte Afleiding van de Mens Neuronale voorouders en neuronen van pluripotente menselijke embryonale stamcellen met op kleine moleculen Inductie

Hier laten we een eenvoudige en effectieve protocol voor het genereren van menselijke iPSCs 3-4 ml van perifeer bloed met een lentivirale vector herprogrammering. Herprogrammering van direct beschikbare bloedcellen belooft om het gebruik van IPSC technologie te versnellen door het toegankelijk voor een breder onderzoeksgemeenschap.

Generatie van de mens geïnduceerde pluripotente stamcellen uit perifeer bloed Met behulp van de STEMCCA lentivirale vector

This video demonstrates the reprogramming of peripheral blood mononuclear cells (PBMNCs) into induced neural stem cells (iNSCs) using Sendai virus. Sendai virus is a non-integrating virus that offers an efficient and safe vehicle for reprogramming cells.

Generation of Induced Neural Stem Cells (iNSCs) from Peripheral Blood Mononuclear Cells (PBMNCs): A Sendai Virus-based Procedure to Reprogram PBMNCs into iNSCs

This video demonstrates the direct reprogramming of genetically modified hematopoietic progenitor cells into neuronal stem cells. Transcription factors expressed by hematopoietic progenitor cells trigger a cascade of molecular events facilitating their transformation. Further specific media is used to select and grow induced neuronal stem cells.

Direct Reprogramming of Hematopoietic Progenitor Cells into Neural Stem Cells

Generatie van geïnduceerde pluripotente stamcellen biedt fascinerende perspectieven voor de afleiding van autologe transplantaties. Echter, de progressie door middel van een pluripotente toestand en moeizaam re-differentiatie nog belemmert klinische vertaling. Hier beschrijven we de afleiding van volwassen humane fibroblasten en hun directe omzetting in geïnduceerde neurale progenitor cellen en de daaropvolgende differentiatie tot neuronale lijnen.

Afleiding van volwassen menselijke fibroblasten en hun directe omzetting in Expandable Neural Progenitor Cellen

Dit protocol beschrijft de efficiënte inductie van hemogene endotheel en multipotente hematopoietische progenitorcellen van menselijke pluripotente stamcellen via de geforceerde expressie van transcriptiefactoren.

Direct Inductie van Hemogenic Endotheel en Bloed door overexpressie van transcriptiefactoren in menselijke pluripotente stamcellen

We stellen een protocol voor voor het herprogrammeren van perifere mononucleaire bloedcellen (PBMC's) naar geïnduceerde pluripotente stamcellen (iPSC's). Door de getransduceerde bloedcellen te plaatsen op met matrix beklede platen met behulp van centrifugatie, worden iPSC's met succes geïnduceerd uit zwevende cellen. Deze techniek suggereert een eenvoudig en effectief herprogrammeringsprotocol voor cellen zoals PBMC's en CBMC's.

Geïnduceerde pluripotente stamcellen Generation van Blood Cells Met behulp van Sendai Virus en Centrifugeren

Dit protocol beschrijft een gedetailleerde methode voor efficiënte generatie van integratievrije iPSC's uit menselijke volwassen perifere bloedcellen. Met behulp van vier oriP/EBNA-gebaseerde episomale vectoren om de herprogrammeringsfactoren, KLF4, MYC, BCL-XL, of OCT4 en SOX2 tot expressie te brengen, kunnen duizenden iPSC-kolonies worden verkregen uit 1 mL perifeer bloed.

Generatie van Integratie-free geïnduceerde pluripotente stamcellen uit menselijke perifere mononucleaire bloedcellen behulp Episomaal Vectors

Het protocol presenteert de herprogrammering van perifere bloed mononucleaire cellen voor het opwekken van neurale stamcellen door Sendai virus infectie, differentiatie van iNSCs in Dopaminerge neuronen, transplantatie van de voorlopers van de DA in de eenzijdig-lesioned De ziekte van Parkinson, en de evaluatie van de veiligheid en werkzaamheid van de in de SC afgeleide DA-precursoren voor PD-behandeling.

Generatie van geïnduceerde neurale stamcellen uit perifere mononucleaire cellen en differentiatie naar precursoren voor Dopaminerge neuron voor transplantatie studies

Hier presenteren we een protocol om precies te vormen hemogenic endoteel van menselijke pluripotente stamcellen in een feeder-en xeno-vrije voorwaarde. Deze methode zal hebben brede toepassingen in ziektemodel lering en screening voor therapeutische verbindingen.

Hemogenic endoteel differentiatie van menselijke pluripotente stamcellen in een voeder-en xeno-vrije gedefinieerde voorwaarde

Hier presenteren we een protocol voor immunophenotypic karakterisering en cytokine geïnduceerde differentiatie van snoer bloed afgeleide CD34+ hematopoietische stam en voorlopercellen tot de vier myeloïde lijn. De toepassingen van dit protocol omvatten onderzoeken naar het effect van myeloïde ziekte mutaties of kleine moleculen op myeloïde differentiatie van de CD34+ cellen.

Pan-myeloïde differentiatie van menselijk snoer bloed afgeleid CD34+ hematopoietische stam en voorlopercellen

Leer hoe je neurale stamcellen direct induceert uit hematopoëtische voorlopercellen uit perifeer bloed. Deze methode gebruikt CD34+ celverrijking en Sendai-virus transfectie om neuronen, astroglia en oligodendrocyten te genereren.

Direct Inductie van Human neurale stamcellen uit perifeer bloed hematopoïetische voorlopercellen

Meer video's verkennen