Artykuł metodologiczny

Kontrolowane uwalnianie dwutlenku chloru w systemie opakowań perforowanych w celu przedłużenia okresu przechowywania i poprawy bezpieczeństwa pomidorów winogronowych

DOI:

10.3791/55400

⸱

7 kwietnia 2017

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1USDA, ARS, USHRL, 2Indian River Research and Education Center, University of Florida, 3Worrell Water Technologies, LLC

W tym artykule

Podsumowanie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Tutaj opisujemy protokół stosowania nowatorskiego, wolno uwalniającego się produktu ClO2, który zmniejsza psucie się i wydłuża okres przydatności do spożycia świeżych owoców. Produkt ClO2 o powolnym uwalnianiu został dodany do standardowego opakowania komercyjnych pomidorów winogronowych i przetestowany przeciwko Escherichia coli i Alternaria alternata.

Streszczenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Torebka z dwutlenkiem chloru (ClO2) o kontrolowanym uwalnianiu została opracowana przez uszczelnienie zawiesiny ClO2 w półprzepuszczalnej folii polimerowej; właściwości uwalniania torebki były monitorowane w pojemnikach z owocami lub bez. Saszetka została umieszczona po wewnętrznej stronie perforowanej muszli zawierającej pomidory winogronowe, a wpływ na populację drobnoustrojów, jędrność i utratę masy ciała oceniano podczas 14-dniowego okresu przechowywania w temperaturze 20 °C. W ciągu 3 dni stężenie ClO2 w muszlach osiągnęło 3,5 ppm i utrzymywało się na stałym poziomie do 10 dnia. Następnie spadł do 2 ppm do 14 dnia. Woreczek ClO2 wykazywał silną aktywność przeciwdrobnoustrojową, zmniejszając populacje Escherichia coli o 3,08 log CFU/g i populacje Alternaria alternata o 2,85 log CFU/g po 14 dniach przechowywania. Zabieg ClO2 zmniejszył również zmiękczenie i utratę masy ciała oraz wydłużył ogólny okres przydatności do spożycia pomidorów. Nasze wyniki sugerują, że obróbka ClO2 jest przydatna do przedłużenia okresu przydatności do spożycia i poprawy bezpieczeństwa mikrobiologicznego pomidorów podczas przechowywania bez pogarszania ich jakości.

Wprowadzenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Dieta bogata w świeże owoce i warzywa może pomóc zmniejszyć ryzyko wielu chorób, w tym choroby niedokrwiennej serca i określonych rodzajów nowotworów1. Istnieje jednak wiele patogenów mikrobiologicznych przenoszonych przez żywność, takich jak Escherichia coli, Salmonella enterica i Listeria monocytogenes, związanych ze spożywaniem świeżych owoców i warzyw, które mogą powodować choroby, a nawet śmierć wśród konsumentów spożywających skażone produkty2. Na przykład ogniska E. coli O157:H7 zostały powiązane z winogronami, pomidorami i truskawkami3,4, a ogniska zapalenia wątroby typu A zostały powiązane ze świeżymi borówkami5. Ponadto zanieczyszczenie mikrobiologiczne może powodować znaczne straty produktu w wyniku rozkładu po zbiorach6. Alternaria alternata jest ważnym grzybem chorobotwórczym dla roślin, o którym wiadomo, że powoduje plamistość liści i inne choroby u ponad 380 gatunków roślin żywicielskich7. Wykazano, że jest to przyczyna czarnej plamistości Alternaria class8, choroby raka łodyg i zarazy liści pomidorów9. W związku z tym potrzebna jest bezpieczna i skuteczna dekontaminacja po zbiorach, zarówno w celu zwalczania patogenów przenoszonych przez żywność, jak i zapobiegania rozkładowi świeżych produktów po zbiorach.

Technologie nisko- i bezpozostałościowe to nowe trendy dla alternatywnych środków dezynfekujących. Różne fungicydy pożniwne stosowano w celu zmniejszenia organizmów powodujących psucie się żywności i zapobiegania chorobom przenoszonym przez żywność. Wykazano, że ozon, silny środek przeciwdrobnoustrojowy, zachowuje jakość i świeżość truskawek i jagód10,11. Jednak ozon może powodować utlenianie tkanki powierzchniowej owoców i może powodować przebarwienia oraz pogorszenie jakości smaku12. Chlor był używany do dezynfekcji świeżych produktów, takich jak jagody i jabłka13. Chociaż chlor jest skuteczny, może reagować ze związkami zawierającymi azot lub amoniakiem, powodując rakotwórcze produkty uboczne14, zwłaszcza gdy jest używany do odkażania świeżych owoców15.

Dwutlenek chloru (ClO2), alternatywny środek dezynfekujący, został zatwierdzony zarówno przez Chiny, jak i Stany Zjednoczone do obróbki owoców i warzyw po zbiorach16. ClO2 jest rozpuszczalnym w wodzie utleniaczem o zdolności utleniania 2,5 razy większej niż wolny chlor17. ClO2 jest wysoce skuteczny w niskich stężeniach i przy krótkim czasie kontaktu18. ClO2 ma niską toksyczność i minimalną korozyjność w stężeniach stosowanych do dezynfekcji i jest uznawany za jeden z najskuteczniejszych środków bakteriobójczych i grzybobójczych do stosowania w różnych warunkach19,20,21.

Liczne wyniki badań wykazały, że ClO2 może kontrolować patogeny przenoszone przez żywność i rozkład po zbiorach16. Na przykład gaz ClO2 został użyty do inaktywacji L. monocytogenes, Salmonelli i E. coli O157:H7 oraz do zapobiegania psuciu się jagód i truskawek22,23. Gaz ClO2 zmniejsza ryzyko skażenia mikrobiologicznego przy jednoczesnym zachowaniu właściwości świeżych owoców i był skuteczny w kontrolowaniu rozkładu truskawek po zbiorach24. Jest jednak niestabilny przy wysokich stężeniach i nie nadaje się do transportu, co w przeszłości wymagało kosztownych generatorów na miejscu lub nieefektywnego dwuskładnikowego mieszania proszków.

Jednakże, nowy produkt ClO2 z gotowym preparatem o kontrolowanym uwalnianiu (tzn. nie wymaga generatora ani wstępnego mieszania składników) okazał się wysoce skuteczny w kontrolowaniu organizmów psujących żywność i patogenów we wstępnych eksperymentach25. Jest to bezpieczna, opłacalna, niekorozyjna, łatwa w transporcie i o kontrolowanym uwalnianiu forma ClO2, bez negatywnego wpływu na środowisko. Poprzednie eksperymenty wykazały, że ten wolno uwalniający się proszek ClO2 owinięty materiałem filtracyjnym i umieszczony w opakowaniu typu clamshell znacznie zmniejszył rozkład świeżych jagód i truskawek, zmniejszył utratę wody z jagód i utrzymał jędrność owoców podczas przechowywania po zbiorach25,26. Niedawno opracowano pakiet ClO2 o kontrolowanym uwalnianiu poprzez uszczelnienie zawiesiny ClO2 w półprzepuszczalnej folii polimerowej. Cele tych prac obejmowały: 1) monitorowanie właściwości uwalniania gazu ClO2 zarówno w zamkniętym pojemniku, jak i w perforowanych muszlach, 2) zbadanie wpływu torebki ClO2 o kontrolowanym uwalnianiu zamkniętej w pojemniku na patogeny przenoszone przez żywność i rozkład pomidorów winogronowych oraz 3) ocena wpływu ClO2 o kontrolowanym uwalnianiu na jakość przechowywania pomidorów winogronowych.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Pomiar stężenia gazu ClO2 w przestrzeni nad głową zamkniętej komory

  1. Zaopatrz się w materiały: torebkę ClO2 (0,5 g zawiesiny ClO2 (9,5% a.i.) w folii polimerowej dobranej ze względu na szybkość uwalniania (całkowita powierzchnia 6 cm2); dokładne składniki są zastrzeżone), szklaną komorę (19,14 l) oraz pokrywę z przełączanym wlotem i wylotem gazu.
  2. Przymocuj woreczek ClO2 do pokrywy za pomocą taśmy dwustronnej.
  3. Zamknij komorę, uszczelniając pokrywę wazeliną.
  4. Podłączyć wlot i wylot detektora gazu ClO2 do komory.
    UWAGA: Jest to system cyrkulacji gazu i podczas wykonywania pomiarów nie wystąpiła utrata gazu.
  5. Włączyć dopływ i wylot gazu i zmierzyć stężenie ClO2 w komorze po inkubacji przez 0, 1, 2, 3, 4, 24, 26, 28 i 48 godzin.
  6. Monitoruj temperaturę i wilgotność względną (RH) w komorze za pomocą rejestratorów temperatury i wilgotności względnej.

2. Przygotowanie i przechowywanie owoców

  1. Kup 15 kg świeżych pomidorów winogronowych (Solanum lycopersicum var. cerasiforme) od lokalnego sprzedawcy. Upewnij się, że owoce są zdrowe i nie mają wad wizualnych.
  2. Przygotowanie inokulum
    1. Do inokulacji należy użyć szczepów E. coli (typu dzikiego) i A. alternata z powierzchni owoców cytrusowych27.
    2. Hodowla E. coli na agarze E. coli (ECA) w temperaturze 35 °C przez 1 dzień27, a następnie ponowna hodowla organizmów na nowej płytce przez 1 dzień. Potwierdzić obecność organizmów, pobierając próbki z płytek ECA za pomocą pętli bac, rozprowadzając smugi bakterii na agarze z błękitem mezynowym Levine'a (EMB) i inkubując przez 24 godziny w temperaturze 35 °C; kultury, które zmieniają kolor na odblaskowy, metaliczny zielony, są pozytywne dla E. coli.
    3. Kultura A. alternata na agarze z dekstrozą ziemniaczaną (PDA) w temperaturze 25 °C aż do pojawienia się zarodników.
    4. Zeskrobać komórki E. coli z płytki agarowej do 50 ml sterylnej wody destylowanej, aż szacowane stężenie osiągnie 9 log CFU/ml, porównując je z równoważnymi wzorcami zmętnienia McFarlanda. Dodać 1950 ml sterylnej wody zawierającej 0,1% Tween-20, aby uzyskać łącznie 2 litry końcowego inokulum.
    5. Sprawdzić stężenie komórek przez rozcieńczenie na płytkach z agarem EC. Zeskrob zarodniki A. alternata z pożywki hodowlanej i zawieś je w 2 l sterylnej wody destylowanej zawierającej 0,1% Tween-20,
      UWAGA: Ostateczna populacja E. coli wynosiła 7,5 log CFU/g, a populacja A. alternata wynosiła 5,5 log CFU/g.
  3. Umieść 7 kg pomidorów na 10-litrowej patelni ze stali nierdzewnej, która jest całkowicie przykryta torbą do sterylizacji w autoklawie. Umieść torbę i patelnię w kapturze bezpieczeństwa. Nanieś roztwór inokulum (2 l) na owoce za pomocą opryskiwacza spustowego nakładanego od góry, delikatnie mieszając owoce dłonią w rękawiczce.
    1. Po 5 minutach ułóż pomidory w jednej warstwie na wysterylizowanych arkuszach i pozostaw do wyschnięcia na powietrzu przez 2 godziny. Włóż około 200 g owoców każdy do dwudziestu czterech perforowanych muszli o wadze 1 funta (~1,14 l).
  4. Ostrożnie złóż zanieczyszczone folie i umieść je na stalowej patelni. Zdejmij rękawiczki i włóż je na patelnię. Owinąć worek nadający się do sterylizacji w autoklawie i autoklawować wszystkie zanieczyszczone materiały w temperaturze 121 °C przez 25 minut.
  5. Przymocuj woreczki ClO2 do pokrywek 12 muszli. Użyj pozostałych 12 klapek jako elementów sterujących. Zważ każdą całą muszlę. Owoce przechowywać w temperaturze 20 °C przez 14 dni.
  6. Próbki należy pobierać w dniach 3, 7, 10 i 14. Pobrać próbkę z trzech małży, reprezentujących 3 kontrpróby, na zabieg dziennie.

3. Monitorowanie stężenia ClO2 w muszlach

  1. Włóż rurkę wlotową i wylotową detektora gazu ClO2 do środka muszli, zachowując odległość 2 cm między dwoma końcami i wykonaj pomiar ClO2 w dniach 3, 7, 10 i 14.

4. Określanie populacji drobnoustrojów i cech jakości owoców

  1. Mieszać 5 owoców (około 60 g) z każdej kontrpróby z prędkością 100 obr./min przez 1 godzinę w wysterylizowanej torbie do pobierania próbek wraz z 99 ml sterylnego buforu fosforanu potasu (0,01 M, pH 7,2) na wytrząsarce orbitalnej.
    1. Seryjne rozcieńczenia płytki (1-, 10- i 100-krotnie) buforu po 50 μl na ECA (dla E. coli) i PDA (dla A. alternata) przy użyciu spiralnej płytki
      2. .
    2. Inkubować płytki ECA w temperaturze 35 °C przez 24 godziny, a płytki PDA w temperaturze 25 °C przez 3 dni. Odczytaj liczbę kolonii drobnoustrojów za pomocą czytnika płytek optycznych. Zdezynfekuj wszystkie urządzenia, które miały kontakt z zanieczyszczonymi owocami po użyciu.
  2. Zmierz jędrność owoców za pomocą testera jędrności owoców, korzystając z protokołu producenta. Kalibruj tester przed każdym użyciem. Odmierzyć 20 owoców dla każdej kontrpróby i wyrazić wyniki jako siłę nacisku, Newton (N), wymaganą do ściśnięcia owocu o 1 mm (przeliczoną na N·m−1).
  3. Zważyć całą muszlę z owocem na początku i w trakcie przechowywania i obliczyć ubytek masy w porównaniu z wagą początkową.

5. Analiza statystyczna

  1. Powtórz wszystkie eksperymenty w trzech egzemplarzach. Analizowanie danych przy użyciu analizy wariancji (ANOVA). Określ średnią separację za pomocą testu wielozakresowego Duncana; Istotność jest zdefiniowana w p <0,05.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Wydanie ClO2 wykazywało liniowy wzór w ciągu pierwszych kilku godzin. Stężenie wzrosło o około 2,38 ppm/h w ciągu pierwszych 4 godzin. Prędkość uwalniania zmniejszyła się po 24 godzinach inkubacji, a stężenie ClO2 osiągnęło 25,4 ppm. Jednak stężenie utrzymywało się na stałym poziomie po 24 godzinach inkubacji (ryc. 1).

Stężenie ClO2 w muszli z pomidorami winogronowymi w przestrze...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Dwutlenek chloru jest idealnym środkiem biobójczym zapobiegającym gniciu żywności. Jest jednak niestabilny przy wysokich stężeniach i nie nadaje się do transportu, co wymaga kosztownych generatorów lub nieefektywnego dwuczęściowego mieszania proszku. W badaniu tym zbadano zastosowanie stabilnej, gotowej do użycia formy dwutlenku chloru w celu zmniejszenia psucia się żywności i występowania chorób przenoszonych drogą pokarmową. W przeciwieństwie do innych obecnie stosowanych technologii aplikacji dwutlenku chloru, zastoso...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Autorzy oświadczają, że nie mają konkurencyjnych interesów finansowych.

Podziękowania

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Chcielibyśmy podziękować za wsparcie finansowe udzielone przez Worrell Water Technologies, LLC. Wzmianka o znaku towarowym lub produkcie zastrzeżonym służy wyłącznie do identyfikacji i nie oznacza gwarancji lub rękojmi na produkt udzielonej przez Departament Rolnictwa Stanów Zjednoczonych.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Curoxin® woreczek z dwutlenkiem chloruWorrell Water TechnologiesGnojowica, a.i. 9,5% w szczelnej półprzepuszczalnej folii polimerowej
Pomidor winogronowySanta Sweets, IncSanta Sweets Authentic 
Detektor gazu ClO2Analytical Technology, Inc., Collegeville, PAPortaSens II 
Perforowana klapkaPackaging Plus LLC, Yakima, WAOSU #1, 1 lb
Escherichia coli Typ dziki (WT) z powierzchni owocu
Alternaria alternataz powierzchni owocu
E. coli agar Rosół EC, Oxoid, UKEC Rosół z 1,5% agarem
Agar z dekstrozą ziemniaczaną BD Difco, Iskry, MD
Levine eozyna agar z błękitem metylenowymBD Difco, Iskry, MD
Butelka z rozpylaczem spustu Impact Products, LLC., Toledo, OH
Sterylizowana torba do pobierania próbek Fisherbrand, Fisher Scientific, Pittsburgh, PA
Wytrząsarka orbitalna New Brunswick Scientific, Nowy Brunszwik, NJInnova 2100
IUL Instruments Neutec System do inokulacji spirali wirowejNeutec Group Inc., Farmingdale, NY
EZ czytnik mikropłytek optycznych Synoptics, Ltd., Cambridge, Wielka BrytaniaProtoCOL
Tester jędrności owoców Bioworks Inc, Wamego, KSFirmTech 2 
Rejestrator temperatury i wilgotności względnej TinytagRejestratory danych Gemini, West Sussex, Wielka Brytania
Norma zmętnienia równoważnego McFarlandFisherbrand, Fisher Scientific, Pittsburgh, PA

Bibliografia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Van Duyn, M. S., Pivonka, E. Overview of the health benefits of fruit and vegetable consumption for the dietetics professional: Selected literature. J Am Diet Assoc. 100 (12), 1511-1521 (2000).
  2. Beuchat, L. R. Ecological factors influencing survival and growth of human pathogens on raw fruits and vegetables. Microbes Infect. 4 (4), 413-423 (2002).
  3. Mahmoud, B. S. M., Bhagat, A. R., Linton, R. H. Inactivation kinetics of inoculated Escherichia coli O157 : H7, Listeria monocytogenes and Salmonella enterica on strawberries by chlorine dioxide gas. Food Microbiol. 24 (7-8), 736-744 (2007).
  4. Bean, N. H., Griffin, P. M. Foodborne disease outbreaks in the United-States, 1973-1987 - pathogens, vehicles, and trends. J Food Protect. 53 (9), 804-817 (1990).
  5. Calder, L., et al. An outbreak of hepatitis A associated with consumption of raw blueberries. Epidemiol Infect. 131 (1), 745-751 (2003).
  6. Chen, Z., Zhu, C. H. Combined effects of aqueous chlorine dioxide and ultrasonic treatments on postharvest storage quality of plum fruit (Prunus salicina L.). Postharvest Biol Technol. 61 (2-3), 117-123 (2011).
  7. Mmbaga, M. T., Shi, A. N., Kim, M. S. Identification of Alternaria alternata as a causal agent for leaf blight in syringa species. Plant Pathology J. 27 (2), 120-127 (2011).
  8. Fagundes, C., Palou, L., Monteiro, A. R., Perez-Gago, M. B. Hydroxypropyl methylcellulose-beeswax edible coatings formulated with antifungal food additives to reduce alternaria black spot and maintain postharvest quality of cold-stored cherry tomatoes. Sci Hortic-Amsterdam. 193, 249-257 (2015).
  9. Akhtar, K. P., Saleem, M. Y., Asghar, M., Haq, M. A. New report of Alternaria alternata causing leaf blight of tomato in Pakistan. Plant Pathol. 53 (6), 816(2004).
  10. Spalding, D. H. Effect of ozone on appearance and decay of strawberries peaches and lettuce. Phytopathology. 56, 586(1966).
  11. Bialka, K. L., Demirci, A. Decontamination of Escherichia coli O157 : H7 and Salmonella enterica on blueberries using ozone and pulsed UV-Light. J Food Sci. 72 (9), M391-M396 (2007).
  12. Kim, J. G., Yousef, A. E., Dave, S. Application of ozone for enhancing the microbiological safety and quality of foods: A review. J Food Protect. 62 (9), 1071-1087 (1999).
  13. Crowe, K. M., Bushway, A., Davis-Dentici, K. Impact of postharvest treatments, chlorine and ozone, coupled with low-temperature frozen storage on the antimicrobial quality of lowbush blueberries (Vaccinium angustifolium). LWT-Food Sci Technol. 47 (1), 213-215 (2012).
  14. Richardson, S. D., Plewa, M. J., Wagner, E. D., Schoeny, R., DeMarini, D. M. Occurrence, genotoxicity, and carcinogenicity of regulated and emerging disinfection by-products in drinking water: A review and roadmap for research. Mutat Res-Rev Mutat. 636 (1-3), 178-242 (2007).
  15. Soliva-Fortuny, R. C., Martin-Belloso, O. New advances in extending the shelf-life of fresh-cut fruits: a review. Trends Food Sci Tech. 14 (9), 341-353 (2003).
  16. Zhu, C. H., Chen, Z., Yu, G. Y. Fungicidal mechanism of chlorine dioxide on Saccharomyces cerevisiae. Ann Microbiol. 63 (2), 495-502 (2013).
  17. Han, Y., Sherman, D. M., Linton, R. H., Nielsen, S. S., Nelson, P. E. The effects of washing and chlorine dioxide gas on survival and attachment of Escherichia coli O157 : H7 to green pepper surfaces. Food Microbiol. 17 (5), 521-533 (2000).
  18. Chen, Z., Zhu, C. H., Han, Z. Q. Effects of aqueous chlorine dioxide treatment on nutritional components and shelf-life of mulberry fruit (Morus alba L). J Biosci Bioeng. 111 (6), 675-681 (2011).
  19. Gordon, G., Rosenblatt, A. A. Chlorine dioxide: The current state of the art. Ozone-Sci Eng. 27 (3), 203-207 (2005).
  20. Park, S. H., Kang, D. H. Antimicrobial effect of chlorine dioxide gas against foodborne pathogens under differing conditions of relative humidity. LWT-Food Sci Technol. 60 (1), 186-191 (2015).
  21. Wu, V. C. H., Kim, B. Effect of a simple chlorine dioxide method for controlling five foodborne pathogens, yeasts and molds on blueberries. Food Microbiol. 24 (7-8), 794-800 (2007).
  22. Mahmoud, B. S., Bhagat, A. R., Linton, R. H. Inactivation kinetics of inoculated Escherichia coli O157:H7, Listeria monocytogenes and Salmonella enterica on strawberries by chlorine dioxide gas. Food Microbiol. 24 (7-8), 736-744 (2007).
  23. Popa, I., Hanson, E. J., Todd, E. C., Schilder, A. C., Ryser, E. T. Efficacy of chlorine dioxide gas sachets for enhancing the microbiological quality and safety of blueberries. J Food Protect. 70 (9), 2084-2088 (2007).
  24. Jin, Y. Y., Kim, Y. J., Chung, K. S., Won, M., Bin Song,, K, Effect of aqueous chlorine dioxide treatment on the microbial growth and qualities of strawberries during storage. Food Sci Biotechnol. 16 (6), 1018-1022 (2007).
  25. Sun, X. X., et al. Antimicrobial activity of controlled-release chlorine dioxide gas on fresh blueberries. J Food Protect. 77 (7), 1127-1132 (2014).
  26. Wang, Z., et al. Improving storability of fresh strawberries with controlled release chlorine dioxide in perforated clamshell packaging. Food Bioprocess Technol. 7 (12), 3516-3524 (2014).
  27. Narciso, J. A., Ference, C. M., Ritenour, M. A., Widmer, W. W. Effect of copper hydroxide sprays for citrus canker control on wild-type Escherichia coli. Lett Appl Microbiol. 54 (2), 108-111 (2012).
  28. Lee, S. Y., Costello, M., Kang, D. H. Efficacy of chlorine dioxide gas as a sanitizer of lettuce leaves. J Food Protect. 67 (7), 1371-1376 (2004).
  29. Shinb, H. S., Jung, D. G. Determination of chlorine dioxide in water by gas chromatography-mass spectrometry. J Chromatogr A. 1123, 92-97 (2006).
  30. Tzanavaras, P. D., Themelis, D. G., Kika, F. S. Review of analytical methods for the determination of chlorine dioxide. Cent Eur J Chem. 5 (1), 1-12 (2007).
  31. Sy, K. V., Murray, M. B., Harrison, M. D., Beuchat, L. R. Evaluation of gaseous chlorine dioxide as a sanitizer for killing Salmonella, Escherichia coli O157 : H7, Listeria monocytogenes, and Yeasts and molds on fresh and fresh-cut produce. J Food Protect. 68 (6), 1176-1187 (2005).
  32. Du, J., Han, Y., Linton, R. H. Efficacy of chlorine dioxide gas in reducing Escherichia coli O157 : H7 on apple surfaces. Food Microbiol. 20 (5), 583-591 (2003).
  33. Wang, Y. Z., Wu, J., Ma, D. W., Ding, J. D. Preparation of a cross-linked gelatin/bacteriorhodopsin film and its photochromic properties. Sci China Chem. 54 (2), 405-409 (2011).
  34. Guo, Q., et al. Chlorine dioxide treatment decreases respiration and ethylene synthesis in fresh-cut 'Hami' melon fruit. Int J Food Sci Tech. 48 (9), 1775-1782 (2013).
  35. Aday, M. S., Caner, C. The applications of 'active packaging and chlorine dioxide' for extended shelf life of fresh strawberries. Packag Technol Sci. 24 (3), 123-136 (2011).
  36. Paniagua, A. C., East, A. R., Hindmarsh, J. P., Heyes, J. A. Moisture loss is the major cause of firmness change during postharvest storage of blueberry. Postharvest Biol Technol. 79, 13-19 (2013).
  37. Gomez-Lopez, V. M., Ragaert, P., Jeyachchandran, V., Debevere, J., Devlieghere, F. Shelf-life of minimally processed lettuce and cabbage treated with gaseous chlorine dioxide and cysteine. Int J Food Microbiol. 121 (1), 74-83 (2008).
  38. Mahovic, M. J., Tenney, J. D., Bartz, J. A. Applications of chlorine dioxide gas for control of bacterial soft rot in tomatoes. Plant Dis. 91 (10), 1316-1320 (2007).
  39. Tan, H. K., Wheeler, W. B., Wei, C. I. Reaction of chlorine dioxide with amino-acids and peptides - kinetics and mutagenicity studies. Mutat Res. 188 (4), 259-266 (1987).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Uwalnianie dwutlenku chloruopakowania do kontrolowanego uwalnianiakonserwacja pomidor w koktajlowychtesty bezpiecze stwa mikrobiologicznegoanaliza twardo ci owoc wpomiar ubytku masysystem perforowanych opakowa typu clamshellmonitorowanie st enia gaz wocena skuteczno ci przeciwmikrobowejprzed u enie okresu przydatno ci do spo ycia

Powiązane artykuły