Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Wytwarzanie elektrod amperometrycznych

14.3K wyświetleń

DOI:

10.3791/1040

4 maja 2009

W tym artykule

Podsumowanie

Niniejszy protokół opisuje sposób przygotowania elektrod z włókna węglowego. Elektrody te są następnie wykorzystywane do detekcji uwalniania katecholamin z pęcherzyków za pomocą amperometrii włóknem węglowym.

Streszczenie

Elektrody z włókna węglowego są kluczowe dla detekcji uwalniania katecholamin z pęcherzyków w pojedynczych komórkach podczas pomiarów amperometrycznych. W niniejszym opracowaniu opisujemy techniki niezbędne do wytworzenia elektrod o niskim poziomie szumów (<0,5 pA). Techniki te zostały zmodyfikowane na podstawie opisów opublikowanych przez poprzednich badaczy (1,2). Elektrody wykonuje się poprzez przygotowanie włókien węglowych i indywidualne wprowadzanie ich do każdej rurki kapilarnej z wykorzystaniem próżni z filtrem w celu zasysania włókna. Następnie rurkę kapilarną z włóknem przeciąga się w wyciągaczu do elektrod, tworząc dwie połowy, z których każda posiada cienką, ostrą końcówkę. Elektrody zanurza się w gorącej, płynnej żywicy epoksydowej zmieszanej z utwardzaczem, aby stworzyć uszczelnienie epoksydowo-szklane. Na koniec elektrody umieszcza się w piekarniku w celu utwardzenia żywicy. Ostrożne obchodzenie się z elektrodami jest krytyczne dla zapewnienia ich powtarzalnego wykonania i braku uszkodzeń. Niniejszy protokół przedstawia sposób wytwarzania i przycinania elektrod amperometrycznych do rejestracji z pojedynczych komórek.

Protokół

Część 1: Przygotowanie włókna węglowego

  1. Odetnij pęk włókien węglowych (stosujemy włókna o średnicy 7μm) o długości wynoszącej około 1,25 X długości pipety kapilarnej.
  2. Usuń apreturę, gotując około 100 mL acetonu w naczyniu i umieszczając włókna w gorącym, wrzącym acetonie na 30 minut lub dłużej.
  3. Wyjmij włókna z ciepłego acetonu i przenieś je do czystego zlewki zawierającej 50-100 mL świeżego acetonu.
  4. Wysusz włókna, kładąc pęk na otwartej szalce Petriego o średnicy 150 mm i pozostawiając do wyschnięcia na powietrzu przez noc.

Część 2: Wypalanie końcówek szklanych kapilar

  1. Wypoleruj ogniowo każdą rurkę kapilarną (stosujemy kapilary do mikrohematokrytu o średnicy zewnętrznej 1,5mm, średnicy wewnętrznej 1,3mm i długości 7,5cm), trzymając rurkę w środku pęsetą i wystawiając koniec na działanie płomienia. Obracaj rurkę około 3 razy podczas przebywania w płomieniu.
  2. Odwróć rurkę i umieść przeciwległy koniec w płomieniu, ponownie obracając ją 3 razy.
  3. Umieść wypolerowane ogniowo rurki w szklanym naczyniu i przełóż do pieca do czasu, aż będą gotowe do wypełnienia włóknami węglowymi.

Część 3: Przewlekanie włókna węglowego do rurki kapilarnej

  1. Zgodnie z opisami Machado et al. (2008) oraz Mundroff and Wightman (2002), wciągnij włókno do szklanej rurki, używając plastikowego przewodu podłączonego do pompy próżniowej z filtrem.
  2. Odetnij włókno za pomocą skalpela. Pozostaw ¼ cala włókna poza rurką.

Część 4: Wytwarzanie pipet światłowodowych w wyciągaczu elektrod

  1. Umieść rurkę kapilarną w wyciągaczu elektrod (używamy modelu PP-830 firmy Narishige Japan) i dokręć pokrętła, aby unieruchomić kapilarę.
  2. Użyj przełączników, aby wykonać dwa wyciągnięcia, stosując optymalne ustawienia urządzenia.
  3. Gdy pipeta zostanie wyciągnięta i podzielona na pół, rozdziel obie części, przecinając gołe włókno w centrum za pomocą nożyczek.
  4. Wyjmij każdą z połówek elektrody i pociągnij za wystające włókno, aby przełamać szklaną uszczelkę. Przytnij włókno nożyczkami tak, aby poza rurką pozostało jedynie 1/8 inch włókna.
  5. Powtarzaj kroki 1-4, aż do przygotowania około 16 elektrod włóknistych.

Część 5: Przygotowanie uszczelnienia z epoksydowego szkła

  1. Podgrzać przygotowaną wcześniej alikwot żywicy epoksydowej na płycie grzejnej ustawionej na 55°C przez 6 minut w dygestorium.
  2. Podczas podgrzewania żywicy, owinąć ok. 16 wyciągniętych elektrod w pęk za pomocą taśmy.
  3. Po 6-minutowym podgrzaniu żywicy Epon, dodać 0,7 g MPDA do gorącej żywicy Epon (14%, w/v). Wymieszać, obracając fiolką.
  4. Zanurzyć pęk elektrod w gorącym roztworze żywicy epoksydowej z utwardzaczem. Po około 20 s odpowiednia ilość żywicy wpłynie do szklanych końcówek dzięki działaniu kapilarnemu.
  5. Rozwiązać pęk, ułożyć elektrody na tekturze z nacięciami i umieścić tackę w piekarniku ustawionym na 100°F.
  6. Po co najmniej 48 godzinach zbadać każdą elektrodę pod mikroskopem stereoskopowym. Odrzucić elektrody, które nie wypełniły się żywicą, mają zmiażdżoną końcówkę, zawierają więcej niż jedno włókno itp. Po sprawdzeniu każdej elektrody umieścić je z powrotem w uchwycie tekturowym i ponownie włożyć do piekarnika. Elektrody są zazwyczaj zdatne do użytku przez około 1 miesiąc od momentu wykonania.

Część 6: Cięcie włókna węglowego

  1. Ostrożnie umieść elektrodę z włókna węglowego na szkiełku przedmiotowym za pomocą taśmy teflonowej.
  2. Obejrzyj końcówkę pod mikroskopem stereoskopowym.
  3. Używając czystego ostrza skalpela, wykonaj cięcie prostopadłe do włókna węglowego, aby uzyskać płaską i czystą powierzchnię umożliwiającą przykładanie włókna do komórki.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Niniejszy protokół opisuje sposób wytwarzania i przycinania elektrod amperometrycznych. Podczas pomiarów amperometrycznych elektrodę z włókna węglowego umieszcza się przy powierzchni komórki wydzielniczej. Aktywność egzocytarną obserwuje się w postaci skoków amperometrycznych, które wskazują na prąd elektrochemiczny wywołany transferem elektronów po utlenieniu katecholamin. Dzięki praktyce w wykonywaniu i przycinaniu elektrod amperometrycznych można znacznie zredukować poziom szumów w porównaniu do wielu dostępnych komer...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Podziękowania

Dziękujemy dr. Aaronowi P. Foxowi z University of Chicago, w którego laboratorium protokół ten został pierwotnie opracowany, oraz Williamowi Rodenowi (Saint Louis University) za jego dalszy rozwój.

Dziękujemy fundacji Whitehall Foundation oraz National Science Foundation za wsparcie.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Utwardzacz epoksydowy, płatki 1,3-fenylenodiaminyOdczynnikSigma-AldrichP23954-100G04 716AJAliquoty przechowuje się w eksykatore i nie należy ich wystawiać na działanie światła.
Włókna węgloweMateriałGoodfellowC005725
Kapilary do mikrohematokrytuMateriałFisher ScientificNC9836768
Żywica epoksydowaOdczynnikMiller-StephensonEpon Resin 828
Mikroskop stereotypowyInstrument
Wytwornica elektrod (puller)InstrumentNarishige InternationalPP-8301. wyciągnięcie = 24.8 °C; 2. wyciągnięcie = 62.7 °C
PiecInstrumentustawiony na 100 °F.
Płyta grzewczaInstrumentustawiona na 55 °C

Bibliografia

  1. Mundorf, M. L., Wightman, R. M. Amperometry and cyclic voltammetry with carbon fiber microelectrodes at single cells. Curr Protocols in Neurosci. 6 (14), 1-6 (2002).
  2. Machado, D. J., Montesinos, M. S., Borges, R. Good practices in single-cell amperometry. Methods in Molec. Biol. 440, 297-313 (2008).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Tagi

Elektrody z w kna w glowegowytwarzanie elektrodwyci ganie rurek kapilarnychuszczelnienie z ywic epoksydowej i szk adetekcja katecholaminrejestracja z pojedynczej kom rkipomiary pyrometryczneelektrody niskoszumoweci cie elektrod wiat owodowych